李 婷 , 李 歡 , 陳海英 , 杜翠紅 *
(1.集美大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,福建 廈門 361021;2.福建省水產(chǎn)品深加工工程研究中心,福建 廈門361021)
鯽魚MBSP的原核表達(dá)、純化及其多克隆抗體制備
李 婷1,2, 李 歡1,2, 陳海英1,2, 杜翠紅*1,2
(1.集美大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,福建 廈門 361021;2.福建省水產(chǎn)品深加工工程研究中心,福建 廈門361021)
構(gòu)建鯽魚肌原纖維結(jié)合型絲氨酸蛋白酶 (MBSP)的原核表達(dá)菌株Rosetta(pET28a-MBSP),獲得重組MBSP,以制備MBSP多克隆抗體。將鯽魚MBSP全長基因(MBSP)借助表達(dá)載體pET-28a構(gòu)建重組表達(dá)菌株Rosetta(pET28a-MBSP),并進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)后獲得重組MBSP。利用Ni-NTA agarose親和層析柱純化重組蛋白并進(jìn)行質(zhì)譜鑒定。以純化后的重組MBSP作為抗原免疫新西蘭兔,獲得MBSP多克隆抗體。分別采用ELISA和Western blot技術(shù)測(cè)定其效價(jià)和特異性。誘導(dǎo)表達(dá)的重組蛋白經(jīng)SDS-PAGE分析、Western blot檢測(cè)及質(zhì)譜鑒定,結(jié)果表明該蛋白質(zhì)為重組MBSP,其相對(duì)分子質(zhì)量約為28×103,與天然MBSP大小一致,主要以包涵體形式存在。將其免疫兔子后,從血清中獲得了與MBSP發(fā)生特異性反應(yīng)的高效價(jià)多克隆抗體。本研究中成功表達(dá)和純化了重組MBSP蛋白,制備了高效價(jià)的特異性MBSP多克隆抗體,為MBSP的相關(guān)研究奠定基礎(chǔ)。
肌原纖維結(jié)合型絲氨酸蛋白酶;原核表達(dá);蛋白純化;Western blot;多克隆抗體
肌原纖維結(jié)合型絲氨酸蛋白酶(MBSP)是一種堿性蛋白酶,屬于絲氨酸蛋白酶家族中的一員,因其與肌原纖維蛋白緊密結(jié)合而得名。有關(guān)魚類MBSP的報(bào)道已經(jīng)證實(shí),魚類MBSP可降解肌原纖維蛋白,從而造成魚糜制品凝膠劣化,降低其商業(yè)價(jià)值[1-3],因此,有必要對(duì)魚類MBSP進(jìn)行深入研究,并開發(fā)其酶抑制劑。關(guān)于魚類MBSP的分離純化目前已有報(bào)道:如Osatomi等[4]在1997年獲得鯉魚肌肉的MBSP;隨后Cao等分別從狗母魚[5-6]、白鰱魚[7]、白姑魚[8]和鯽魚[9]等魚類肌肉中也純化了MBSP。同時(shí)文獻(xiàn)報(bào)道[5-11],魚類MBSP具有與胰蛋白酶相似的底物特異性,而其熱穩(wěn)定較高,有望開發(fā)為一種蛋白質(zhì)譜鑒定中的新型工具酶。但天然MBSP在有些魚類中含量很低、不易檢測(cè),從而影響對(duì)其分離純化和深入研究,因此,MBSP基因的克隆和重組表達(dá)受到研發(fā)人員的關(guān)注。目前已通過RACE技術(shù)克隆到了鯽魚[9]、鯉魚[12]和鰱魚的MBSP基因序列,從而為魚類MBSP的重組表達(dá)及其多克隆抗體的制備提供了前提保證。本文中采用基因重組技術(shù)在原核表達(dá)系統(tǒng)中獲得了重組鯽魚MBSP蛋白,并用該蛋白質(zhì)制備了特異性多克隆抗體,為進(jìn)一步研究MBSP的性質(zhì)和功能奠定了基礎(chǔ)。
1.1.1 主要試劑 限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ和NotⅠ,Taq DNA聚合酶,T4連接酶,λ-HindⅢ DNA Marker,2000 DNA marker,Protein Marker:購自大連寶生物公司;質(zhì)粒提取試劑盒,DNA片段回收試劑盒:購自上海天根生物有限公司;蛋白胨,酵母提取物,IPTG,丙烯酰胺,氯化鈉及過硫酸銨等:購自上海生工生物有限公司;Ni-NTA agarose:購自Pharmacia公司;HRP標(biāo)記的羊抗兔:購自泰京生物有限公司;NC膜:購自美國Millipore公司;完全佐劑和不完全佐劑:購自德國Sigma公司。其他化學(xué)試劑均為分析純。
1.1.2 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 3只新西蘭大白兔,每只體重約2.5 kg,購自松江區(qū)松聯(lián)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物場(chǎng)。
1.1.3 菌株與載體 大腸桿菌菌株DH5α和Rosetta、表達(dá)載體pET-28a均由本實(shí)驗(yàn)室保存,其中菌株DH5α為克隆宿主,菌株Rosetta為表達(dá)宿主;重組克隆質(zhì)粒pMD19-T-MBSP由本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建。
1.2.1 PCR引物設(shè)計(jì)及鯽魚MBSP基因(MBSP)的PCR擴(kuò)增 參照 GenBank(DQ872434)中報(bào)道的鯽魚MBSP的cDNA序列設(shè)計(jì)特異性引物,其核苷酸序列分別為:
以上引物交由上海Invitrogen公司合成。
以重組克隆質(zhì)粒pMD19-T-MBSP為模板,利用以上設(shè)計(jì)的特異性引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增,以獲得帶有限制性內(nèi)切酶EcoRⅠ和NotⅠ的鯽魚MBSP基因(MBSP)片段。PCR條件為:95℃預(yù)變性5 min,95℃變性 45 s,55℃退火 1 min,72℃延伸 1 min,30個(gè)循環(huán),72℃延伸10 min。采用瓊脂糖凝膠電泳對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè),利用DNA片段回收試劑盒對(duì)PCR產(chǎn)物進(jìn)行回收。
1.2.2 重組表達(dá)質(zhì)粒pET-28a-MBSP的構(gòu)建 將質(zhì)粒pET-28a和1.2.1中獲得的PCR產(chǎn)物 (即:MBSP基因片段)同時(shí)進(jìn)行EcoRⅠ和NotⅠ雙酶切,瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行分離,DNA片段回收試劑盒進(jìn)行回收,使用T4連接酶16℃過夜連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α感受態(tài),通過含50 μg/mL卡那霉素的LB平板篩選轉(zhuǎn)化子,于37℃,200 r/min震蕩培養(yǎng)后提取質(zhì)粒,經(jīng)EcoRⅠ和NotⅠ雙酶切驗(yàn)證得到陽性轉(zhuǎn)化子,送至上海Invitrogen公司進(jìn)行測(cè)序,進(jìn)一步確認(rèn)重組質(zhì)粒pET-28a-MBSP中目的基因序列及其閱讀框架的正確性。
1.2.3 重組表達(dá)菌株Rosetta(pET-28a-MBSP)的構(gòu)建及其誘導(dǎo)表達(dá) 質(zhì)粒提取試劑盒提取測(cè)序正確的重組質(zhì)粒pET28a-MBSP,42℃熱激轉(zhuǎn)化Rosetta感受態(tài)細(xì)胞,挑取LB(含50 μg/mL卡那霉素)平板篩選的陽性轉(zhuǎn)化子進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng),提取質(zhì)粒進(jìn)行PCR驗(yàn)證(反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性5 min,95℃變性45 s,55℃退火 1 min,72℃延伸 1 min,30個(gè)循環(huán),72℃延伸10 min),從而獲得重組表達(dá)菌株Rosetta(pET-28a-MBSP)。
將重組表達(dá)菌株Rosetta(pET-28a-MBSP)接種至10 mL LB培養(yǎng)基中進(jìn)行活化,按體積分?jǐn)?shù)1%接種量轉(zhuǎn)接50 mL LB培養(yǎng)基中,37℃,200 r/min震蕩培養(yǎng)至OD600為1.5,加入乳糖至終質(zhì)量濃度為4 mg/L,誘導(dǎo)表達(dá)8 h,以未加誘導(dǎo)劑的細(xì)菌培養(yǎng)物為陰性對(duì)照,重復(fù)3次。
1.2.4 SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)檢測(cè)及Western blot鑒定 收集誘導(dǎo)表達(dá)的菌體進(jìn)行超聲波破碎,冷凍離心,分別收集上清和沉淀,進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè),并用 (His)6標(biāo)簽的多克隆抗體(稀釋倍數(shù) 1∶2 000)進(jìn)行 Western blot鑒定,二抗為HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG(稀釋倍數(shù) 1∶20 000),以確定重組蛋白的相對(duì)分子質(zhì)量及其表達(dá)方式,具體步驟參照劉西之等[13]報(bào)道的方法。
1.2.5 重組MBSP的純化和質(zhì)譜鑒定 對(duì)重組表達(dá)菌株Rosetta(pET-28a-MBSP)進(jìn)行大量誘導(dǎo)表達(dá),離心收集菌體,用破菌緩沖液(0.02 mol/L Tris-HCl(pH 8.0),0.15 mol/L NaCl)重懸菌體,超聲波破菌,離心收集包涵體沉淀,用溶菌緩沖液(0.01 mol/L Tris-HCl (pH 8.0),0.1 mol/L NaH2PO4,8 mol/L 尿素)攪拌使之充分溶解,離心收集上清液。將上清液與經(jīng)平衡緩沖液 A1(0.05 mol/L Na2HPO4,0.015 mol/L咪唑,0.5 mol/L NaCl,8 mol/L尿素)處理過的Ni-NTA agarose充分結(jié)合,緩沖液A2(0.05 mol/L Na2HPO4,0.03 mol/L 咪 唑 ,0.5 mol/L NaCl,8 mol/L尿素)洗去雜蛋白質(zhì),洗脫液(0.05 mol/L Na2HPO4,0.3 mol/L 咪唑,0.5 mol/L NaCl,8 mol/L 尿素) 洗脫目的蛋白質(zhì),即獲得純化的含(His)6標(biāo)簽的重組蛋白,分別進(jìn)行SDS-PAGE分析和Western blot鑒定。將SDS-PAGE電泳分離的MBSP目的條帶切下,送至上海中科新生命生物科技有限公司進(jìn)行MALDITOF-MS質(zhì)譜鑒定。
1.2.6 MBSP多克隆抗體的制備及其檢測(cè) 將純化后的重組MBSP(質(zhì)量濃度為1.0 mg/mL)與等體積弗氏完全佐劑混勻并充分乳化后,分散15個(gè)點(diǎn)對(duì)新西蘭兔脊柱兩側(cè)進(jìn)行皮下免疫注射(每次200 μg的重組MBSP)。初次免疫后,每間隔兩周加強(qiáng)免疫,劑量如前,共免疫4次。第1次用弗氏完全佐劑,其余用弗氏不完全佐劑。免疫完成后取血測(cè)效價(jià),效價(jià)達(dá)到理想值后再進(jìn)行兔頸動(dòng)脈取血,5 000 r/min離心10 min,分離血清,于-80℃保存。采用ELISA法,以純化的重組MBSP作為包被抗原,一抗為免疫兔血清,二抗為HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG,一抗的稀 釋 梯 度 分 別 :1/50、1/502、1/503、1/504、1/505、1/506,1/507,TMB 顯色后,在 λ=450 nm 處測(cè)定光密度值。確定抗體效價(jià)后,采用Western blot的方法檢測(cè)免疫兔血清的特異性,具體步驟參考1.2.4。
以重組克隆質(zhì)粒pMD19-T-MBSP為模板,采用PCR技術(shù)擴(kuò)增鯽魚MBSP基因片段,PCR產(chǎn)物為700 bp左右(圖1),與預(yù)期大小相符。將表達(dá)載體pET-28a和MBSP基因片段進(jìn)行雙酶切,采用T4連接酶將二者連接后成功轉(zhuǎn)入感受態(tài)DH5α,提取重組質(zhì)粒,雙酶切獲得約700 bp的目的基因片段和5 000 bp左右的載體pET-28a線性片段 (圖 2),DNA測(cè)序結(jié)果證實(shí)目的基因大小為669 bp,其基因序列和閱讀框架均正確,重組表達(dá)質(zhì)粒pET-28a-MBSP構(gòu)建成功。
重組表達(dá)質(zhì)粒pET-28a-MBSP轉(zhuǎn)入到大腸桿菌Rosetta感受態(tài)細(xì)胞后,進(jìn)行菌落PCR驗(yàn)證 (圖3),結(jié)果顯示表達(dá)菌株 Rosetta(pET-28a-MBSP)構(gòu)建成功。
圖1 MBSP基因的PCR產(chǎn)物的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果Fig.1 AgarosegelelectrophoresisanalysisofPCR product of MBSP
圖2 重組質(zhì)粒pET-28a-MBSP的雙酶切鑒定結(jié)果Fig.2 Identification of the recombinant plasmid pET-28a-MBSP( EcoRⅠand NotⅠ)
圖3 重組質(zhì)粒pET-28a-MBSP的PCR鑒定Fig.3 Identification of the recombinant plasmid pET-28a-MBSP
表達(dá)菌株Rosetta(pET-28a-MBSP)經(jīng)乳糖誘導(dǎo)表達(dá),超聲波破碎,分別取全菌、上清液及沉淀進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)及Western bolt鑒定(圖4)。結(jié)果顯示,誘導(dǎo)表達(dá)的菌液中出現(xiàn)一條相對(duì)分子質(zhì)量為28×103左右的蛋白質(zhì)條帶,該條帶可以與(His)6標(biāo)簽的多克隆抗體進(jìn)行免疫雜交反應(yīng),說明該蛋白質(zhì)為重組蛋白。該重組蛋白與天然鯽魚MBSP的相對(duì)分子質(zhì)量一致,且以包涵體形式存在。
圖4 MBSP重組蛋白的SDS-PAGE檢測(cè)及Western blot鑒定結(jié)果Fig.4 SDS-PAGE and Western blotanalysisof recombinant MBSP
將誘導(dǎo)表達(dá)后得到的包涵體用8 mol/L尿素溶解后,采用Ni-NTA agarose親和層析對(duì)其進(jìn)行純化,通過SDS-PAGE檢測(cè)和Western blot鑒定 (圖5),得到電泳級(jí)純度為85% 以上的重組MBSP。將純化后的MBSP進(jìn)行MALDI-TOF-MS質(zhì)譜鑒定(圖6),結(jié)果顯示純化后的產(chǎn)物確定為鯽魚MBSP,可用來制備多克隆抗體。
圖5 純化的重組MBSP的SDS-PAGE檢測(cè)和Western blot鑒定結(jié)果Fig.5 SDS-PAGE and Western blot analysis of purified recombinant MBSP
圖6 鯽魚MBSP的氨基酸序列及重組MBSP質(zhì)譜鑒定肽段序列覆蓋圖Fig.6 Amino acid sequence of crucian carp MBSP and fragments of recombinant MBSP mature peptides digested by trypsin
用純化的重組MBSP免疫新西蘭兔獲得血清,采用ELISA法檢測(cè)其效價(jià),結(jié)果顯示其抗體效價(jià)達(dá)到 1∶503倍(圖 7)。
圖7 ELISA檢測(cè)MBSP多克隆抗體效價(jià)Fig.7 ELISA detection of the MBSP polyclonal antibody titer
以MBSP的多克隆抗體為一抗,帶HRP標(biāo)記的羊抗兔IgG為二抗進(jìn)行Western blot驗(yàn)證(圖8),結(jié)果表明,陰性對(duì)照(未經(jīng)誘導(dǎo)的菌液)沒有特異性條帶(圖 8(b),lane 2B),而大腸桿菌表達(dá)的重組MBSP(圖8(b),lane 1B)和畢赤酵母表達(dá)的重組MBSP(圖 8(b),lane 3B)均出現(xiàn)特異性條帶,表明 MBSP的多克隆抗體制備成功。其中,畢赤酵母表達(dá)的重組MBSP由本研究室提供,實(shí)驗(yàn)結(jié)果有待發(fā)表。
魚類的MBSP在魚糜制品生產(chǎn)過程中被認(rèn)為是導(dǎo)致凝膠劣化的主要因素[1]。因此,有必要對(duì)不同魚類MBSP的進(jìn)行分離純化及其酶學(xué)性質(zhì)研究,以開發(fā)其酶抑制劑。另一方面,MBSP是一種與胰蛋白酶性質(zhì)相似的絲氨酸蛋白酶,但其熱穩(wěn)定性優(yōu)于哺乳動(dòng)物的胰蛋白酶[5-11]。而在蛋白質(zhì)的質(zhì)譜鑒定中,常用胰蛋白酶或蛋白內(nèi)切酶Lys-C作為工具酶對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行降解以生成小肽[14-15]。但胰蛋白酶的熱穩(wěn)定性差,而內(nèi)切酶Lys-C價(jià)格偏高,影響了其實(shí)際使用。因此,將MBSP開發(fā)為蛋白質(zhì)質(zhì)譜鑒定中的工具酶,具有很好的應(yīng)用前景和商業(yè)價(jià)值。然而,天然MBSP在有些魚類體內(nèi)含量極低,常常檢測(cè)不到該酶的存在,從而造成其分離純化困難,因此,有必要通過基因重組技術(shù)獲得大量的重組MBSP。一方面通過制備多克隆抗體以提高檢測(cè)MBSP的靈敏度;另一方面也有利于研究其酶學(xué)性質(zhì)及其應(yīng)用開發(fā)。
圖8 MBSP多克隆抗體的Western blot鑒定Fig.8 Western blotting analysis of MBSP polyclonal antibody
本文作者利用GenBank數(shù)據(jù)庫中已報(bào)道的鯽魚MBSP的cDNA序列設(shè)計(jì)特異性引物,采用RTPCR技術(shù)獲得編碼鯽魚MBSP成熟蛋白的基因序列,將其與表達(dá)載體pET-28a連接,轉(zhuǎn)入大腸桿菌表達(dá)宿主Rosetta中進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),獲得了重組鯽魚MBSP的包涵體蛋白(圖4)。同時(shí)本研究室還利用畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)對(duì)該蛋白質(zhì)進(jìn)行重組表達(dá),獲得了重組MBSP(實(shí)驗(yàn)結(jié)果有待發(fā)表)。其中,原核系統(tǒng)表達(dá)的重組MBSP的主要為包涵體蛋白,雖然其不具有生物學(xué)活性,但其表達(dá)量較高(圖8)、且?guī)в校℉is)6 標(biāo)簽(圖 4(b))便于采用親和層析技術(shù)進(jìn)行純化,以獲得純度較高的重組 MBSP,更適合用于多克隆抗體的制備;而真核系統(tǒng)表達(dá)的重組MBSP,雖然表達(dá)量較低(圖8),但其具有生物學(xué)活性,可用于研究其酶學(xué)性質(zhì)及其應(yīng)用開發(fā)。
本研究采用Ni-NTA agarose親和層析技術(shù)純化得到了電泳級(jí)為85% 以上的重組蛋白(圖5),通過質(zhì)譜鑒定技術(shù)確定該蛋白為重組鯽魚MBSP(圖7)。將重組MBSP免疫新西蘭兔,獲得了高效價(jià)的抗MBSP的特異性多克隆抗體。因免疫印跡具有高靈敏性,能與含量極低的抗原發(fā)生特異性結(jié)合。因此本文獲得的MBSP多克隆抗體可用于MBSP的檢測(cè)。
親和層析是利用生物分子間的特異性相互作用,通過將具有親和力的2個(gè)分子中的1個(gè)固定在不溶性基質(zhì)上,利用分子間親和力的特異性和可逆性對(duì)另一個(gè)分子進(jìn)行分離純化的技術(shù)。如本文中采用Ni-NTA agarose親和層析柱純化帶有 (His)6標(biāo)簽的重組蛋白(圖5);另外重組蛋白也常含有GST標(biāo)簽,可采用谷胱甘肽親和層析樹脂進(jìn)行純化。這兩種親和層析樹脂可成功純化原核表達(dá)的重組蛋白[16-18],但因天然蛋白不含(His)6標(biāo)簽和GST標(biāo)簽,使該層析柱無法應(yīng)用到天然蛋白的純化中。而本研究中所獲得的MBSP特異性多克隆抗體可制備特異性免疫親和層析樹脂,用來純化天然MBSP,以解決生物體內(nèi)MBSP含量低、分離純化步驟繁瑣、回收率低等問題,為MBSP的進(jìn)一步研究奠定基礎(chǔ)。
利用GenBank數(shù)據(jù)庫中已報(bào)道的鯽魚MBSP的cDNA序列設(shè)計(jì)特異性引物,獲得編碼鯽魚MBSP成熟蛋白的基因序列,成功構(gòu)建重組MBSP的原核表達(dá)菌株Rosetta/pET-28a-MBSP,并采用乳糖進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá),結(jié)果表明,重組蛋白在原核表達(dá)系統(tǒng)內(nèi)以包涵體形式成功表達(dá)。
采用Ni-NTA agarose親和層析技術(shù)對(duì)表達(dá)的包涵體蛋白進(jìn)行純化,得到了電泳級(jí)純度為85%以上的重組蛋白,通過質(zhì)譜鑒定技術(shù)確定該蛋白質(zhì)為重組鯽魚MBSP。
將重組MBSP免疫新西蘭兔,獲得了高效價(jià)的抗MBSP的特異性多克隆抗體,可用于后續(xù)畢赤酵母表達(dá)重組MBSP的檢測(cè)。
[1]TOYOHARA H,SAKATA T,YAMASHITA K,et al.Degradation of oval-filefish meat gel caused by myofibrillar proteinase(s)[J].Journal of Food Science,1990,52(2):364-368.
[2]ZHONG C,CAI Q F,LIU G M,et al.Purification and characterisation of cathepsin L from the skeletal muscle of blue scad(Decapterus maruadsi) and comparison of its role with myofibril-bound serine proteinase in the degradation of myofibrillar proteins[J].Food Chemistry,2012,133(4):1560-1568.
[3]QIU C J,XIA W S,JIANG Q X.Effect of high hydrostatic pressure(HHP) on myofibril-bound serine proteinases and myofibrillar protein in silver carp(Hypophthalmichthys molitrix)[J].Food research International,2013,52(1):199-205.
[4]OSATAOMI K,SASAI H,CAI M J,et al.Purification and characterization of myofibril-bound serine proteinase (MBSP) from carp Cyprinus carpio ordinary muscle[J].Comparative Biochemistry and Physiology.Part B:Biochemistry and Molecular Biology,1997,116(2):183-190.
[5]CAO M J,OSATOMI K,HARA K,et al.Identification of a myofibril-bound serine proteinase (MBSP) in the skeletal muscle of lizard fish Saurida wanieso which specifically cleaves the arginine site[J].Comparative Biochemistry and Physiology.Part B:Biochemistry and Molecular Biology,2000,125(2):155-264.
[6]OHKUBO M,MIYAGAWA K,OSATOMI K,et al.Purification and characterization of myofibril-bound serine protease from lizard fish (Saurida undosquamis) muscle[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part B:Biochemistry and Molecular Biology,2004,137:139-150.
[7]CAO M J,WU L L,HARA K,et al.Purification and characterization of myofibril-bound serine proteinase from the skeletal muscle of silver carp[J].Journal of Food Biochemistry,2005,29(5):533-546.
[8]OHKUBO M,OSATOMI K,HARA K,et al.A novel type of myofibril-bound serine protease from white croaker(Argyrosomus argentatus)[J].Comparative Biochemistry and Physiology.Part B:Biochemistry and Molecular Biology,2005,141(2):231-236.
[9]GUO C,CAO M J,LIU G M,et al.Purification,characterization,and cDNA cloning of a myofibril-bound serine proteinase from the skeletal muscle of crucian carp (Carassius auratus) [J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2007,55 (4):1510-1516.
[10]CAO M J,OSATOMI K,PANGKEY H,et al.Cleavage specificity of a myofibril-bound serine proteinase from carp(Cyprinus carpio) muscle[J].Comparative Biochemistry and Physiology Part B:Biochemistry and Molecular Biology,1999,123:399-405.
[11]DU Cuihong,CAO Minjie.Progress in research on myofibril-bound serine protease from fish[J].Food Science,2013,34(9):336-339(in Chinese).
[12]GUO C,LIANG Y L,LIU G M,et al.Molecular cloning of a myofibril-bound serine proteinase (MBSP) from common carp(Cyprinus carpio) muscle[J].Journal of Fisheries of China,2007,31(4):423-430.
[13]LIU Xizhi,QIU Xiaoyan,CAI Qiufeng,et al.Purification and characterization of pepsinogens and pepsins from banded grouper(Epinephelus awoara)[J].Journal of Fisheries of China,2011,35(11):1736-1744(in Chinese).
[14]RUAN M M,WU J M.Trypsin immobilized in sol-gel for high-throughput protein peptide mapping[J].Chin J Anal Chem,2006,34(12):1707-1710.
[15]GADGIL H S,BONDARENKO P V,PIPES G D,et al.Identification of cysteinylation of a free cysteine in the Fab region of a recombinant monoclonal IgG1 antibody using Lys-C limited proteolysis coupled with LC/MS analysis[J].Anal Biochem,2006,355(2):165-174.
[16]YE X,ZHANG L L,TIAN Y Y,et al.Identification and expression analysis of the g-type and c-type lysozymes in grass carp Ctenopharyngodon idellus[J].2010,34(5):501-509.
[17]LOO G H,SUTTON D L,SCHULLER K A.Cloning and functional characterisation of a peroxiredoxin 1(NKEF A)cDNA from Atlantic salmon (Salmo salar) and its expression in fish infected with Neoparamoeba perurans[J].Fish and Shellfish Immunology,2012,32(6):1074-1082.
[18]LIU Z Y,WANG Y,LU G D,et al.Cloning,sequencing and prokaryotic expression of cDNAs for antifreeze protein family from beetle Tenebrio molitor[J].Frontiers of Biology in China,2006,28(12):1532-1540.
歐盟擬設(shè)定谷氨酸鹽食品添加劑限額
2017年7月12日,歐洲食品安全局發(fā)表聲明說,該機(jī)構(gòu)對(duì)谷氨酸和谷氨酸鹽的安全性進(jìn)行了重新評(píng)估,認(rèn)為消費(fèi)者攝入這類食品添加劑的最大限額為每天每公斤體質(zhì)量30毫克。
在歐盟,谷氨酸和谷氨酸鹽被允許作為食品添加劑使用,以提高食物的鮮味。目前歐盟批準(zhǔn)食品中添加谷氨酸鹽的質(zhì)量分?jǐn)?shù)最高水平為10 g/kg。
歐洲食品安全局說,為保護(hù)消費(fèi)者安全,該機(jī)構(gòu)對(duì)谷氨酸、谷氨酸鈉、谷氨酸鉀、谷氨酸鈣、谷氨酸銨以及谷氨酸鎂這些食品添加劑的每日允許攝入量進(jìn)行了分析。根據(jù)對(duì)動(dòng)物進(jìn)行的毒性試驗(yàn),提出了不會(huì)產(chǎn)生不良反應(yīng)的最高劑量標(biāo)準(zhǔn)。谷氨酸鹽可能給人帶來的不良反應(yīng)包括頭疼、血壓增高以及胰島素水平增加等。
據(jù)介紹,歐洲食品安全局提出的這個(gè)標(biāo)準(zhǔn)還只是一個(gè)建議,將遞交給歐盟委員會(huì)以及歐盟各成員國負(fù)責(zé)食品監(jiān)管的機(jī)構(gòu)和人士。
谷氨酸是一種氨基酸,西紅柿、醬油以及某些奶酪等食品中存在天然形式的谷氨酸鹽。在食品工業(yè)上,谷氨酸及谷氨酸鹽常被用作食品添加劑,如味精的主要成分是谷氨酸鈉,谷氨酸鈣可以保證食物鮮味的同時(shí)降低含鹽量。
[信息來源]廈門WTO工作站.歐盟擬設(shè)定谷氨酸鹽食品添加劑限額 [EB/OL].(2017-7-13).http://www.xmtbt-sps.gov.cn/detail.asp?id=54854
Prokaryotic Expression,Purification of Myofibril-Bound Serine Proteinase from Crucian Carp(Carassius auratus) and Preparation of Its Polyclonal Antibody
LI Ting1,2, LI Huan1,2, CHEN Haiying1,2, DU Cuihong*1,2
(1.College ofFood and BiologicalEngineering,JimeiUniversity,Xiamen 361021,China;2.Engineering Research Center for Aquatic Products Processing of Fujian Province,Xiamen,361021,China)
An E.coli expression strain Rosetta (pET-28a-MBSP) of myofibril-bound serine proteinase(MBSP) from crucian carp(Carassius auratus) was constructed.The recombinant MBSP(rMBSP) was expressed and purified in order to prepare its polyclonal antibody,which would lay a foundation for further studies on the MBSP.The MBSP gene was transformed into Rosetta by sub-cloning it into pET-28a vector to construct the strain Rosetta(pET-28a-MBSP).The recombinant strain was induced to express MBSP by lactose.The recombinant protein was purified by Ni-NTA agarose affinity column chromatography,MALDI-TOF-MS identification,and then use as theantigen to immune the rabbits to prepare polyclonal antibody.Antibody titer was assayed by ELISA and specificity was detected by western blot.SDS-PAGE,western blot and MALDI-TOF-MS analysis showed that the recombinant protein was the recombinant MBSP (rMBSP)with molecular weight of approximately 28 ×103,which was similar to native MBSP from the skeletal muscle of crucian carp.And the rMBSP was expressed in prokaryotic expression system in mainly inclusion body.The serum with a high titer and specificity was obtained from immunized rabbit.The recombinant MBSP was expressed and purified successfully.The MBSP's polyclonal antibody with a high titer and specificity was obtained by immunization using the purified MBSP.
myofibril-bound serine proteinase,prokaryotic expression,protein purification,western blot,polyclonal antibody
Q 78
A
1673—1689(2017)08—0877—07
10.3969/j.issn. 1673-1689.2017.08.014
2015-07-03
福建省自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2010J01212);廈門市海洋漁業(yè)局項(xiàng)目(14CZP03HJ04)。
*通信作者:杜翠紅(1967—),女,江西臨汾人,理學(xué)博士,教授,碩士研究生導(dǎo)師,主要從事分子生物學(xué)研究。E-mail:cuihongdu@jmu.edu.cn
李婷,李歡,陳海英,等.鯽魚MBSP的原核表達(dá)、純化及其多克隆抗體制備[J].食品與生物技術(shù)學(xué)報(bào),2017,36(08):877-883.