陳俊+葉錦霞+林潔+林婧+林秋祥+劉獻(xiàn)祥+吳廣文
【摘 要】目的:觀察獨(dú)活寄生湯含藥血清對(duì)體外培養(yǎng)的大鼠退變軟骨細(xì)胞表達(dá)miRNA-140的影響,探討?yīng)毣罴纳鷾乐喂顷P(guān)節(jié)炎的作用機(jī)制。方法:4周齡SD大鼠膝關(guān)節(jié)軟骨建立體外培養(yǎng)的軟骨細(xì)胞,采用Ⅱ型膠原原位雜交法對(duì)第3代(F3)軟骨細(xì)胞進(jìn)行鑒定。用10 ng·mL-1白細(xì)胞介素-1β誘導(dǎo)F3軟骨細(xì)胞,復(fù)制退變軟骨細(xì)胞模型。成功后隨機(jī)分為模型組和獨(dú)活寄生湯含藥血清組,分別在培養(yǎng)24,48,72 h后采用TaqMan real-time PCR法檢測(cè)各組miRNA-140表達(dá)。結(jié)果:獨(dú)活寄生湯含藥血清組
miRNA-140相對(duì)表達(dá)量隨著干預(yù)時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸增加,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。結(jié)論:獨(dú)活寄生湯治療骨關(guān)節(jié)炎的部分作用機(jī)制是有效促進(jìn)退變軟骨細(xì)胞miRNA-140的表達(dá)。
【關(guān)鍵詞】 骨關(guān)節(jié)炎;獨(dú)活寄生湯;含藥血清;軟骨細(xì)胞;miRNA-140
骨關(guān)節(jié)炎(osteoarthritis,OA)屬中醫(yī)學(xué)“痿證”“痹證”“骨痹”范疇,肝腎虧虛致其虛為病之內(nèi)因,風(fēng)寒濕邪致其痹為病之外因,故本質(zhì)為本虛標(biāo)實(shí)、本痿標(biāo)痹[1]。獨(dú)活寄生湯出自唐·孫思邈《備急千金要方》,具有扶正祛邪、標(biāo)本兼顧的特點(diǎn),能針對(duì)OA的病因病機(jī)起治療作用,能有效緩解膝OA的臨床癥狀[2-3]。實(shí)驗(yàn)研究發(fā)現(xiàn),獨(dú)活寄生湯能有效促進(jìn)軟骨細(xì)胞增殖[4-5],抑制軟骨細(xì)胞凋亡[6],延緩軟骨退變[7],但其作用機(jī)制尚未完全明確。本實(shí)驗(yàn)通過(guò)觀察獨(dú)活寄生湯含藥血清對(duì)白細(xì)胞介素(IL)-1β誘導(dǎo)的退變軟骨細(xì)胞表達(dá)miRNA-140的影響,進(jìn)一步探討?yīng)毣罴纳鷾委烵A的作用機(jī)制。
1 實(shí)驗(yàn)材料
1.1 實(shí)驗(yàn)藥物 獨(dú)活寄生湯由獨(dú)活9 g,桑寄生、秦艽、杜仲、防風(fēng)各6 g等組成,由福建中醫(yī)藥大學(xué)附屬第二人民醫(yī)院藥劑科提供。使用時(shí)用蒸餾水1 L,煎煮2次,每次煎1 h,將2次藥液合并,濃縮成1 g·mL-1,保存在-20 ℃冰箱中,備用。
1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 2月齡清潔級(jí)雄性SD大鼠24只,體質(zhì)量(250±10)g;4周齡SD大鼠10只,體質(zhì)量(100±10)g,均購(gòu)于上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司,合格證號(hào):SCXK(滬)2012-0002。福建中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心具備清潔級(jí)醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物環(huán)境設(shè)施,許可證號(hào):SYXK(閩)2014-0006。
1.3 試劑和儀器 胎牛血清(FBS,美國(guó)Gibco公司);IL-1β細(xì)胞因子(美國(guó)Peprotech公司);DMEM低糖培養(yǎng)基(美國(guó)Hyclone公司);兔抗大鼠Ⅱ型膠原抗體,大鼠IgG二抗,免疫組化試劑盒(北京中杉金橋試劑公司);提取試劑盒mirVana? miRNA Isolation Kit(美國(guó)Thermo Scientific公司);TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit(Thermo Fisher Scientific公司);TaqMan實(shí)時(shí)熒光定量PCR試劑,探針標(biāo)記的miRNA-140(引物系列:CAGUGGUUUUACCCUAUGGUAG)、U6(引物系列:AGCCTCAAGATCATCAGCAATGCCTC)及PCR mastermix(美國(guó)Invitrogen公司);ABI 7500實(shí)時(shí)熒光
定量PCR儀(Applied Biosystems公司);二氧化碳培養(yǎng)箱(Heraeus公司);熒光倒置顯微鏡(徠卡儀器公司);超凈工作臺(tái)(北京東聯(lián)哈爾儀器公司)。
2 方 法
2.1 獨(dú)活寄生湯含藥血清的制備 根據(jù)隨機(jī)數(shù)字表法將24只2月齡SD大鼠隨機(jī)分為空白血清組與含藥血清組,每組12只。給藥劑量參照藥理實(shí)驗(yàn)中動(dòng)物間和動(dòng)物與人體間的等效劑量換算[8],含藥血清組大鼠給予4.65 g·kg-1·d-1獨(dú)活寄生湯灌胃,早晚各1次;空白血清組大鼠給予每日
2次4.65 mL·kg-1·d-1生理鹽水灌胃。連續(xù)灌胃7 d,最后一天連續(xù)2次灌胃,中間間隔2 h。采血前禁食12 h,2 h后在質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%水合氯醛麻醉下腹主動(dòng)脈采血。將所得全血在37 ℃恒溫水浴箱中靜置30 min后,離心機(jī)3000 r·min-1離心15 min,取上清于56 ℃水浴鍋中滅活30 min,0.22 μm一次性針頭濾器過(guò)濾,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
2.2 軟骨細(xì)胞的培養(yǎng) 將4周齡SD大鼠,用體積分?jǐn)?shù)為750 mL·L-1的乙醇浸泡后,分離雙側(cè)膝關(guān)節(jié),帶入無(wú)菌操作臺(tái),取脛骨平臺(tái)和股骨下端的軟骨,剪成1 mm3大小,轉(zhuǎn)移入盛有質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.2%Ⅱ型膠原酶的培養(yǎng)瓶,37 ℃恒溫水浴搖床上消化2 h,取上清液,200目尼龍網(wǎng)篩過(guò)濾,離心機(jī)1000 r·min-1離心5 min,收集細(xì)胞沉淀,用含質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的胎牛血清的DMEM低糖培養(yǎng)基(含青霉素、鏈霉素各100 U·mL-1)重懸細(xì)胞,封口放置。原消化瓶中再加入Ⅱ型膠原酶5 mL,重復(fù)以上步驟2次,獲取細(xì)胞懸液。把3次消化所得的軟骨細(xì)胞懸液混勻,用含質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的胎牛血清的DMEM低糖培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞濃度為1×105·mL-1,接種于25 cm2培養(yǎng)瓶中,每瓶加5 mL,置于37 ℃、含體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2的培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)(F0),待瓶底鋪滿80%后,進(jìn)行傳代培養(yǎng),依次標(biāo)記為第1代軟骨細(xì)胞(F1),第2代軟骨細(xì)胞(F2),第3代軟骨細(xì)胞(F3)。
2.3 退變軟骨細(xì)胞模型的復(fù)制及鑒定 F3軟骨細(xì)胞以1×105·mL-1的濃度接種于25 cm2培養(yǎng)瓶中,用含10 ng·mL-1 IL-1β無(wú)血清基礎(chǔ)培養(yǎng)基誘導(dǎo)
24 h復(fù)制退變軟骨細(xì)胞模型[9]。同時(shí)運(yùn)用倒置顯微鏡觀察,免疫組化等方法鑒定退變軟骨細(xì)胞。免疫組化方法參照SABC免疫組化試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行,簡(jiǎn)要步驟如下:取出預(yù)先置于25 cm2培養(yǎng)瓶底部的蓋玻片,多聚甲醛固定15 min;用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3%的H2O2孵育10 min;質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.1%的Triton X-100 PBS液37 ℃孵育30 min;37 ℃血清封閉10 min。一抗37 ℃溫育1 h;PBS液清洗5 min,3次;二抗37 ℃孵育30 min。DAB顯色,蘇木素復(fù)染,中性樹(shù)脂封片,光鏡觀察。endprint
2.4 TaqMan real-time PCR檢測(cè)各組退變軟骨細(xì)胞miRNA-140表達(dá) 將退變軟骨細(xì)胞隨機(jī)分為模型組(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的空白血清+ DMEM低糖培養(yǎng)基)和獨(dú)活寄生湯組(質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的獨(dú)活寄生湯含藥血清+ DMEM低糖培養(yǎng)基)。2組細(xì)胞分別培養(yǎng)24,48,72 h后,棄培養(yǎng)液,PBS輕柔淋洗1 min,用胰酶消化后離心機(jī)1000 r·min-1低速離心5 min,收集細(xì)胞。Trizol法提取總RNA,取2 μg RNA逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,以此為模板行TaqMan real-time PCR擴(kuò)增miRNA-140及U6。探針標(biāo)記的miRNA-140和U6均由Applied Biosystems合成。擴(kuò)增反應(yīng)條件:50 ℃ 2 min,5 ℃ 10 min;92 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,40個(gè)循環(huán)。擴(kuò)增結(jié)束后,進(jìn)行基因表達(dá)的差異分析,以U6表達(dá)為內(nèi)參照基因,檢測(cè)待測(cè)樣品中目的基因的表達(dá)水平,以對(duì)照組數(shù)據(jù)為標(biāo)準(zhǔn)樣本,各實(shí)驗(yàn)組為待測(cè)樣品,比較待測(cè)樣本相對(duì)校準(zhǔn)樣本的表達(dá)差異。因?qū)崟r(shí)PCR對(duì)基因表達(dá)進(jìn)行相對(duì)定量分析需要特殊的公式、假設(shè)以及對(duì)這些假設(shè)的驗(yàn)證。2-ΔΔCt方法可用于計(jì)算定量PCR實(shí)驗(yàn)基因表達(dá)的相對(duì)變化,2-ΔΔCt公式的推導(dǎo),以及實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì),有效性評(píng)估在Applied Biosystems User Bulletin No.2(P/N4303859)中均有介紹,且用2-ΔΔCt方法分析基因表達(dá)數(shù)據(jù)在文獻(xiàn)中已有報(bào)道[10-11]。故本實(shí)驗(yàn)采用2-ΔΔCt法計(jì)算miRNA-140基因相對(duì)表達(dá)量。
2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 18.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。計(jì)量資料以表示,組間比較采用One-Way ANOVA方差分析。以P < 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
3 結(jié) 果
3.1 軟骨細(xì)胞生長(zhǎng)過(guò)程 剛接種的軟骨細(xì)胞圓形通亮,懸浮于培養(yǎng)液中,24 h后開(kāi)始貼壁,36 h后更換培養(yǎng)液,培養(yǎng)至第8天,細(xì)胞長(zhǎng)滿瓶底80%,呈不規(guī)則立體“鋪路石”樣外觀(F0)。傳代培養(yǎng)后可見(jiàn)F1~F3軟骨細(xì)胞增殖速度快,形態(tài)規(guī)則、大小均勻。見(jiàn)圖1。
3.2 IL-1β誘導(dǎo)大鼠退變軟骨細(xì)胞模型鑒定 光鏡下可見(jiàn)經(jīng)過(guò)無(wú)血清DMEM培養(yǎng)基+ 10 ng·mL-1 IL-1β誘導(dǎo)后的軟骨細(xì)胞呈多邊形改變,可見(jiàn)少量指狀突起,體積增大,折光度下降;胞核增大染色變淺,胞膜和胞漿不清晰,細(xì)胞增殖速度減慢。Ⅱ型膠原免疫組化結(jié)果:用含質(zhì)量分?jǐn)?shù)為10%的FBS的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)的正常軟骨細(xì)胞胞漿染色較深,經(jīng)過(guò)無(wú)血清DMEM培養(yǎng)基+ 10 ng·mL-1 IL-1β誘導(dǎo)后的軟骨細(xì)胞胞漿染色變淺,胞核不染色。見(jiàn)圖2。
3.3 獨(dú)活寄生湯含藥血清對(duì)退變軟骨細(xì)胞表達(dá)miRNA-140的影響 獨(dú)活寄生湯組miRNA-140表達(dá)量隨著干預(yù)時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸增加,干預(yù)24,48,72 h后分別為1.2651±0.095,1.6324±0.0534,1.9772±0.0146,各時(shí)間點(diǎn)間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。見(jiàn)圖3。
4 討 論
軟骨退變是OA最主要的病理變化,圍繞保護(hù)關(guān)節(jié)軟骨以防治OA成為治療的關(guān)鍵。中醫(yī)學(xué)認(rèn)為,OA屬于“痿證”“痹證”范疇,其核心病機(jī)為本痿標(biāo)痹,因此筆者提出以補(bǔ)腎柔肝(治痿)為主,輔以活血祛風(fēng)(治痹)作為治療OA的根本大法[12-13]。在獨(dú)活寄生湯組方中,獨(dú)活長(zhǎng)于祛下焦風(fēng)寒濕邪,蠲痹止痛,為君藥。秦艽、防風(fēng)祛風(fēng)勝濕;肉桂溫里祛寒,通利血脈;細(xì)辛祛寒止痛,均為臣藥。佐以桑寄生、杜仲、牛膝、芍藥補(bǔ)腎柔肝,強(qiáng)壯筋骨;當(dāng)歸、川芎、干地黃養(yǎng)血活血;人參、茯苓補(bǔ)氣健脾。甘草擅治四肢拘攣,緩急止痛,更具調(diào)和諸藥為使藥。諸藥合用,共奏補(bǔ)肝腎、益氣血、祛風(fēng)濕、止痹痛之效,能針對(duì)OA的病因病機(jī)起治療作用,長(zhǎng)期應(yīng)用于臨床,療效顯著[2-3]。
軟骨退變作為啟動(dòng)OA病變進(jìn)程的重要病理變化一直受到研究者的關(guān)注。本課題組采用退變軟骨細(xì)胞作為OA體外研究的細(xì)胞模型,在前期實(shí)驗(yàn)中,筆者采用Ⅱ型膠原酶消化法獲取原代軟骨細(xì)胞,結(jié)果發(fā)現(xiàn)剛接種的軟骨細(xì)胞圓形通亮,懸浮于培養(yǎng)液中,24 h后開(kāi)始貼壁,36 h后更換培養(yǎng)液,培養(yǎng)至第8天,細(xì)胞長(zhǎng)滿瓶底80%,呈不規(guī)則立體“鋪路石”樣外觀。傳代培養(yǎng)后可見(jiàn)F1~F3軟骨細(xì)胞增殖速度快,形態(tài)規(guī)則、大小均勻。此細(xì)胞生長(zhǎng)過(guò)程與筆者前期實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致[14-15]。IL-lβ在OA發(fā)生發(fā)展過(guò)程中具有重要作用,是最重要的致炎因子之一[16],其主要通過(guò)核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)途徑加速軟骨基質(zhì)中蛋白多糖和Ⅱ型膠原的降解,抑制二者的合成,促進(jìn)軟骨細(xì)胞的凋亡[17],同時(shí)還可以誘導(dǎo)基質(zhì)金屬蛋白酶(MMPs)的產(chǎn)生并增強(qiáng)其功能,進(jìn)一步加速軟骨退變進(jìn)程[18],引導(dǎo)軟骨降解并最終導(dǎo)致OA形成[19]。因此,有學(xué)者在體外實(shí)驗(yàn)中也運(yùn)用IL-lβ誘導(dǎo)軟骨細(xì)胞,成功復(fù)制退變軟骨細(xì)胞模型[20]。結(jié)合Sanchez等[21]的既往研究,本研究將10 ng·mL-1作為IL-1β誘導(dǎo)濃度,結(jié)果發(fā)現(xiàn)誘導(dǎo)后軟骨細(xì)胞呈多邊形改變,邊緣可見(jiàn)少量指狀突起,體積增大,折光度下降;胞核增大染色變淺,胞膜和胞漿不清晰,細(xì)胞增殖速度減慢。
Ⅱ型膠原免疫組化染色也顯示IL-1β誘導(dǎo)后軟骨細(xì)胞胞漿染色變淺,胞核不染色。該鑒定結(jié)果與前期研究結(jié)果一致[22],也進(jìn)一步證實(shí)IL-lβ誘導(dǎo)復(fù)制退變軟骨細(xì)胞模型的可行性,也為本實(shí)驗(yàn)奠定基礎(chǔ)。
miRNA是非編碼蛋白的RNA分子,由20~22個(gè)核苷酸組成,能夠通過(guò)對(duì)信使RNA的負(fù)性調(diào)節(jié)從而調(diào)控人類基因的轉(zhuǎn)錄與表達(dá),成熟的miRNA在物種進(jìn)化過(guò)程中相當(dāng)保守,其轉(zhuǎn)錄過(guò)程具有嚴(yán)格的時(shí)空特異性[23-24]。miRNA-140特異性表達(dá)于軟骨組織中,隨著軟骨細(xì)胞分化成熟其表達(dá)量逐漸增加,是維持軟骨組織分化、成熟、形態(tài)和功能最重要的miRNA之一[25]。研究表明,miRNA-140高表達(dá)可顯著抑制IL-1β產(chǎn)生[26-27]。endprint
Miyaki等[26]通過(guò)miRNA-140基因敲除小鼠模型的觀察,發(fā)現(xiàn)基因缺陷小鼠四肢短小、顱面畸形,關(guān)節(jié)軟骨在幼齡即出現(xiàn)蛋白多糖的丟失和細(xì)胞外基質(zhì)的降解從而出現(xiàn)OA樣改變。而過(guò)表達(dá)miRNA-140的小鼠則能夠抵抗引起OA的各種因素,預(yù)防OA的發(fā)生。Karlsen等[28]通過(guò)研究體外誘導(dǎo)出miRNA-140高表達(dá)的軟骨細(xì)胞,發(fā)現(xiàn)miRNA-140可從多種途徑延緩OA的發(fā)展:
miRNA-140可降低炎癥因子IL-1β、IL-6和IL-8的表達(dá),減輕OA軟骨組織的炎癥反應(yīng);增加軟骨保護(hù)性蛋白SOX9、ACAN和CSGALNACT1的水平;下調(diào)ADAMTS5引起的軟骨細(xì)胞外基質(zhì)的降解,并提高其抑制劑SDC4的水平。進(jìn)一步驗(yàn)證了miRNA-140在軟骨細(xì)胞的修復(fù)過(guò)程中的重要意義(P < 0.05),為關(guān)節(jié)軟骨再生機(jī)制提供了一種新的見(jiàn)解,有潛在的治療意義。
本研究發(fā)現(xiàn),獨(dú)活寄生湯含藥血清組miRNA-140相對(duì)表達(dá)量隨著干預(yù)時(shí)間的延長(zhǎng)逐漸增加,在24,48,72 h分別為1.2651±0.095,.6324±0.0534,1.9772±0.0146,各時(shí)間點(diǎn)間差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05),表明獨(dú)活寄生湯含藥血清能增加退變軟骨細(xì)胞中miRNA-140的表達(dá)。由此推測(cè)獨(dú)活寄生湯治療膝OA的可能分子機(jī)制是通過(guò)增加
miRNA-140表達(dá),進(jìn)而降低IL-1β和ADAMTS-5表達(dá),減輕炎癥對(duì)軟骨組織的刺激,對(duì)OA起防治作用,具體機(jī)制有待于進(jìn)一步深入研究。
5 參考文獻(xiàn)
[1] 邵翔,陳后煌,陳達(dá),等.透骨消痛膠囊抑制脂多糖誘導(dǎo)軟骨細(xì)胞炎癥反應(yīng)的機(jī)制研究[J].國(guó)際骨科學(xué)雜志,2016,37(6):406-410.
[2] 王武煉,葉錦霞,劉獻(xiàn)祥,等.獨(dú)活寄生湯加減內(nèi)服外洗治療膝骨性關(guān)節(jié)炎66 例臨床觀察[J].福建中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào),2011,21(2):44-46.
[3] 李西海,張翼,葉蕻芝,等.獨(dú)活寄生湯治療風(fēng)寒濕痹型膝骨關(guān)節(jié)炎的機(jī)制[J].中醫(yī)正骨,2012,24(1):68-71.
[4] Wu GW,F(xiàn)an HL,Huang YP,et al.Duhuo Jisheng Decoction-containing serum promotes proliferation of interleukin-1β-induced chondrocytes through the p16-cyclin D1/CDK4-Rb pathway[J].Mol Med Reports,2014,10(5):2525-2534.
[5] Wu GW,Chen WL,F(xiàn)an HL,et al.Duhuo Jisheng Decoction promotes chondrocyte proliferation through accelerated G1/S transition in osteoarthritis[J].Int J Mol Med,2013,32(5):1001-1010.
[6] 吳廣文,王武煉,潘彩彬,等.獨(dú)活寄生湯含藥血清對(duì)大鼠退變軟骨細(xì)胞線粒體凋亡通路的影響[J].風(fēng)濕病與關(guān)節(jié)炎,2014,3(10):5-9.
[7] Zheng CS,Xu XJ,Ye HZ,et al.Computational approaches for exploring the potential synergy and polypharmacology of Duhuo Jisheng Decoction in the therapy of osteoarthritis[J].Mol Med Reports,2013,7(6):1812-1818.
[8] 黃繼汗,黃曉暉,陳志揚(yáng),等.藥理試驗(yàn)中動(dòng)物間和動(dòng)物與人體間的等效劑量換算[J].中國(guó)臨床藥理學(xué)與治療學(xué),2004,9(9):1069.
[9] 彭程,肖濤,羅遠(yuǎn)明,等.IGF-1對(duì)IL-1誘導(dǎo)的兔關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞NO和PGE2的影響[J].中南大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2008,33(3):197.
[10] Winer J,Jung CK,Shackel I,et al.Development and validation of real-time quantitative reverse transcriptase-polymerase chain reaction for monitoring gene expression in cardiac myocytes in vitro[J].Anal Biochem,1999,270(1):41-49.
[11] Schmittgen TD,Zakrajsek BA,Mills AG,et al.Quantitative reverse transcription-polymerase chain reaction to study mRNA decay:comparison of endpoint and real-time methods[J].Anal Biochem,2000,285(2):194-204.
[12] 吳追樂(lè),李西海,吳廣文,等.透骨消痛膠囊含藥血清對(duì)軟骨細(xì)胞線粒體凋亡通路的影響[J].中華中醫(yī)藥雜志,2011,26(2):343-346.
[13] 吳廣文,褚劍鋒,許惠鳳,等.透骨消痛膠囊含藥血清對(duì)退變關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞表達(dá)TNF-α、IL-1β的影響[J].世界中西醫(yī)結(jié)合雜志,2012,7(4):295-298.
[14] 劉獻(xiàn)祥.基于陳可冀學(xué)術(shù)思想之骨性關(guān)節(jié)炎研究[J].康復(fù)學(xué)報(bào),2016,26(1):2-5.endprint
[15] 李西海,劉獻(xiàn)祥.骨關(guān)節(jié)炎的核心病機(jī)-本痿標(biāo)痹[J].中醫(yī)雜志,2014,55(14):1248-1249,1252.
[16] Daheshia M,Yao JQ.The interleukin 1beta pathway in the pathogenesis of osteoarthritis[J].J Rheumatol,2008,35(12):2306-2312.
[17] 王海軍,于長(zhǎng)隆,岸裕幸,等.IL-1和TNF-α拮抗劑治療骨關(guān)節(jié)炎實(shí)驗(yàn)研究[J].中國(guó)運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2006,25(5):551-555.
[18] Goldring MB.Chondrogenesis,chondrocyte differentiation, and articular cartilage metabolism in health and osteoarthritis[J].Ther Adv Musculoskelet Dis,2012,4(4):269-285.
[19] 黃武君,談志龍,白人驍.細(xì)胞因子與骨性關(guān)節(jié)炎軟骨退變的研究現(xiàn)狀[J].中國(guó)骨傷,2006,19(10):635-638.
[20] Toegel S,Wu SQ,Piana C,et al.Comparison between chondroprotective effects of glucosamine,curcumin,and diacerein in IL-1 beta-stimulated C-28/I2 chondrocytes[J].Osteoarthritis Cartilage,2008,16(10):1205-1212.
[21] Sanchez C,Mathy-Hartert M,Deberg MA,et al.Effects of rhein on human articular chondrocytes in alginate beads[J].Biochem Pharmacol,2003,65(3):377-388.
[22] 吳福春.壯骨健膝方對(duì)IL-1β誘導(dǎo)后大鼠軟骨細(xì)胞增殖及Ⅱ型膠原表達(dá)影響的研究[D].福州:福建中醫(yī)藥大學(xué)骨傷學(xué)院,2009.
[23] Meza-Sosa KF,Pedraza-Alva G,Pérez-Martínez L.microRNAs:key triggers of neuronal cell fate[J].Front Cell Neurosci,2014,25(8):175.
[24] He Z,Jiang J,Kokkinaki M,et al.MiRNA-20 and MiRNA-106a Regulate Spermatogonial Stem Cell Renewal at the Post-transcriptional Level via Targeting STAT3 and Ccnd[J].Stem Cells,2013,31(10):2205-2217.
[25] Wienholds E,Kloosterman WP,Miska E,et al.MicroRNA expression in zebrafish embryonic development[J].Science,2005,309(5732):310-311.
[26] Miyaki S,Sato T,Inoue A,et al.MicroRNA-140 plays dual roles in both cartilage development and homeostasis[J].Genes Dev,2010,24(11):1173-1185.
[27] Miyaki S,Nakasa T,Otsuki S,et al.MicroRNA-140 is expressed in differentiated human articular chondrocytes and modulates interleukin-1 responses[J].Arthritis Rheum,2009,60(9):2723-2730.
[28] Karlsen TA,de Souza GA,?degaard B,et al.microRNA-140 Inhibits Inflammation and Stimulates Chondrogenesis in a Model of Interleukin 1β-induced Osteoarthritis[J].Mol Ther Nucleic Acids,2016,5(10):e373.endprint