劉 震, 董高超, 孫 林, 莫 朕, 夏亞穆
(青島科技大學(xué) 化工學(xué)院,山東 青島 266042)
代謝工程是指利用基因重組技術(shù)有目的地對細(xì)胞代謝途徑進(jìn)行修飾、改造,改變細(xì)胞特性,結(jié)合細(xì)胞基因調(diào)控、代謝調(diào)控及生化工程,通過構(gòu)建新的代謝途徑來生產(chǎn)特定目的產(chǎn)物而發(fā)展起來的一門應(yīng)用性學(xué)科。二十世紀(jì)七十年代開始,隨著基因工程的迅猛發(fā)展,人們認(rèn)識到利用重組DNA技術(shù)可以改造微生物代謝途徑中特定的酶反應(yīng),在此基礎(chǔ)上1991年首次提出代謝工程的概念。經(jīng)過二十多年的發(fā)展,代謝工程逐漸發(fā)展成為一個新的學(xué)術(shù)領(lǐng)域,其利用重組DNA技術(shù),有目的地操控細(xì)胞轉(zhuǎn)錄、調(diào)控以及酶的功能,改善細(xì)胞活性,廣泛應(yīng)用于微生物、植物和動物細(xì)胞中,一定程度上改變了人們的生活。外源基因?qū)胧腔蚬こ萄芯恐兄匾沫h(huán)節(jié),傳統(tǒng)的基因轉(zhuǎn)化方法主要包括載體介導(dǎo)轉(zhuǎn)化和外源基因直接導(dǎo)入兩大類。在此期間,其他的一些無選擇標(biāo)記基因的方法如基因打靶和染色體工程應(yīng)運而生,這更大程度上源于對物種調(diào)節(jié)再生機制和轉(zhuǎn)化過程機理的了解。更進(jìn)一步,在染色體特定的區(qū)域無選擇性標(biāo)記基因和基因整合可以推進(jìn)代謝工程的實施。代謝途徑的基因修飾是代謝工程實施的重點,常見的策略包括引入目的靶基因、干涉靶基因的表達(dá)或?qū)刂粕锖铣傻霓D(zhuǎn)錄因子進(jìn)行修飾。鋅酯核酸酶是近年來發(fā)展起來的定向改變基因組序列的技術(shù),其在植物和微生物中的研究對于新藥研發(fā)和新品種選育等方面有著廣闊的前景。傳統(tǒng)沉默策略常常因序列同源性使整個基因序列不表達(dá),鋅酯核酸酶和具有轉(zhuǎn)錄活性的效應(yīng)器核酸酶可以由足夠的特異性基因組來設(shè)計。
早期,人們利用微生物發(fā)酵獲得發(fā)酵產(chǎn)品,對其開發(fā)利用主要集中在篩選高產(chǎn)菌株方面。隨著代謝工程的發(fā)展,微生物發(fā)酵產(chǎn)業(yè)朝向目標(biāo)產(chǎn)物生產(chǎn)的發(fā)展。代謝工程基于對細(xì)胞代謝網(wǎng)絡(luò)的研究,控制酶的轉(zhuǎn)錄和翻譯,一方面人們可以調(diào)控微生物代謝通過篩選獲得高產(chǎn)菌株,另一方面也可以轉(zhuǎn)入目的基因生產(chǎn)特定的目標(biāo)產(chǎn)物。
很多結(jié)構(gòu)復(fù)雜的天然化合物在自然界中含量比較低,很難大量獲得,設(shè)計微生物代謝生產(chǎn)一些藥物和前體藥物成為人們研究的重點。與其他高等生物相比,微生物細(xì)胞生長繁殖比較快速,并且微生物代謝途徑更容易修飾,因此人們可以在細(xì)胞水平上進(jìn)行代謝調(diào)控來生產(chǎn)這些藥物。該方法最初用于聚酮和肽類化合物的合成中[1],經(jīng)過十幾年發(fā)展,其在藥物的合成中得到了廣泛的應(yīng)用。Li等[2]在棒狀鏈霉菌中通過gap1和gap2的基因敲除并且在培養(yǎng)基中加入精氨酸,使鏈霉菌生產(chǎn)出抗生素克拉維酸。Asadollahi等[3]在釀酒酵母中異源表達(dá)植物倍半萜生物合成基因,下調(diào)ERG9基因并且在培養(yǎng)基中加入甲硫氨酸,使釀酒酵母菌生產(chǎn)出抗癌藥瓦倫烯、抗病毒藥蓽澄茄醇和抗菌藥廣藿香醇。2013年,Alonso-Gutierrez等[4]在大腸埃希菌中設(shè)計甲羥戊酸途徑和檸檬烯合酶表達(dá),使在大腸埃希菌中合成具有抑菌作用的檸檬烯和抗癌藥物紫蘇醇。2015年,Rodriguez等[5]通過敲除釀酒酵母菌兩種丙酮酸脫羧酶基因,并且引入大腸埃希菌莽草酸激酶,使釀酒酵母的香豆酸產(chǎn)量提高了7.9倍。
微生物發(fā)酵是工業(yè)原料的重要來源,代謝工程可以有目的地改造工業(yè)發(fā)酵菌種,使之高效地生產(chǎn)目標(biāo)產(chǎn)物。在丙酮丁醇梭菌中,丁醇的合成分為兩部分,Atsumi等[6]將其控制丁醇合成的基因組轉(zhuǎn)移到大腸埃希菌中,提高了正丁醇的產(chǎn)量。2011年,Yu等[7]通過敲除酪丁酸梭菌的乙酸激酶突變體也提高了丁醇的產(chǎn)量。2013年,Curran等[8]將三步合成途徑基因?qū)脶劸平湍妇?,使得粘康酸第一次在釀酒酵母菌中合成。Runguphan等[9]在釀酒酵母中過表達(dá)參與脂肪酸合成的3個基因:乙酰-CoA羧化酶(ACC1)、脂肪酸合酶1(FAS1)和脂肪酸合酶2(FAS2),增加了釀酒酵母中脂肪酸的產(chǎn)量。
植物在生長、代謝過程中會合成一些對植物體本身生命活動沒有明確功能的物質(zhì),這些物質(zhì)稱為次級代謝產(chǎn)物,也是天然產(chǎn)物的重要來源。代謝工程可通過基因工程技術(shù)改變或構(gòu)建新的植物代謝途徑,以獲得有價值的次級代謝產(chǎn)物,其在植物中的應(yīng)用主要有兩方面,一是提高植物源天然產(chǎn)物產(chǎn)量,二是提高農(nóng)作物產(chǎn)量和營養(yǎng)價值。
幾個世紀(jì)以來,植物一直作為活性藥物的來源。近年來,統(tǒng)計表明75%的抗菌藥物和48.6%的抗癌藥物是天然產(chǎn)物或天然產(chǎn)物類似物[10]。其中許多天然藥物是通過物種特異性控制復(fù)雜的生物合成途徑獲得的[11],例如莽草酸途徑、非甲羥戊酸途徑和甲羥戊酸途徑。這些途徑合成了包括萜類、生物堿、類黃酮和花青素等許多結(jié)構(gòu)多樣的化合物。一般情況下,人們通過分離提取來獲得這些結(jié)構(gòu)復(fù)雜的化合物,由于植物體內(nèi)次級代謝產(chǎn)物含量很低,不能滿足人們正常需求。隨著基因重組技術(shù)的發(fā)展,人們可以改造植物代謝途徑,通過轉(zhuǎn)入或刪除某些關(guān)鍵酶基因,促進(jìn)或抑制該基因表達(dá),包括引入目的靶基因、干涉靶基因的表達(dá)或?qū)刂粕锖铣傻霓D(zhuǎn)錄因子進(jìn)行修飾等,調(diào)控次級代謝產(chǎn)物及含量,解決天然源化合物獲取不足問題。Polturak等[12]對甜菜和紫茉莉進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組分析,確定了新的甜菜紅色素細(xì)胞相關(guān)P450型基因,將其導(dǎo)入煙草細(xì)胞中獲得了該色素的異源生產(chǎn)。Kai等[13]通過編碼引入3-羥基-3-甲基輔酶A還原酶、1-脫氧-D-木酮糖-5-磷酸核酶和香葉基焦磷酸合成酶到丹參植物中,獲得了高產(chǎn)量的二萜類化合物丹參酮,此類化合物廣泛用于治療心血管疾病。紫杉醇是有效的抗癌化合物,目前用于治療卵巢癌、乳腺癌和肺癌,以及艾滋病卡波濟(jì)氏肉瘤。紫杉醇在紅豆杉樹皮中含量極低,如今研究方向轉(zhuǎn)為通過代謝工程提高紫杉醇產(chǎn)量,從而降低生產(chǎn)成本。通過前體喂養(yǎng)、雜交探針和差異基因表達(dá)研究證實了紫杉醇合成路徑中19步假定的步驟[14-15]如圖1所示。紫杉烯合成酶(TASY)是紫杉醇的生物合成最關(guān)鍵的一種酶,如果在毛狀根培養(yǎng)時上調(diào)該基因的表達(dá)可以增加得到265%的紫杉醇產(chǎn)量[16]。Groteau等[17]通過正向調(diào)控參與脫落酸生物合成的關(guān)鍵基因-9-順-環(huán)氧類雙加氧酶基因,使紅豆杉懸浮培養(yǎng)細(xì)胞的脫落酸積累量增加了48%和紫杉醇積累量達(dá)到2.7倍。
2014年,糧農(nóng)組織發(fā)布的《糧食不安全狀況2014》指出,全世界饑餓人口高達(dá)10.2億,創(chuàng)歷史最高水平。利用代謝工程調(diào)控植物代謝可以增加農(nóng)作物產(chǎn)量和營養(yǎng)價值,緩解糧食危機。2013年,Pons等[18]通過RNA干擾阻斷內(nèi)源性β胡蘿卜素羥化酶基因(Csβ-CHX)增強了橙子中β-胡蘿卜素的含量,同時通過過表達(dá)植物開花控制基因(CsFT),縮短了果實成熟周期。在水稻胚乳中水仙花八氫番茄紅素合成酶的表達(dá)使得無色胡蘿卜素八氫番茄紅素得以積累,獲得“金谷”[19]。β-胡蘿卜素羥化酶和β-胡蘿卜素酮化酶是藻類中參與蝦青素合成的兩種關(guān)鍵酶,Huang等[20]將這兩種酶在番茄中過表達(dá)增加了番茄中蝦青素的含量,提高了番茄的營養(yǎng)價值。
圖1 紫杉醇的生物合成途徑Fig.1 Paclitaxel biosynthetic pathway
動物細(xì)胞的生長代謝和生理模式比較復(fù)雜,另一方面體外細(xì)胞培養(yǎng)受外界影響因素比較大,代謝工程在動物細(xì)胞中發(fā)展起步要晚。
動物細(xì)胞培養(yǎng)優(yōu)勢在于其復(fù)雜的蛋白質(zhì)表達(dá)能力,因此可以利用代謝工程優(yōu)化代謝途徑增加疫苗、抗體和生長因子等生物制品的生產(chǎn),或者構(gòu)建新的代謝途徑生產(chǎn)特定的生物藥物。楊振西等[21]通過構(gòu)建乙肝病毒S-抗原和preS1抗原表位融合蛋白載體轉(zhuǎn)入CHO細(xì)胞,篩選獲得了高表達(dá)S蛋白的CHO細(xì)胞系。體外培養(yǎng)的動物細(xì)胞代謝往往由于產(chǎn)物積累使葡萄糖轉(zhuǎn)化為乳酸的轉(zhuǎn)化率升高,這會導(dǎo)致細(xì)胞生長緩慢,代謝副產(chǎn)物積累直至細(xì)胞死亡。重新改造細(xì)胞代謝途徑方向,如在BHK-21細(xì)胞中導(dǎo)入丙酮羧酸化酶基因,不僅對細(xì)胞生長沒有抑制作用而且能有效減少葡萄糖的消耗、降低乳酸產(chǎn)率[22]。
細(xì)胞程序化死亡是細(xì)胞受基因控制自主化凋亡的過程,代謝工程在動物細(xì)胞中的應(yīng)用還體現(xiàn)在改變細(xì)胞凋亡程序、控制細(xì)胞循環(huán)周期。研究證明,在雜交瘤細(xì)胞中添加bcl-2等抑制細(xì)胞死亡的基因能顯著提高細(xì)胞活力,延長生長期,導(dǎo)入IRF-1(干擾調(diào)節(jié)因子)的BHK細(xì)胞生長被阻滯[23]。另有一些基因如bax、bcl-xS、bad和bak能激活細(xì)胞內(nèi)部線粒體凋亡程序從而促使細(xì)胞死亡[24]。Caspase屬于半胱氨酸蛋白酶類,是引起細(xì)胞凋亡的關(guān)鍵酶,在凋亡因子的作用下使細(xì)胞內(nèi)部蛋白質(zhì)降解發(fā)生凋亡[25]??刂萍?xì)胞無限制生長和使癌變細(xì)胞凋亡可以在根本上治療癌癥和腫瘤,這些研究在癌癥等疾病的基因治療中給人們提供了思路。
代謝工程發(fā)展已有二十多年,大量物種的全基因組測定和功能基因組學(xué)技術(shù)出現(xiàn),對物種的認(rèn)識不僅限于代謝水平,而且能夠從基因、RNA、蛋白質(zhì)和代謝物等多層次分析物種,即后基因組時代的“系統(tǒng)代謝工程”。代謝工程通過重組DNA技術(shù)改造細(xì)胞特性,當(dāng)前主要問題是如何正確詮釋酶的功能特性來優(yōu)化目標(biāo)產(chǎn)物合成途徑。盡管“組學(xué)”時代已經(jīng)增加了許多可用的數(shù)據(jù),但正確的詮釋和酶的功能特性是代謝工程策略成功實施的關(guān)鍵。此外,生物合成途徑之間復(fù)雜的相互作用和復(fù)雜的調(diào)控機制使得代謝工程進(jìn)一步復(fù)雜。因此,更復(fù)雜的工程策略,其調(diào)節(jié)表達(dá)的多個通路基因或者調(diào)節(jié)器對于平衡產(chǎn)品是必須的。定義這些策略需要詳細(xì)的系統(tǒng)知識和復(fù)雜的代謝模型,目前來說缺乏這些系統(tǒng)及代謝模型。當(dāng)前穩(wěn)定轉(zhuǎn)換系統(tǒng)是耗費時間的,所以獲得高轉(zhuǎn)化產(chǎn)率顯得格外重要。最后,對于實施這些代謝工程系統(tǒng),適當(dāng)?shù)墓芾矸ㄒ?guī)是很重要的,這可以使人們接受這些代謝工程產(chǎn)品。
代謝工程作為一種針對性比較強的生物代謝改造技術(shù),其應(yīng)用必將越來越廣泛。隨著資源匱乏、糧食危機和對藥物需求量的增大,代謝工程在今后改善這些問題中將發(fā)揮重要作用。
[1] McDaniel R, Licari P, Khosla C. Process development and metabolic engineering for the overproduction of natural and unnatural polyketides[M]//Metabolic Engineering. Springer Berlin Heidelberg, 2001:73, 31-52.
[2] Li R, Townsend CA. Rational strain improvement for enhanced clavulanic acid production by genetic engineering of the glycolytic pathway in Streptomyces clavuligerus[J]. Metabolic engineering, 2006, 8(3): 240-252.
[3] Asadollahi MA, Maury J, Mφller K, et al. Production of plant sesquiterpenes in Saccharomyces cerevisiae: effect of ERG9 repression on sesquiterpene biosynthesis[J]. Biotechnology and bioengineering, 2008, 99(3): 666-677.
[4] Alonso-Gutierrez J, Chan R, Batth TS, et al. Metabolic engineering ofEscherichiacolifor limonene and perillyl alcohol production[J]. Metabolic engineering, 2013, 19: 33-41.
[5] Rodriguez A, Kildegaard KR, Li M, et al. Establishment of a yeast platform strain for production of p-coumaric acid through metabolic engineering of aromatic amino acid biosynthesis[J]. Metabolic engineering, 2015, 31: 181-188.
[6] Atsumi S, Cann AF, Connor MR, et al. Metabolic engineering ofEscherichiacolifor 1-butanol production[J]. Metabolic engineering, 2008, 10(6): 305-311.
[7] Yu M, Zhang Y, Tang IC, et al. Metabolic engineering of Clostridium tyrobutyricum for n-butanol production[J]. Metabolic engineering, 2011, 13(4): 373-382.
[8] Curran KA, Leavitt JM, Karim AS, et al. Metabolic engineering of muconic acid production inSaccharomycescerevisiae[J]. Metabolic engineering, 2013, 15: 55-66.
[9] Runguphan W, Keasling JD. Metabolic engineering ofSaccharomycescerevisiaefor production of fatty acid-derived biofuels and chemicals[J]. Metabolic engineering, 2014, 21: 103-113.
[10] Newman DJ, Cragg GM. Natural products as sources of new drugs over the 30 years from 1981 to 2010[J]. Journal of natural products, 2012, 75(3): 311-335.
[11] DellaPenna D, O′Connor SE. Plant gene clusters and opiates[J]. Science, 2012, 336(6089): 1648-1649.
[12] Polturak G, Breitel D, Grossman N, et al. Elucidation of the first committed step in betalain biosynthesis enables the heterologous engineering of betalain pigments in plants[J]. New Phytologist, 2016, 210(1): 269-283.
[13] Kai G, Xu H, Zhou C, et al. Metabolic engineering tanshinone biosynthetic pathway in Salvia miltiorrhiza hairy root cultures[J]. Metabolic engineering, 2011, 13(3): 319-327.
[14] Vongpaseuth K, Roberts SC. Advancements in the understanding of paclitaxel metabolism in tissue culture[J]. Current pharmaceutical biotechnology, 2007, 8(4): 219-236.
[15] Li S, Fu C, Zhang M, et al. Enhancing taxol biosynthesis by overexpressing a 9-cis-epoxycarotenoid dioxygenase gene in transgenic cell lines of Taxus chinensis[J]. Plant Molecular Biology Reporter, 2012, 30(5): 1125-1130.
[16] Exposito O, Syklowska-Baranek K, Moyano E, et al. Metabolic responses of Taxus media transformed cell cultures to the addition of methyl jasmonate[J]. Biotechnology progress, 2010, 26(4): 1145-1153.
[17] Croteau R, Ketchum REB, Long RM, et al. Taxol biosynthesis and molecular genetics[J]. Phytochemistry reviews, 2006, 5(1): 75-97.
[18] Pons E, Alquézar B, Rodríguez A, et al. Metabolic engineering of β-carotene in orange fruit increases its in vivo antioxidant properties[J]. Plant biotechnology journal, 2014, 12(1): 17-27.
[19] Burkhardt PK, Beyer P, Wünn J, et al. Transgenic rice (Oryza sativa) endosperm expressing daffodil (Narcissus pseudonarcissus) phytoene synthase accumulates phytoene, a key intermediate of provitamin A biosynthesis[J]. The Plant Journal, 1997, 11(5): 1071-1078.
[20] Huang JC, Zhong YJ, Liu J, et al. Metabolic engineering of tomato for high-yield production of astaxanthin[J]. Metabolic engineering, 2013, 17: 59-67.
[21] 楊振西, 李世崇, 劉紅, 等. 乙肝病毒S抗原和preS1抗原表位融合蛋白(S/preS1)在CHO細(xì)胞中的穩(wěn)定高效表達(dá)[J]. 生物工程學(xué)報, 2013, 29(12): 1808-1816.
[22] Goudar CT, Joeris K, Konstantinov KB, et al. Logistic Equations Effectively Model Mammalian Cell Batch and Fed-Batch Kinetics by Logically Constraining the Fit[J]. Biotechnology progress, 2005, 21(4): 1109-1118.
[23] Carvalhal AV, Moreira JL, Cruz H, et al. Manipulation of culture conditions for BHK cell growth inhibition by IRF-1 activation[J]. Cytotechnology, 2000, 32(2): 135-145.
[24] Garcia-Saez AJ. The secrets of the Bcl-2 family[J]. Cell Death & Differentiation, 2012, 19(11): 1733-1740.
[25] Llambi F, Green DR. Apoptosis and oncogenesis: give and take in the BCL-2 family[J]. Current opinion in genetics & development, 2011, 21(1): 12-20.