劉霞宇,陳亮,喬永剛,宋蕓,王金勝
(山西農(nóng)業(yè)大學生命科學學院,山西太谷030801)
金銀花花器官實時熒光定量PCR內(nèi)參基因的篩選
劉霞宇,陳亮,喬永剛,宋蕓,王金勝
(山西農(nóng)業(yè)大學生命科學學院,山西太谷030801)
為了篩選金銀花花器官基因表達分析的適宜內(nèi)參基因,試驗以金銀花花器官6個時期為材料,選取金銀花的9個候選內(nèi)參基因Lonja.ACT11,Lonja.ACT2/7,Lonja.G6PD,Lonja.GAPDH,Lonja.MTP,Lonja.TUA,Lonja. UBQ10,Lonja.EF1A,Lonja.UBC,利用qRT-PCR技術(shù)及GeNorm,NormFinder軟件對它們的表達穩(wěn)定性進行分析評價。結(jié)果表明,Lonja.ACT2/7和Lonja.G6PD在金銀花花器官生長的不同時期表達水平較穩(wěn)定,運用qRT-PCR研究金銀花花器官基因表達時可選用Lonja.ACT2/7和Lonja.G6PD組合作為內(nèi)參基因。
實時熒光定量PCR;金銀花花器官;內(nèi)參基因
基因表達在生物研究的許多領(lǐng)域都非常重要[1]。相比于傳統(tǒng)的轉(zhuǎn)錄組分析,實時熒光定量PCR(quantitative real-time PCR,qRT-PCR)[2]是檢測mRNA最可信的方法[3]。其具有高靈敏性、高通量以及特異性高、動態(tài)范圍廣等優(yōu)點[4],但同時也存在一些困難,最重要的就是內(nèi)參基因的標準化。
在進行植物qRT-PCR研究時通常選用管家基因作為內(nèi)參,比如肌動蛋白(actin,ACT)、微管蛋白(tublin,TUA,TUB)、甘油醛-3-磷酸脫氫酶(glyceraldehyde-3-phosphatedehydrogenase,GAPDH)、核糖體RNA(ribosomal RNA,18sr RNA,28sr RNA)、延伸因子(elongation factor1-α,EF1-α)等[5]。然而,在許多情況下這些基因的表達水平并不是很穩(wěn)定,甚至會導致錯誤的試驗結(jié)果[6-7]。所以,在用qRT-PCR技術(shù)進行基因表達研究時要提前篩選適合試驗條件的內(nèi)參基因。目前,常用篩選內(nèi)參基因的軟件有GeNorm[8]和NormFinder[9]。
金銀花(Lonicera japonica Thunb.)又名忍冬,為忍冬科多年生半常綠纏繞木質(zhì)藤本植物,根據(jù)金銀花花色的變化,可以將金銀花開花過程分為米蕾期、三青期、二白期、大白期、銀花期、金花期[10]。金銀花商品以花蕾為佳,其性甘寒、氣芳香,在中醫(yī)藥學中多作為宣散風熱、清解血毒等配方,是一種常見的中醫(yī)藥學藥用植物[11]。另外,金銀花可作為食物,也普遍被認為是一種健康飲品,所以使得金銀花在中草藥市場的商業(yè)價值快速上升[12]。
目前,國內(nèi)外已有很多關(guān)于金銀花的研究報道,主要集中在化學成分[13]、質(zhì)量[14]、生態(tài)價值[15]等方面。
本試驗對金銀花花器官的6個時期:米蕾期、三青期、二白期、大白期、銀花期、金花期進行取材,通過qRT-PCR技術(shù)對9個候選內(nèi)參基因Lonja.ACT11,Lonja.ACT2/7,Lonja.G6PD,Lonja.GAPDH,Lonja.MTP,Lonja.TUA,Lonja.UBQ10,Lonja.EF1A和Lonja.UBC進行穩(wěn)定性分析,旨在為研究金銀花花器官的基因表達qRT-PCR分析奠定基礎。
1.1 試驗材料
選擇長勢一致的金銀花植株(種植于山西省晉中市太谷縣山西農(nóng)業(yè)大學山西天然藥用生物研究院),分別在其米蕾期、三青期、二白期、大白期、銀花期、金花期進行取材。
1.2 試驗方法
1.2.1 總RNA提取及cDNA第1鏈合成利用北京華越洋植物RNA提取試劑盒提取各個樣品的總RNA,步驟參照說明書進行。用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測其完整性,RNA的濃度和純度用Nanodorp 2000c測定。反轉(zhuǎn)錄按照全式金TransScriptOne-Step gDNA Removal and cDNA Synthesis SuperMix試劑盒的方法進行,每個樣品分別以100 ng/μL總RNA為模板進行反轉(zhuǎn)錄,得到的產(chǎn)物部分用于普通PCR,部分凍存在-20℃?zhèn)溆谩?/p>
1.2.2 熒光定量PCR引物的設計通過前期大量的文獻閱讀,找出植物中常用的qRT-PCR內(nèi)參基因(9個),利用生物信息學方法從山西農(nóng)業(yè)大學生命科學學院藥用植物育種實驗室已得到的金銀花轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)中找出它們的同源基因。根據(jù)熒光定量PCR引物的設計原則,利用在線引物設計軟件IDT PrimerQuest Tool(http://sg.idtdna.com/PrimerQuest/H ome/Index)分別設計Lonja.ACT11,Lonja.ACT2/7,Lonja.G6PD,Lonja.GAPDH,Lonja.MTP,Lonja.TUA,Lonja.UBQ10,Lonja.EF1A,Lonja.UBC引物(表1)。
表1 候選內(nèi)參基因引物信息
1.2.3 內(nèi)參基因的特異性檢驗用內(nèi)參基因的普通PCR檢測其特異性:試劑為中科瑞泰2×Taq PCR MasterMix。反應體系列于表2。反應程序為94℃預變性5 min;94℃變性30 s,57℃退火30 s,72℃延伸30 s,40個循環(huán);最后72℃延伸5 min。
表2 普通PCR反應體系(20 μL)
1.2.4 熒光定量PCR反應用全式金TransStartrRTip Green qPCR SuperMix試劑盒進行qRT-PCR反應,每個樣品3次生物學重復。反應體系列于表3。反應程序為94℃預變性30 s;94℃變性5 s,57℃退火15 s,72℃延伸10 s,45個循環(huán);特異性檢測:以0.5℃/5 s的速率從70℃上升到95℃,期間讀取熒光信號值,繪制熔解曲線。
表3 qRT-PCR反應體系(10 μL)
1.3 數(shù)據(jù)分析
根據(jù)熒光定量儀給出的數(shù)據(jù),利用GeNorm,NormFinder軟件分析內(nèi)參基因的穩(wěn)定性。
2.1 RNA質(zhì)量檢測
金銀花花器官的總RNA經(jīng)檢測可知,A260/A280的值均在2.0左右,瓊脂糖凝膠電泳結(jié)果顯示(圖1),28S的亮度約為18S的2倍,說明試驗提取的RNA完整性良好,可用于后續(xù)的試驗。
2.2 內(nèi)參基因的特異性檢驗
從圖2可以看出,每個基因的產(chǎn)物為單一條帶,表明有較高的專一性,而且產(chǎn)物片段在79~150 bp,與預測結(jié)果一致,說明設計的引物可用于進一步試驗。
2.3 內(nèi)參基因的選擇
利用GeNorm軟件通過計算基因的表達穩(wěn)定值(M)評價基因表達的穩(wěn)定性,基因的M值越小越穩(wěn)定。由圖3可知,金銀花花器官中9個候選內(nèi)參基因穩(wěn)定性大小依次是Lonja.ACT2/7=Lonja.G6PD>Lonja.GAPDH>Lonja.MTP>Lonja.ACT11>Lonja. UBC>Lonja.EF1A>Lonja.UBQ10>Lonja.TUA。由圖4可知,V2/3小于閾值0.15,說明沒有必要引入第3個內(nèi)參。NormFinder軟件計算結(jié)果表明(表4),Lonja.ACT2/7和Lonja.G6PD表達較穩(wěn)定,Lonja. UBQ10和Lonja.TUA穩(wěn)定性較差。2個軟件得到的結(jié)果一致,在一定程度上驗證了結(jié)果的可靠性。
表4 NormFinder軟件計算結(jié)果
目前,在藥用植物領(lǐng)域有一些關(guān)于篩選內(nèi)參基因的研究。侯維海等[16]研究發(fā)現(xiàn),TIP41和UBQ10在地黃花器官中表達穩(wěn)定,而在地黃根、莖、葉中TIP41和UBQ5表達穩(wěn)定。張崗等[17]以我國名貴中藥材鐵皮石斛為材料,研究發(fā)現(xiàn),最適內(nèi)參基因為EF-1α和18S rRNA。李金弟[18]以托品烷類生物堿藥源植物顛茄作為研究對象進行研究,結(jié)果表明,PKG是其一個可靠的內(nèi)參基因。蔡嘉洛等[19]研究發(fā)現(xiàn),18S rRNA是灰氈毛忍冬的適宜內(nèi)參基因。說明不同種類的藥用植物最適的內(nèi)參基因不同,同一物種不同的組織、器官最適宜的內(nèi)參基因也不同。因此,在進行基因表達研究前,篩選適合試驗的內(nèi)參基因是非常必要的。
本試驗通過qRT-PCR技術(shù),篩選出金銀花花器官的最適內(nèi)參基因為Lonja.ACT2/7和Lonja.G6PD,運用qRT-PCR研究金銀花花器官基因表達時可選用Lonja.ACT2/7和Lonja.G6PD組合作為內(nèi)參基因,這為金銀花花器官基因表達研究奠定了基礎。
[1]WANH J,ZHAOZG,QIANCT,et al.Selection ofappropriate reference genes for gene expression studies by quantitative real-time polymerase chain reaction in cucumber[J].Analytical Biochemistry,2010,399:257-261.
[2]IZASKUN MALLONA,SANDRA LISCHEWSKI,JULIA WEISS,et al.Validation ofreference genes for quantitative real-time PCR during leaf and flower development in Petunia hybrida[J].BMC Plant Biology,2010,10:4.
[3]JIAN B,LIU B,BI Y,et al.Validation of internal control for gene expression study in soybean by quantitative real-time PCR[J].BMC Molecular Biology,2008,9(1):59.
[4]MUKESH JAIN,AASHIMA NIJHAWAN,AKHILESH K.Validation of housekeeping genes as internal control for studying gene expression in rice by quantitative real-time PCR[J].Biochemical and Biophysical Research Communications,2006,345(2):646-651.
[5]LIBAULT M,THIBIVILLIERS S,BILGIN D D,et al.Identification of four soybean reference genes for gene expression normalization[J]. The Plant Genome,2008,1(1):44-54.
[6]VOLKOV R A,PANCHUK I I,SCHOFFL F.Heat-stress-dependency and developmental modulation of gene expression:the potential ofhouse-keepinggenes as internal standards in Mrna expression profiling using real-time RT-PCR[J].Journal of Experimental Botany,2003,54:2343-2349.
[7]REMANS T,SMEETS K,OPDENAKKER K,et al.Normalisation of real-time RT-PCR gene expression measurements in Arabidopsis thaliana exposed to increased metal concentrations[J].Planta,2008,227(6):1343-1349.
[8]VANDESOMPELE J,DEPRETER K,PATTYN F,et al.Accurate normalization of real-time quantitative RT-PCR data by geometric averaging of multiple internal control genes[J].Genome Biology,2002,3(7):1-11.
[9]ANDERSENCL,JENSENJ L,OENTOFTTF.Normalization ofrealtime quantitative reverse transcription-PCR data:A model-based variance estimation approach to identify genes suited for normalization,applied to bladder and colon cancer datasets[J].Cancer Research,2004,64(15):5245.
[10]任玉鋒,馬永平,王文麗.金銀花花色素的種類和含量的研究[J].安徽農(nóng)業(yè)科學,2015,43(2):90-93.
[11]陳繼明,洪超群.金銀花藥理作用分析[J].亞太傳統(tǒng)醫(yī)藥,2015,11(5):43-44.
[12]WANG L J.The study progress of Lonicera japonica[J].Med Inform,2010,8:2293-2296.
[13]姜南輝.金銀花化學成分研究[J].中藥材,2015,38(2):315-317.
[14]李建軍,賈國倫,李靜云,等.金銀花不同花期花蕾質(zhì)量及指標成分含量比較分析[J].河南農(nóng)業(yè)科學,2013,42(10):110-114.
[15]郭瑞齊,劉晉仙,胡春苗,等.山東道地藥材金銀花逆境響應機制研究進展[J].山東農(nóng)業(yè)科學,2016,48(2):154-156.
[16]侯維海,孫鵬,陳全家,等.地黃實時定量PCR內(nèi)參基因的篩選[J].中國農(nóng)學通報,2011,27(17):76-82.
[17]張崗,趙明明,張大為,等.鐵皮石斛實時定量PCR內(nèi)參基因的篩選[J].中國藥學雜志,2013,48(19):1664-1668.
[18]李金弟.顛茄內(nèi)參基因篩選及基因表達分析[D].重慶:西南大學,2013.
[19]蔡嘉洛,朱貽霖,謝舒平,等.灰氈毛忍冬內(nèi)參基因篩選和Mads-box家族基因AGL15的時空表達分析[J].中草藥,2016,47(15):2727-2733.
Selection of Reference Genes by qRT-PCR in Flower Organ ofLonicera japonicaThunb.
LIUXiayu,CHENLiang,QIAOYonggang,SONGYun,WANGJinsheng
(College ofLife Science,Shanxi Agricultural University,Taigu 030801,China)
The study aimed to select stable and optimal reference genes for gene expression analysis in flower of Lonicera japonica Thunb.,taking 6 periods of Lonicera japonica Thunb.as materials.A total of nine reference genes including Lonja.ACT11,Lonja. ACT2/7,Lonja.G6PD,Lonja.GAPDH,Lonja.MTP,Lonja.TUA,Lonja.UBQ10,Lonja.EF1A,Lonja.UBC were compared by qRT-PCR.The stability of expression of the nine reference genes were evaluated by GeNorm and NormFinder software.The results showed that Lonja.ACT2/7 and Lonja.G6PD were the most suitable reference genes among different periods of flower organ,Lonja. ACT2/7 and Lonja.G6PD were used as the reference gene in the studyofgene expression ofhoneysuckle flower organs byqRT-PCR.
qRT-PCR;flower organ ofLonicera japonica Thunb.;reference genes
S567.7+9
A
1002-2481(2017)04-0514-04
10.3969/j.issn.1002-2481.2017.04.06
2016-10-04
山西省科技攻關(guān)項目(20140312001-2);山西農(nóng)業(yè)大學橫向項目(2014HX60)
劉霞宇(1991-),女,山西方山人,在讀碩士,研究方向:生物化學與分子生物學。王金勝為通信作者。