摘 要 建立離子色譜法測(cè)定發(fā)芽大豆中γ-氨基丁酸(GABA)含量的快速、簡(jiǎn)便分析方法。樣品用碳酸鈉-碳酸氫鈉2.4 mmol/L溶液提取后,過0.22 μm濾膜后進(jìn)行色譜分析。選用IonPac AS 18陰離子交換分析柱,IonPac AG 18陰離子保護(hù)柱,梯度洗脫的方式分離,過電導(dǎo)檢測(cè)器測(cè)定含量。該方法簡(jiǎn)單、快速、靈敏度高且結(jié)果可靠,獲得良好的加標(biāo)回收率,可用于快速測(cè)定發(fā)芽大豆中γ-氨基丁酸含量。
關(guān)鍵詞 離子色譜;發(fā)芽大豆;γ-氨基丁酸;GABA
中圖分類號(hào):S565.1 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A DOI:10.19415/j.cnki.1673-890x.2017.28.031
知網(wǎng)出版網(wǎng)址:http://kns.cnki.net/kcms/detail/50.1186.S.20171011.1400.019.html 網(wǎng)絡(luò)出版時(shí)間:2017/10/11 14:00:19
γ-氨基丁酸(GABA)廣泛分布在動(dòng)物和植物中,其具有很強(qiáng)的生物活性,是哺乳動(dòng)物的一種重要神經(jīng)遞質(zhì)[1]。有研究表明,GABA具有激活腦內(nèi)葡萄糖代謝、促進(jìn)乙酰膽堿合成、抗驚厥、降血壓、改善腦機(jī)能、神經(jīng)安定、促進(jìn)生長(zhǎng)激素分泌等多種生理功能[2]。富集GABA的方法研究較多,其中采用植物富集方法是普遍認(rèn)為最安全的方法,即控制植物的生長(zhǎng)環(huán)境,使之能夠最大限度地積累GABA。由于豆類中富含谷氨酸,在發(fā)芽過程中經(jīng)谷氨酸脫羧酶催化將轉(zhuǎn)化成GABA,使用發(fā)芽豆類富集GABA是研究的熱點(diǎn)[3]。
檢測(cè)GABA的方法有很多種,其中最常用的有比色法、高效液相色譜法、氨基酸分析儀法等。比色法具有一定局限性,容易受到樣品本身顏色的干擾;高效液相色譜法需要將樣品進(jìn)行衍生化處理,實(shí)驗(yàn)步驟繁瑣且成本較高;氨基酸分析儀法對(duì)測(cè)定條件及樣品均有很高要求[4]。為此,以發(fā)芽大豆作為研究對(duì)象,采用離子色譜法,探討優(yōu)化樣品前處理方法以及色譜條件,旨在開發(fā)一種簡(jiǎn)單、快速、靈敏度高且結(jié)果可靠的GABA檢測(cè)方法,為研究GABA在發(fā)芽大豆中的富集提供幫助。
1材料與方法
1.1儀器與試劑
1)發(fā)芽大豆。選取3種不同生長(zhǎng)時(shí)期的發(fā)芽大豆作為研究對(duì)象,芽長(zhǎng)分別為1~3 cm,3~6 cm,6~10 cm。
2)γ-氨基丁酸。純度99.2 %,SIGMA-ALORICH,Lot:BCBT6565。
3)無(wú)水碳酸鈉。分析純?cè)噭?,?gòu)于國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
4)碳酸氫。分析純?cè)噭?,?gòu)于國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司。
5)超純水。電阻率為18.2 MΩ/cm,美國(guó)Millipore純水儀。
6)0.22 μm尼龍濾膜。購(gòu)于天津津騰公司。
7)ICS 5000離子色譜儀。購(gòu)于美國(guó)戴安公司。
8)EGC 500 OH-離子發(fā)生器。購(gòu)于美國(guó)戴安公司。
9)電導(dǎo)檢測(cè)器。購(gòu)于美國(guó)戴安公司。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 色譜條件
色譜柱:IonPac AS 18陰離子交換分析柱(250 mm×4 mm);IonPac AG 18陰離子保護(hù)柱(50 mm×4 mm);ASRS 400 型抑制器,自循環(huán)模式,抑制電流:100 mA;KOH濃度梯度:0~13 min,4 mmol·L-1;13.1~18 min,40 mmol·L-1;18 .1~23 min,4 mmol·L-1;流速1.0 mL·min-1;進(jìn)樣量50 μL。
1.2.2 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制及曲線繪制
稱取1.0056 g GABA標(biāo)準(zhǔn)品,定容至100 mL容量瓶,即濃度為10 g·L-1的標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,稀釋配制標(biāo)準(zhǔn)成1000 μg·mL-1標(biāo)準(zhǔn)使用液。配制標(biāo)準(zhǔn)曲線:取GABA標(biāo)準(zhǔn)液稀釋配制濃度分別是100 μg·mL-1、80 μg·mL-1、50 μg·mL-1、40 μg·mL-1、25 μg·mL-1、20 μg·mL-1。
1.2.3 樣品預(yù)處理
準(zhǔn)確稱取粉碎后樣品約0.5 g于50 mL比色管中,用碳酸鈉-碳酸氫鈉2.4 mmol·L-1溶液定容至刻度,渦旋振蕩3 min,超聲提取30 min,溫度50℃,靜置30 min,在4℃條件下離心8000 r·min-1,20 min。取上清液,過0.22 μm濾膜,上機(jī)測(cè)定。
1.2.4 樣品凈化及分析測(cè)定
吸取樣品管中層液體,過0.22 μm水性樣品濾膜,棄去前3滴試液,以同樣方法上機(jī)測(cè)定樣品液,由標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算含量。含量計(jì)算公式如下:
式中:X 為樣品中目標(biāo)物的含量(mg·kg-1);Y為由標(biāo)準(zhǔn)曲線得到樣品溶液中目標(biāo)物的濃度(μg·mL-1);V為樣品溶液定容體積(mL);m為樣品質(zhì)量(g)。
2結(jié)果與分析
2.1樣品前處理?xiàng)l件的選擇
樣品提取液的選擇,GABA其不溶于有機(jī)溶劑,易溶于水[5],因此考慮采用水相試劑提取。且在加熱條件下GABA極易分解形成吡咯烷酮和水[3],提取時(shí)不宜選擇過高的溫度。嚴(yán)聃[6]使用檸檬酸溶液在pH6.0時(shí),50℃水浴提取4 h,提取米糠中的GABA得到較好提取效果;廖周華等[7]以水為提取介質(zhì)(pH7.0),溫度37℃、抽提6 h,提取麥麩中的GABA有較好效果;李炳坤等[8]采用碳酸鈉-碳酸氫鈉2.4 mmol/L溶液為介質(zhì)提取桑葉中的GABA取得較好結(jié)果。綜上,本文研究了不同提取介質(zhì)對(duì)于GABA的提取效果的影響。發(fā)現(xiàn)檸檬酸對(duì)于離子色譜基線有較大干擾,不適合于離子色譜法提取,碳酸鈉-碳酸氫鈉提取效果較好,詳見表1。
靜置時(shí)間的選擇,多數(shù)研究認(rèn)為[7-8],在50℃時(shí),為提取樣品中GABA的適宜溫度。對(duì)于提取時(shí)間則有較大分歧,因此本文參考50℃為提取溫度,研究了不同提取時(shí)間對(duì)于GABA提取效果的影響,結(jié)果見表2。
由結(jié)果分析可知,不同提取介質(zhì)對(duì)于提取發(fā)芽大豆中GABA的效率有較大影響,采用碳酸鈉-碳酸氫鈉為介質(zhì)提取GABA有較好效果。在相同溫度條件下,延長(zhǎng)靜置時(shí)間對(duì)于提取效率未見明顯改善。本研究增加了30 min超聲波提取,提取效率有明顯提高。
2.2色譜條件的選擇
比較了3種陰離子分析柱的分離效果。IonPac AS 16陰離子交換分析柱,是親水性較強(qiáng)的高容量柱,GABA在柱中的保留時(shí)間較短,低濃度洗脫時(shí)約6.00 min出峰,不能保證GABA能完全分離。IonPac AS 19陰離子交換分析柱,是高通量柱,GABA在其中有較長(zhǎng)的保留時(shí)間,但在GABA出峰前0.2 min處存在雜峰干擾,使之無(wú)法完全分離。因此,本研究最終選用IonPac AS 18陰離子交換分析柱,在4 mmol·L-1濃度OH-離子洗脫將目標(biāo)物分離,使用50 mmol·L-1的高濃度洗脫液沖洗色譜柱,可獲得平穩(wěn)基線和良好的峰形,如圖1所示。
2.3線性范圍
配制多個(gè)濃度梯度的標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行線性范圍分析,結(jié)果表明,在20~100 μg·mL-1時(shí),各組分的濃度與峰面積有良好的線性關(guān)系,以組分的質(zhì)量濃度(μg·mL-1)為橫坐標(biāo),峰面積(μS×min)為縱坐標(biāo),回歸方程為:y=0.006x+0.021,R2 = 0.998 6。
選擇濃度20 μg·mL-1準(zhǔn)品溶液,按“1.2.1”的色譜條件進(jìn)行測(cè)定,GABA的儀器檢出限為0.07 μg·mL-1 (信噪比RSN=3),以0.5 g稱樣量計(jì)算方法檢出限為7 mg·kg-1。
2.4樣品分析及加標(biāo)回收率
選取具有代表性的3種不同芽長(zhǎng)的發(fā)芽大豆作為研究對(duì)象,芽長(zhǎng)分別為1~3 cm,3~6 cm,6~10 cm。在樣品中添加已知濃度的GABA標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行樣品分析及加標(biāo)回收試驗(yàn)(n=6)。
如表3所示,樣品中的GABA,樣品加標(biāo)后回收率在89.46%~104.00%,相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差(RSD)在3.16%~8.11%。
由圖2可以看出,樣品的特征峰與標(biāo)準(zhǔn)品(圖1)出峰時(shí)間重合,分離度較好。由此可見,本方法穩(wěn)定可靠,準(zhǔn)確性高。
3結(jié)論
本實(shí)驗(yàn)建立了能夠快速測(cè)定發(fā)芽大豆中GABA的離子色譜方法。該法與其他方法相比,能夠有效節(jié)約檢測(cè)時(shí)間及檢測(cè)成本,分析速度快,結(jié)果穩(wěn)定可靠。
參考文獻(xiàn):
[1]郭曉娜,朱永義,朱科學(xué).生物體內(nèi)γ-氨基丁酸的研究[J].氨基酸和生物資源,2003,25(2):70-72.
[2]蔣振暉,顧振新.高等植物體內(nèi)γ-氨基丁酸合成、代謝及其生理作用[J].植物生理學(xué)通訊, 2003,39(3):249-254.
[3]渠巖,王夫杰,李平蘭,等.γ-氨基丁酸及其在大豆發(fā)酵食品中的研究進(jìn)展[J].中國(guó)釀造,2010,(3):1-4.
[4]劉紅梅,魏淘濤,劉行丹,等.發(fā)芽糙米γ-氨基丁酸的檢測(cè)及研究進(jìn)展[J].作物研究,2012,26(1):88-92.
[5]陳恒文,林碧敏,鐘楊生,等.γ-氨基丁酸活性功能研究綜述[J].廣東蠶業(yè),2011,45(4):27-32.
[6]嚴(yán)聃.從米糠中提取高濃度γ-氨基丁酸粉末的工藝條件研究[J].食品與機(jī)械,2009,25(4):80-82,162.
[7]廖周華,陳銘志,李彩娟.麥麩提取γ-氨基丁酸工藝的優(yōu)選[J].亞熱帶農(nóng)業(yè)研究,2010,6(4):267-270.
[8]李炳坤,衷明華.離子色譜法測(cè)定桑葉中的γ-氨基丁酸[J].韓山師范學(xué)院學(xué)報(bào),2009,30(6):62-65.
(責(zé)任編輯:敬廷桃)