国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

熱應(yīng)激對肉牛和肉羊生理生化指標(biāo)及外周血miRNA表達(dá)水平的影響

2018-02-13 17:45:19彭孝坤胡建宏張恩平
家畜生態(tài)學(xué)報 2018年3期
關(guān)鍵詞:肉羊肉牛奶牛

彭孝坤,胡建宏,張恩平

(西北農(nóng)林科技大學(xué) 動物科技學(xué)院,陜西 楊凌 712100)

熱應(yīng)激主要指動物機(jī)體所處外界環(huán)境溫度超過了等熱區(qū)中舒適區(qū)的上限,使動物機(jī)體熱平衡遭到破壞,散熱受阻,體溫升高而導(dǎo)致產(chǎn)生非特異性防御應(yīng)答反應(yīng)[1-2]。當(dāng)動物所處外界環(huán)境溫度越高時,熱應(yīng)激反應(yīng)程度就越嚴(yán)重[3]。熱應(yīng)激影響動物的生產(chǎn)性能、繁殖性能、自身免疫以及肉、蛋、奶等產(chǎn)品質(zhì)量,嚴(yán)重影響?zhàn)B殖經(jīng)濟(jì)效益。以往熱應(yīng)激研究的重點一般集中在雞、豬、奶牛等對熱應(yīng)激較為敏感的動物上,而對肉牛和肉羊(綿羊、山羊)研究較少,由于羊發(fā)生熱應(yīng)激的概率較小,故對羊的研究更少。羊?qū)儆诤銣貏游?,雖然汗腺不發(fā)達(dá),但羊毛有絕熱作用,能阻止太陽輻射熱迅速傳到皮膚,故耐熱性較好,特別是山羊有較寬的等熱區(qū)和較高的耐熱能力[4],但外界環(huán)境溫度過高時仍會產(chǎn)生熱應(yīng)激。

血液在維持機(jī)體內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)中起重要作用,體內(nèi)各代謝途徑往往需要血液的調(diào)節(jié),其生化指標(biāo)的變化可體現(xiàn)機(jī)體各組織器官的不同生理狀態(tài)。當(dāng)動物產(chǎn)生熱應(yīng)激時,血液中相關(guān)的免疫指標(biāo)、抗氧化指標(biāo)、電解質(zhì)、激素和酶等物質(zhì)的含量往往會發(fā)生變化,導(dǎo)致動物機(jī)體抗氧化能力和免疫能力降低等[5];血液中miRNA的表達(dá)十分穩(wěn)定,常用作一些疾病、組織損傷的生物標(biāo)志物[6-7]。miRNA對熱應(yīng)激狀態(tài)下動物細(xì)胞增殖、分化、凋亡以及機(jī)體免疫、抗氧化應(yīng)激、器官損傷、生長及繁殖性能等方面都起重要調(diào)控作用[8]。miRNA是熱應(yīng)激奶牛和肉牛血清中高度表達(dá)的調(diào)控因子,參與調(diào)控牛各組織器官免疫及抗氧化的進(jìn)程[5,9],但關(guān)于羊外周血miRNA的研究鮮有報道。本文對近年來熱應(yīng)激對牛外周血miRNA表達(dá)水平的影響進(jìn)行綜述,以期為外周血miRNA對肉羊熱應(yīng)激的調(diào)控機(jī)制研究提供思路和參考。

1 導(dǎo)致熱應(yīng)激的環(huán)境因素及評判標(biāo)準(zhǔn)

引發(fā)動物產(chǎn)生熱應(yīng)激的環(huán)境因素有多種,如外界環(huán)境溫度、相對濕度、太陽輻射、降雨量、氣流等[10-11]。動物處于熱應(yīng)激狀態(tài)時,機(jī)體各種生理生化指標(biāo),如直腸溫度、呼吸頻率,血清中免疫相關(guān)指標(biāo)、抗氧化指標(biāo)等往往會發(fā)生一系列變化,其中某一種或多種指標(biāo)可以判斷動物是否處于熱應(yīng)激狀態(tài)及其水平。Lemerle等[12]研究發(fā)現(xiàn),通過測定奶牛的直腸溫度和呼吸頻率可以判斷奶牛是否處于熱應(yīng)激狀態(tài)及其熱應(yīng)激水平。趙波等[13]研究認(rèn)為,由于熱應(yīng)激可以使奶牛體溫和呼吸頻率顯著加快,故可以用體溫測定法和呼吸頻率法作為判定奶牛熱應(yīng)激的方法,測定一群正常奶牛的體溫(如10頭),體溫測定法評判標(biāo)準(zhǔn)為:如果有70%以上奶牛體溫超過39.4 ℃,可判斷奶牛已經(jīng)開始處于熱應(yīng)激狀態(tài),如果體溫超過40 ℃,可判斷奶牛處于嚴(yán)重?zé)釕?yīng)激狀態(tài);呼吸頻率法評判標(biāo)準(zhǔn)為:如果有70%以上奶牛呼吸頻率高于80次/min,可判斷奶牛已經(jīng)開始處于熱應(yīng)激狀態(tài),如果呼吸頻率高于85次/min,可判斷奶牛處于嚴(yán)重?zé)釕?yīng)激狀態(tài)。West等[14]研究表明,除動物機(jī)體自身指標(biāo)外,一些其它參數(shù),如動物體溫、采食量、外界環(huán)境參數(shù)(有效溫度、溫濕指數(shù)等)也能說明動物是否處于熱應(yīng)激狀態(tài)。目前,對奶牛熱應(yīng)激評判標(biāo)準(zhǔn)日益完善,Bohmannova等[15]研究表明,在高濕地區(qū)溫濕指數(shù)(Temperature humidity index,THI)可以用來評價奶牛是否處于熱應(yīng)激,并形成了相關(guān)的計算公式:THI=0.72(Td+Tw)+40.6,其中Td為干球攝氏溫度,Tw為濕球攝氏溫度,評判標(biāo)準(zhǔn)為:熱應(yīng)激發(fā)生THI的臨界值為72,THI≤72奶牛不發(fā)生熱應(yīng)激,7289奶牛處于重度熱應(yīng)激狀態(tài)。也有研究表明,當(dāng)THI>68時,奶牛的直腸溫度、呼吸頻率以及奶中體細(xì)胞數(shù)都大幅度上升,奶牛開始出現(xiàn)熱應(yīng)激反應(yīng)[16]。肉牛熱應(yīng)激一般也以THI為依據(jù),THI臨界值的大小與牛品種、年齡、生長環(huán)境等因素有關(guān)。但針對羊熱應(yīng)激的評判標(biāo)準(zhǔn)鮮有報道。判斷羊是否處于熱應(yīng)激狀況,現(xiàn)在主要從生理狀態(tài)和生理指標(biāo)值判斷,如心跳、呼吸頻率加快,體溫升高等。其中溫度和濕度是影響肉羊熱應(yīng)激的主要因素,肉羊適宜溫度為10~25 ℃,相對濕度為30%~70%,在適宜的溫度和濕度下肉羊生長性能最好。溫、濕度在適宜區(qū)間上下輕微浮動時,肉羊可以通過改變站立或躺臥姿勢等行為,調(diào)整呼吸頻率、產(chǎn)熱量、采食量、飲水量等方式來維持機(jī)體產(chǎn)熱和散熱的平衡[17],也能健康生長。溫、濕度過高或過低都會影響肉羊的生長性能和生產(chǎn)性能,如環(huán)境溫度過高會引起羊體表溫度和直腸溫度增加[18-19],血液氣體、酸堿平衡、電解質(zhì)代謝等失衡[20],生長和繁殖性能下降[21-22],嚴(yán)重時甚至導(dǎo)致死亡[23]。濕度常常伴隨溫度一起對羊熱應(yīng)激起作用。顏培實等[24]研究表明,公羊在35 ℃的高溫下,把相對濕度從57%增加到78%,體溫可上升0.6 ℃,說明高濕對體溫有影響。當(dāng)所處外界環(huán)境溫度相同時,低相對濕度可降低動物熱應(yīng)激,并提高動物的生長和生產(chǎn)性能[25-26];但高相對濕度會加重動物熱應(yīng)激的程度[14,27]。

2 熱應(yīng)激條件下生理生化指標(biāo)差異

2.1 熱應(yīng)激對呼吸頻率和體溫的影響

在生理指標(biāo)中,呼吸頻率和直腸溫度是動物在夏季炎熱天氣中耐熱性和適應(yīng)性評價最常見的指標(biāo)。當(dāng)外界溫度過高時,動物機(jī)體首先通過提高呼吸頻率來加速散熱,當(dāng)機(jī)體通過自主性和行為性等體溫調(diào)節(jié)機(jī)制散熱較慢時,直腸和體表溫度會升高。動物產(chǎn)生熱應(yīng)激后,表現(xiàn)為呼吸頻率加快,直腸溫度升高,導(dǎo)致體重、平均日增重、生長率等降低[14,27-28]。張慶茹等[29]研究發(fā)現(xiàn),肉牛夏季熱應(yīng)激期間直腸溫度(39.04 ℃)和呼吸頻率(63.88次/min)極顯著高于冬季非熱應(yīng)激期(37.41 ℃和23.08次/min),表明熱應(yīng)激對肉牛直腸溫度和呼吸頻率有很大影響。羊正常呼吸頻率約為12~30次/min。有研究表明,低溫狀態(tài)下,綿羊的呼吸頻率為12~20次/min,山羊的呼吸頻率為10~30次/min[30],當(dāng)外界環(huán)境溫度由20℃提升到40 ℃時,山羊的呼吸頻率可由30次/min提高到200次/min[31-32],說明外界環(huán)境溫度對羊的呼吸頻率有很大的影響。Marai等[33]研究表明,當(dāng)綿羊處于高溫且高濕環(huán)境時,其呼吸頻率會進(jìn)一步增加,這與綿羊體感溫度的增加有關(guān)。羊的正常直腸溫度約為38~39.5 ℃,羔羊高出約0.5 ℃。當(dāng)大多數(shù)家畜處于高溫環(huán)境時,直腸溫度每升高1 ℃甚至更小,生長或生產(chǎn)性能都會下降[34-35]。

2.2 熱應(yīng)激對血液電解質(zhì)平衡的影響

正常狀況下,血液是協(xié)調(diào)動物機(jī)體各組織代謝的主要途徑,對體內(nèi)電解質(zhì)平衡、酸堿平衡及體溫的恒定等都起很大的作用;當(dāng)動物內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)遭到破壞時,機(jī)體的酸堿與滲透壓平衡會遭到破壞。牛和羊產(chǎn)生熱應(yīng)激后,其呼吸頻率加快,引起血液中二氧化碳下降,進(jìn)而導(dǎo)致酸堿失衡,易造成呼吸性堿中毒。動物產(chǎn)生熱應(yīng)激后,隨著唾液的大量分泌或皮膚蒸發(fā)排汗的增加,血液中電解質(zhì)如Na+、K+、Mg2+等離子可進(jìn)一步流失[36]。有研究表明,熱應(yīng)激條件下肉牛血清K+、Ca2+、Na+均降低,血清Cl-顯著升高。血清Cl-含量增加可能是熱應(yīng)激導(dǎo)致肉牛呼吸性堿中毒后,引起腎中碳酸氫鹽分泌能力增強,使腎小管對Cl-的吸收增加,最終導(dǎo)致血清中Cl-含量增加[5]。熱應(yīng)激條件下,機(jī)體酸堿失衡,分泌大量有機(jī)酸,有機(jī)酸與Ca2+結(jié)合,導(dǎo)致血液中Ca2+濃度下降。李建國等[37]研究發(fā)現(xiàn),奶牛夏季熱應(yīng)激期間血清中Ca2+濃度比冬、春、秋季等非熱應(yīng)激期間分別下降36.56%、27.26%和25.13%,說明熱應(yīng)激對血清中Ca2+濃度影響較大。Olsson等[32]研究表明,把山羊的環(huán)境溫度從20 ℃提高到38.0~39.5 ℃,持續(xù)5.15 h,可觀測到山羊血漿Na+濃度和摩爾滲透壓濃度下降。熱應(yīng)激對動物血液中微量元素也能產(chǎn)生影響,如熱應(yīng)激狀態(tài)下牛血液中微量元素Zn、Fe、Cr含量會下降,Cu、Mn、Co的含量會升高[38]。

2.3 熱應(yīng)激對血清激素水平的影響

熱應(yīng)激狀態(tài)下,動物血清中激素水平會發(fā)生明顯變化,主要體現(xiàn)在血清皮質(zhì)醇(COR)、三碘甲狀腺原激素(T3)、甲狀腺素(T4)等激素的變化。COR是動物機(jī)體腎上腺皮質(zhì)分泌的糖皮質(zhì)激素,當(dāng)動物處于不良環(huán)境時,前期COR的分泌量會增加,以提高其適應(yīng)能力。宋小珍等[39]研究發(fā)現(xiàn),肉牛處于熱應(yīng)激狀態(tài)時,血清COR含量在熱應(yīng)激期第20天升高了49.30%,第40天升高了15.49%,第60天升高23.49%,說明熱應(yīng)激前期顯著上升、后期逐漸恢復(fù)正??赡芘c肉牛自身的熱適應(yīng)調(diào)節(jié)有關(guān);Gross等[40]研究發(fā)現(xiàn),牛在急性熱應(yīng)激狀態(tài)下血清COR含量會升高,慢性熱應(yīng)激時前期會升高,后期會下降趨于平衡。熱應(yīng)激狀態(tài)下,動物體溫升高,可激活下丘腦-垂體-甲狀腺軸應(yīng)激系統(tǒng),甲狀腺通過分泌T3和T4來控制代謝速率。有研究表明,濕熱應(yīng)激可導(dǎo)致藏綿羊和山羊血清T3和T4分泌減少[41],以降低體內(nèi)代謝產(chǎn)熱。Koluman等[42]研究也表明,處于高溫條件下的羊血清T3和T4濃度降低,可降低基礎(chǔ)代謝率,避免內(nèi)源性產(chǎn)熱的增加。

2.4 熱應(yīng)激對血清酶類含量、抗氧化指標(biāo)及免疫指標(biāo)的影響

正常狀態(tài)下,大多數(shù)酶類都處于細(xì)胞內(nèi),但當(dāng)動物處于熱應(yīng)激狀態(tài)時,細(xì)胞受損會使細(xì)胞膜通透性增加,大量的酶會進(jìn)入血液中,因此檢測血液中一些酶的含量變化可以作為判斷心血管疾病、腫瘤、組織損傷等的標(biāo)志。侯引緒等[43]研究表明,當(dāng)牛處于熱應(yīng)激狀態(tài)時,采食量會不足,對鈣和磷的吸收會下降,血清中堿性磷酸酶(ALP)的含量會升高進(jìn)而調(diào)節(jié)血鈣的含量。正常狀態(tài)下,動物機(jī)體內(nèi)自由基的生成與清除維持在穩(wěn)態(tài)水平和平衡狀態(tài),因而組織器官不會發(fā)生氧化應(yīng)激而受到損傷;熱應(yīng)激狀態(tài)下,自由基的生成超過了動物機(jī)體的清除能力,使氧化還原平衡發(fā)生紊亂,產(chǎn)生氧化應(yīng)激,機(jī)體內(nèi)抗氧化劑及抗氧化酶類的含量也往往會發(fā)生改變,抗氧化能力下降。胡煜等[5]研究表明,牛在熱應(yīng)激狀態(tài)下,血清中總抗氧化能力(T-AOC)、超氧化物歧化酶(SOD)、 谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-px)含量均降低,丙二醛(MDA)含量升高,可能是由于熱應(yīng)激破壞了機(jī)體的抗氧化防御體系,使得脂質(zhì)過氧化物MDA含量升高,從而消耗了抗氧化酶的活性。宋小珍等[39]研究發(fā)現(xiàn),肉牛血清中的MDA含量在熱應(yīng)激第20天升高了46.21%,第40天升高了67.59%;血清中SOD活性在熱應(yīng)激第20天降低了10.41%,第40天降低了14.41%,熱應(yīng)激比非熱應(yīng)激期間差異顯著,說明熱應(yīng)激破壞了肉牛的抗氧化防御體系。井霞等[44]研究表明,熱應(yīng)激能降低牛外周血中T淋巴細(xì)胞、B淋巴細(xì)胞、單核-巨噬細(xì)胞的比例,從而使機(jī)體免疫能力下降。Saker等[45]研究表明,當(dāng)動物處于熱應(yīng)激狀態(tài)時,熱應(yīng)激可通過影響神經(jīng)內(nèi)分泌的活動來影響機(jī)體的免疫功能,如熱應(yīng)激可引起下丘腦-垂體-腎上腺皮質(zhì)軸反應(yīng),促進(jìn)促腎上腺皮質(zhì)激素釋放激素(CRH)、促腎上腺皮質(zhì)激素(ACTH)、糖皮質(zhì)激素(GC)等激素的分泌,進(jìn)而抑制淋巴細(xì)胞的增殖,導(dǎo)致機(jī)體細(xì)胞免疫和體液免疫功能降低。張燦等[17,41]研究表明,濕熱應(yīng)激期內(nèi),藏綿羊和山羊血清中免疫球蛋白(IgA、IgG 和IgM)濃度顯著降低,腫瘤壞死因子-α(TNF-α)濃度顯著升高,且藏綿羊的變化幅度更大,說明藏綿羊的免疫功能比山羊受濕熱應(yīng)激影響更大。

3 熱應(yīng)激對miRNA表達(dá)的影響

3.1 miRNA與熱應(yīng)激的關(guān)系

miRNAs是一類長度約為22核苷酸的單鏈內(nèi)源性非編碼RNA分子[46-47],哺乳動物miRNA不參與蛋白質(zhì)的編碼,其miRNA 5'UTR第2~8個堿基為種子序列,通過結(jié)合靶基因mRNA的特殊位點,并與Ago等蛋白形成沉默復(fù)合體(RISC),作用到靶基因mRNA 3'UTR上,通過和靶基因mRNA 3'UTR堿基互補配對引導(dǎo)RISC抑制其翻譯,從而對靶基因進(jìn)行轉(zhuǎn)錄水平調(diào)控來參與動物機(jī)體的熱應(yīng)激調(diào)控。miRNA具有高度的保守性、時期特異性和組織特異性,因此可以精細(xì)地調(diào)節(jié)動物不同的生長發(fā)育階段以及某些特定細(xì)胞和組織的靶基因表達(dá)[48-49]。哺乳動物miRNA 不僅可以存在于細(xì)胞的胞漿中,還能以外泌體,或與高密度脂蛋白相結(jié)合,或與Ago2 蛋白復(fù)合體相結(jié)合等形式存在血清、乳汁、尿液等細(xì)胞外或體液中,這類的miRNA我們稱之為循環(huán)miRNA ,其中存在于血液中的miRNA成為外周血miRNA。血液中的miRNA表達(dá)十分穩(wěn)定,可以作為疾病不同階段的診斷和監(jiān)測標(biāo)志物[50]。有研究表明,miRNA在哺乳動物中基因轉(zhuǎn)錄水平盡管只有1%~5%能被編碼,卻可以調(diào)控機(jī)體內(nèi)超過60%的基因[51-53],參與了胰島素分泌、信號轉(zhuǎn)導(dǎo)等生理調(diào)節(jié)過程[54]。Mckenna等[55]研究表明,miRNA在細(xì)胞分化凋亡、生長發(fā)育、疾病發(fā)生等方面均起重要作用。越來越多的研究學(xué)者投入到對miRNA與熱應(yīng)激關(guān)系的研究中去,大量研究證實miRNA與熱應(yīng)激密切相關(guān)[56]。miRNA在畜禽抵抗熱應(yīng)激方面,在基因分子層面已經(jīng)研究到調(diào)控?zé)嵝菘说鞍?HSP)、細(xì)胞凋亡、免疫調(diào)控、抗氧化應(yīng)激、生產(chǎn)性能、相關(guān)代謝等基因方面[57-58]。目前miRNA在熱應(yīng)激方面的研究主要在牛、豬和肉雞上,對肉羊的研究鮮有報道。

3.2 miRNA對細(xì)胞生長和凋亡的調(diào)控

馮亞杰等[59]對熱應(yīng)激條件下肉牛血液中表達(dá)差異的新miRNA進(jìn)行靶基因預(yù)測和通路分析,發(fā)現(xiàn)環(huán)境信息處理的絲裂原活化蛋白激酶(MAPKs)信號途徑被激活,差異性表達(dá)的miRNA參與機(jī)體細(xì)胞生長、發(fā)育、分化、凋亡等生命進(jìn)程。MAPKs信號通路是哺乳動物非常重要的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,當(dāng)機(jī)體產(chǎn)生熱應(yīng)激時,MAPKs信號通路被激活,可將細(xì)胞外刺激信號轉(zhuǎn)導(dǎo)至細(xì)胞內(nèi)及其核內(nèi),并引起細(xì)胞生物學(xué)反應(yīng),調(diào)控機(jī)體一系列生物學(xué)功能變化。蔡明成等[60]研究熱應(yīng)激對肉牛外周血miRNAs表達(dá)的影響時將表達(dá)量顯著上調(diào)和下調(diào)的10個miRNA進(jìn)行靶基因預(yù)測,將相關(guān)靶基因進(jìn)行GO和pathway分析時發(fā)現(xiàn),miRNAs表達(dá)上調(diào)的靶基因主要參與調(diào)控細(xì)胞的生理代謝,如細(xì)胞增殖、凋亡等調(diào)節(jié),還參與了MAPKs信號通路等蛋白激酶的級聯(lián)反應(yīng);miRNAs表達(dá)下調(diào)的靶基因主要參與機(jī)體免疫功能的調(diào)節(jié)。 Collier等[61]用熱應(yīng)激誘導(dǎo)奶牛乳腺上皮細(xì)胞時發(fā)現(xiàn),首先是熱應(yīng)答、DNA修復(fù)和蛋白質(zhì)修復(fù)等相關(guān)基因上調(diào),之后凋亡相關(guān)基因上調(diào)。Antonini等[62]研究表明,miR-34a、miR-34b可通過調(diào)控凋亡基因( p53)的表達(dá)來調(diào)控細(xì)胞凋亡。李惠俠等[63]研究表明,高溫可以抑制奶牛乳腺上皮細(xì)胞內(nèi)miR-24的表達(dá),降低細(xì)胞凋亡率,促進(jìn)乳腺上皮細(xì)胞的生長發(fā)育。有研究表明,某些miRNAs可調(diào)控生殖細(xì)胞發(fā)生、增殖和分化,如miR-4、miR-11 和miR-79等可作用于Bob,進(jìn)而影響生殖細(xì)胞的發(fā)生[64-66],miR-184在生殖干細(xì)胞分化、調(diào)節(jié)卵子發(fā)生和早期胚胎的發(fā)育中起重要作用[67]。有研究表明,miR-150的缺失可導(dǎo)致B1細(xì)胞增殖和增強體液免疫應(yīng)答[68]。miR-181a和miR-486可能在B細(xì)胞受體通路、T細(xì)胞受體通路中發(fā)揮作用,通過調(diào)控其靶基因CD38、CD4等的表達(dá)來使T細(xì)胞活化和B細(xì)胞分泌[5]。

3.3  miRNA對免疫和抗氧化的調(diào)控

Zheng等[69]利用RT-qPCR和高通量測序技術(shù)對熱應(yīng)激荷斯坦奶牛血清中差異表達(dá)的miRNA進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)其中有8個miRNAs(miR-19a、miR-19b、miR-27b、miR-30a-5p、miR-181a、miR-181b、miR-345-3p和miR-1246)在血清中高度表達(dá),而且通過GO和KEGG通路分析得出這些miRNA所調(diào)控的靶基因在應(yīng)激和免疫相關(guān)的信號通路上比較集中,表明這些miRNA與熱應(yīng)激反應(yīng)密切相關(guān),其中miR-19a 和miR-19b主要通過對靶基因熱應(yīng)激蛋白家族(HSP70家族)進(jìn)行調(diào)控來參與動物機(jī)體熱應(yīng)激調(diào)節(jié)。HSP是一類非常重要的非特異性細(xì)胞保護(hù)蛋白,有抗氧化、協(xié)同免疫、抗細(xì)胞凋亡、分子伴侶等作用,在哺乳動物應(yīng)激耐受和應(yīng)激保護(hù)中起重要作用。劉延鑫等[70]指出HSP70基因的表達(dá)與牛耐熱性存在相關(guān)性,表明HSP70 基因可以作為牛熱應(yīng)激反應(yīng)的候選基因,其SNP位點可作為??篃釕?yīng)激的分子標(biāo)記。Toll樣受體(TLRs)是先天免疫系統(tǒng)中廣泛表達(dá)的免疫蛋白,可構(gòu)成機(jī)體免疫系統(tǒng)抵抗病原微生物入侵的第一道防線,TLR信號通路的過度激活將會導(dǎo)致過度的炎癥和免疫反應(yīng),許多研究學(xué)者認(rèn)為TLR信號的失調(diào)可作為炎癥和自身免疫疾病的標(biāo)志。胡朝恩等[71]認(rèn)為miRNA可精細(xì)調(diào)節(jié)TLR信號通路的起始、終止和反應(yīng)強度,對炎癥和免疫相關(guān)性疾病的防止有重大意義,如miRNA可以通過TLR調(diào)節(jié)T細(xì)胞、B細(xì)胞、巨噬細(xì)胞等免疫細(xì)胞的發(fā)育、分化和功能,進(jìn)而調(diào)控機(jī)體的免疫反應(yīng)。鄭月等[72]對熱應(yīng)激牛血清miRNA 高通量測序分析發(fā)現(xiàn)共有52個差異表達(dá)極顯著 miRNA(P<0.01) ,選擇4個候選miRNAs( miR-19a、miR-19b、miR-181a、miR-1246) 用RT-q PCR 檢測驗證,發(fā)現(xiàn)結(jié)果一致,其中miR-181a極顯著下調(diào)(P<0.01),通過生物信息學(xué)分析表明其靶基因在B細(xì)胞和T細(xì)胞受體信號通路富集,說明miR-181a可能通過B細(xì)胞和T細(xì)胞受體信號通路來調(diào)節(jié)牛熱應(yīng)激的發(fā)生過程,調(diào)控與免疫相關(guān)的關(guān)鍵調(diào)控因子TNF-α和CD38被激活或抑制進(jìn)而提高或降低機(jī)體免疫力。胡煜等[5]研究發(fā)現(xiàn),熱應(yīng)激狀態(tài)下牛血清中氧化指標(biāo)丙二醛(MDA)含量升高,說明??寡趸芰ο陆?,且miR-1246表達(dá)量與MDA顯著相關(guān);免疫球蛋白IgA、IgG和炎癥因子白細(xì)胞介素2(IL-2 )顯著下降,且外周血中miR-181a和miR-486表達(dá)量與免疫指標(biāo)(IgA、IgG、IL-2)顯著相關(guān),說明miR-1246、miR-181a和miR-486在牛熱應(yīng)激狀態(tài)下參與了免疫應(yīng)答和抗氧化等方面調(diào)控,可作為??篃釕?yīng)激的分子標(biāo)志物。miRNA不僅廣泛存在于動物和植物中,在微生物中也有存在。Demont等[73]研究表明,熱應(yīng)激狀態(tài)下,益生菌中miR-27a的表達(dá)量與白細(xì)胞介素10(IL-10 )表達(dá)量顯著相關(guān),從miRNA角度在微生物中也揭示了一部分熱應(yīng)激引起免疫功能異常的機(jī)制。

4 小結(jié)與展望

miRNA作為一種轉(zhuǎn)錄后調(diào)控機(jī)制,在熱應(yīng)激條件下對細(xì)胞生長、凋亡、機(jī)體免疫和抗應(yīng)激反應(yīng)等方面發(fā)揮重要作用。綜合眾多miRNA與熱應(yīng)激關(guān)系的研究不難發(fā)現(xiàn),miRNA在熱應(yīng)激、抗熱應(yīng)激和熱應(yīng)激標(biāo)志物篩選中有巨大潛力。隨著生活水平的提高,人們對肉牛和肉羊的需求量越來越高,肉牛和肉羊養(yǎng)殖規(guī)模不斷擴(kuò)大,健康養(yǎng)殖變得尤為重要,降低溫?zé)岘h(huán)境對肉牛和肉羊的影響是健康養(yǎng)殖的重要環(huán)節(jié)。為了提高生產(chǎn)效率,改善肉牛和肉羊品質(zhì),綜合考慮溫度、濕度、氣流等溫?zé)岘h(huán)境因子,制定不同氣候區(qū)典型肉牛和肉羊熱應(yīng)激評價體系,是當(dāng)前和未來肉牛和肉羊健康養(yǎng)殖的技術(shù)需求。目前,關(guān)于肉牛和肉羊血液miRNA的研究很少,探索肉牛和肉羊的熱應(yīng)激機(jī)制及篩選熱應(yīng)激標(biāo)志物也是肉牛和肉羊環(huán)境生理研究的方向。

參考文獻(xiàn):

[1]DAVIS M S, MADER T L, HOLT S M, et al. Strategies to reduce feedlot cattle heat stress: effects on tympanic temperature[J]. Journal of Animal Science, 2003, 81(3): 649-661.

[2]KOVATS R S, HAJAT S. Heat stress and public health: a critical review[J]. Annual Review of Public Health, 2008, 29(1): 41-55.

[3]田允波.環(huán)境因素對家畜繁殖的影響(綜述)[J].家畜生態(tài)學(xué)報,1990,11(2):44-47.

[4]SEJIAN V, SRIVASTAVA R S. Effects of melatonin on adrenal cortical functions of Indian goats under thermal stress[J]. Veterinary Medicine International, 2010(2): 348919.

[5]胡煜,蔡明成,王玲,等.熱應(yīng)激狀態(tài)下牛血清生化指標(biāo)、miRNA表達(dá)變化及其相關(guān)性分析[J].畜牧獸醫(yī)學(xué)報,2016,47(9):1 840-1 847.

[6]ZHANG Baohong, WANG Qinglian, PAN Xiaoping. Micro RNAs and their regulatory roles in animals and plants[J]. Journal of Cellular Physiology, 2007, 210(2): 279-289.

[7]MEDER B, KELLER A, VOGEL B, et al. MicroRNA signatures in total peripheral blood as novel biomarkers for acute myocardial infarction[J]. Basic Research in Cardiology, 2011, 106(1): 13-23.

[8]郭江,高勝濤,權(quán)素玉,等.miRNAs 對熱應(yīng)激畜禽調(diào)控的分子機(jī)制[J].動物營養(yǎng)學(xué)報,2016,28(3):652-658.

[9]ZHENG Yue, CHEN Kunlin, ZHENG Xiaomin, et al. Identification and bioinformatics analysis of microRNAs associated with stress and immune response in serum of heat-stressed and normal Holstein cows[J]. Cell Stress & Chaperones, 2014, 19(6): 973-981.

[10]IGONO M O, BJOTVEDT G, SANFORD-CRANE H T. Environmental profile and critical temperature effects on milk production of Holstein cows in desert climate[J]. International Journal of Biometeorology, 1992, 36(2): 77-87.

[11]FUQUAY J W. Heat stress as it affects animal production[J]. Journal of Animal Science, 1981, 52(1): 164-174.

[12]LEMERLE C, GODDARD M E. Assessment of heat stress in dairy cattle in Papua New Guinea[J]. Tropical Animal Health and Production, 1986, 18(4): 232-242.

[13]趙波.奶牛熱應(yīng)激的判定方法和防制對策[J].湖北畜牧獸醫(yī),2003,24(3):45-46.

[14]WEST J W, MULLINIX B G, BERNARD J K. Effects of hot, humid weather on milk temperature, dry matter intake, and milk yield of lactating dairy cows[J]. Journal of Dairy Science, 2003, 86(1): 232-242.

[15]BOHMANOVA J, MISZTAL I, COLE J B. Temperature-humidity indices as indicators of milk production losses due to heat stress[J]. Journal of Dairy Science, 2007, 90(4):1 947-1 956.

[16]薛白,王之盛,李勝利,等.溫濕度指數(shù)與奶牛生產(chǎn)性能的關(guān)系[J].中國畜牧獸醫(yī),2010,37(3):153-157.

[17]張燦,王之盛,彭全輝,等.濕熱應(yīng)激對藏綿羊和山羊生長性能、抗氧化能力以及免疫功能的影響[J].動物營養(yǎng)學(xué)報,2017,29(6):2 179-2 187.

[18]HAMZAOUI S, SALAMA A A, ALBANELL E, et al. Physiological responses and lactational performances of late-lactation dairy goats under heat stress conditions[J]. Journal of Dairy Science, 2013, 96(10): 6 355-6 365.

[19]POPOOLA M A, SAKA A A, OLANIYI T A, et al. Influence of temperature humidity index on skin temperature of West African dwarf goats raised in Nigeria[J]. Agricultural Advances, 2014, 2(12): 28-32.

[20]AUGUSTINSSON O, HOLST H, FORSGREN M, et al. Influence of heat exposure on acid/base and fluid balance in hyperhydrated goats[J]. Acta Physiologica Scandinavica, 1986, 126(4): 499-503.

[21]SILANIKOVE N. Effects of heat stress on the welfare of extensively managed domestic ruminants[J]. Livestock Production Science, 2000, 67(1/2): 1-18.

[22]PHILLPS C, PIGGINS D. Farm animals and the environment[M]. Oxfordshire: CAB International, 1992.

[23]DARCAN N, CEDDEN F, CANKAYA S. Spraying effects on some physiological and behavioural traits of goats in a subtropical climate[J]. Italian Journal of Animal Science, 2010, 7(1): 77-85.

[24]顏培實,李如治.家畜環(huán)境衛(wèi)生學(xué)[M].北京:高等教育出版社,2011.

[25]FACANHA D A E,da SILVA R G,MAIA A S C, et al. Anual variation of morphologic traits and hair coat surface temperature of Holstein cows in semi-arid environment[J]. Revista Brasileira de Zootecnia-Brazilian Journal of Animal Science,2010, 39(4): 837-844.

[26]COSTA W P, EVANGELISTA FACANHA D A, GURGEL MORAIS LEITE J H, et al. Thermoregulatory responses and blood parameters of locally adapted ewes under natural weather conditions of Brazilian semiarid region[J]. Semina-Ciencias Agrarias, 2015, 36(6):4 589-4 600.

[27]MARAI I M, BAHGAT L B, SHALABLY T H, et al. Fattening performance,some behavioural traits and physiological reactions of male lambs fed concentrates mixture alone with or without natural clay,under hot summer of Egypt[J]. Annals of Arid zone, 2000, 39(4): 449-460.

[28]MALIK R C, RAZZAQUE M A, ALNASSER A Y. Sheep production in hot and arid zones[M]. Kuwait: Kuwait Institute for Scientific Research, 2000.

[29]張慶茹,郭紅斌,張紅德.熱應(yīng)激對動物機(jī)體生理機(jī)能的影響[J].動物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2007,28(1):101-105.

[30]王寶理,張江平,陳正生.高氣溫環(huán)境對羅姆尼羊及湖羊生理常數(shù)的影響[J].江西農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,1991,13(6):356-363.

[31]MALOIY G O. Taylor C R.water requirements of African goats and haired-sheep[J]. Journal of Agricultural Science, 1971, 77(2): 203-208.

[32]OLSSON K, JOSATER-HERMELIN M, HOSSAINI-HILALI J, et al. Heat stress causes excessive drinking in fed and food deprived pregnant goats[J]. Comparative Biochemistry and Physiology. Part a, Physiology, 1995, 110(4): 309-317.

[33]MARAI I F M,HABEEB A A M, GAD A E. Reproductive traits of female rabbits as affected by heat stress and lighting regime under subtropical conditions of Egypt[J]. Animal Science, 2004, 78(1): 119-127.

[34]MCDOWELL R E, HOOVEN N W, CAMOENS J K. Effects of climate on performance of Holsteins in first lactation[J]. Journal of Dairy Science, 1976, 59(5): 965-971.

[35]SHEBAITA M K, EIBANNA I M.Heat load and heat dissipation in sheep and goats under environmental heat stress[C]// International Conference on Animal & Poultry Production,1982: 459-469.

[36]王建平,王加啟,卜登攀,等.熱應(yīng)激對奶牛影響的研究進(jìn)展[J].中國奶牛,2008,211(7):21-24.

[37]李建國,安永福.熱應(yīng)激對母牛內(nèi)分泌及繁殖機(jī)能的影響[J].中國奶牛,1998,142(3):31-32.

[38]何德肆.熱應(yīng)激對奶牛微量元素及部分生化成分影響的研究[D].長沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),2004.

[39]宋小珍,付戴波,瞿明仁,等.熱應(yīng)激對肉牛血清內(nèi)分泌激素含量、抗氧化酶活性及生理生化指標(biāo)的影響[J].動物營養(yǎng)學(xué)報,2012,24(12):2 485-2 490.

[40]GROSS W B, SIEGEL P B. Effect of social stress and steroids on antibody production[J]. Avian Diseases, 1974, 17(4): 807-815.

[41]張燦.濕熱應(yīng)激對藏綿羊和山羊生產(chǎn)性能、瘤胃發(fā)酵及血液生化指標(biāo)影響的比較研究[D].雅安:四川農(nóng)業(yè)大學(xué),2016.

[42]KOLUMAN N, DASKIRAN I. Effects of ventilation of the sheep house on heat stress, growth and thyroid hormones of lambs[J]. Tropical Animal Health and Production, 2011, 43(6): 1 123-1 127.

[43]侯引緒,張凡建,魏朝利.中度熱應(yīng)激對荷斯坦牛部分血液生化指標(biāo)的影響[J].中國奶牛,2013,241(1):11-13.

[44]井霞.慢性冷熱應(yīng)激對荷斯坦奶牛維持行為及免疫功能的影響研究[D].呼和浩特:內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué),2006.

[45]SAKER K E, FIKE J H, VEIT H, et al. Brown seaweed-(Tasco TM)treated conserved forage enhances antioxidant status and immune function in heat-stressed wether lambs[J]. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition, 2004, 88(4): 122-130.

[46]BARTEL D P. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function[J]. Cell, 2004, 116(2): 281-297.

[47]LLAVE C, KASSCHAU K D, RECTOR M A, et al. Endogenous and silencing-associated small RNAs in plants[J]. The Plant Cell, 2002, 14(7): 1 605-1 619.

[48]FLYNT A S, LAI E C. Biological principles of microRNA-mediated regulation: shared themes amid diversity[J]. Nature Reviews Genetics, 2008, 9(11): 831-842.

[49]SIOMI H, SIOMI M C. On the road to reading the RNA-interference code[J]. Nature, 2009, 457(7228): 396-404.

[50]SCHENA F P, SERINO G, SALLUSTIO F. MicroRNAs in kidney diseases: new promising biomarkers for diagnosis and monitoring[J]. Nephrology Dialysis Transplantation,2014,29(4):755-763.

[51]FRIEDMAN J R, KAESTNER K H. The Foxa family of transcription factors in development and metabolism[J]. Cellular and Molecular Life Sciences,2006,63(19/20):2 317-2 328.

[52]FRIEDMAN R C, FARH K K, BURGE C B, et al. Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs[J]. Genome Research, 2009, 19(1): 92-105.

[53]SUN W,LI Y S, HUANG H D, et al. microRNA: a master regulator of cellular processes for bioengineering systems[J]. Annual Review of Biomedical Engineering, 2010, 12(1): 1-27.

[54]POY M N, ELIASSON L, KRUTZFELDT J, et al. A pancreatic islet-specific microRNA regulates insulin secretion[J]. Nature, 2004, 432(714): 226-230.

[55]MCKENNA L B, SCHUG J, VOUREKAS A, et al. MicroRNAs control intestinal epithelial differentiation, architecture, and barrier function[J]. Gastroenterology,2010,139(5):1 654-1 664.

[56]ZHANG RUI, ZHANG QINGFU, NIU JINGYA, et al. Screening of microRNAs associated with Alzheimer's disease using oxidative stress cell model and different strains of senescence accelerated mice[J]. Journal of the Neurological Sciences, 2014, 338(1/2): 57-64.

[57]YU JIN, YIN PENG, LIU FENGHUA, et al. Effect of heat stress on the porcine small intestine: a morphological and gene expression study[J]. Comparative Biochemistry and Physiology A:Molecular & Integrative Physiology,2010,156(1):119-128.

[58]YU JIN, LIU FENGHUA, YIN PENG, et al. Integrating miRNA and mRNA expression profiles in response to heat stress-induced injury in rat small intestine[J]. Functional & Integrative Genomics, 2011, 11(2): 203-213.

[59]馮亞杰,張子敬,辛?xí)粤幔龋煌竟?jié)夏南牛外周血液中microRNA的挖掘[J].上海畜牧獸醫(yī)通訊,2016,60(6):2-5.

[60]蔡明成.熱應(yīng)激對肉牛生理生化指標(biāo)及外周血microRNA表達(dá)水平的影響[D].重慶:西南大學(xué),2014.

[61]COLLIER R J, STIENING C M, POLLARD B C, et al. Use of gene expression microarrays for evaluating environmental stress tolerance at the cellular level in cattle[J]. Journal of Animal Science, 2006, 84(Suppl): E1-13.

[62]ANTONINI D, RUSSO M T, DE ROSA L, et al. Transcriptional repression of miR-34 family contributes to p63-mediated cell cycle progression in epidermal cells[J]. The Journal of Investigative Dermatology, 2010, 130(5): 1 249-1 257.

[63]李惠俠,王振云,張震,等.高溫條件下miRNA-24對奶牛乳腺上皮細(xì)胞增殖與凋亡的影響[J].中國農(nóng)業(yè)科學(xué),2010,43(22):4 732-4 738.

[64]AZZAM G, SMIBERT P, LAI E C, et al. Drosophila argonaute 1 and its miRNA biogenesis partners are required for oocyte formation and germline cell division[J]. Developmental Biology, 2012, 365(2): 384-394.

[65]BRENNECKE J, STARK A, RUSSELL R B, et al. Principles of microRNA-target recognition[J]. PLOS Biology, 2005, 3(3): e85.

[66]PEK J W, LIM A K, KAI T. Drosophila maelstrom ensures proper germline stem cell lineage differentiation by repressing microRNA-7[J]. Developmental Cell, 2009, 17(3): 417-424.

[67]IOVINO N, PANE A, GAUL U. miR-184 has multiple roles in drosophila female germline development[J]. Developmental Cell, 2009, 17(1): 123-133.

[68]XIAO Changchun, CALADO D P, GALLER G, et al. MiR-150 controls B cell differentiation by targeting the transcription factor c-Myb[J]. Cell, 2007, 131(1): 146-159.

[69]ZHENG YUE, CHEN KUNLIN, ZHENG XIAOMIN, et al. Identification and bioinformatics analysis of microRNAs associated with stress and immune response in serum of heat-stressed and normal Holstein cows[J]. Cell Stress & Chaperones, 2014, 19(6): 973-981.

[70]劉延鑫,李大齊,崔群維,等.奶牛HSP70基因表達(dá)及其連鎖微衛(wèi)星標(biāo)記與耐熱性狀的相關(guān)性[J].遺傳,2010,32(9):935-941.

[71]胡朝恩(綜述),艾智華(審校).miRNA調(diào)控炎癥和免疫反應(yīng)TLR信號通路的研究進(jìn)展[J].西南軍醫(yī),2015,34(1):76-79.

[72]鄭月,陳坤琳,李惠俠,等.熱應(yīng)激奶牛血清miRNA表達(dá)譜及miR-181a靶基因分析[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2014,37(6):130-136.

[73]DEMONT A, HACINIRACHINEL F, DOUCETLADEVEZE R, et al. Live and heat-treated probiotics differently modulate IL10 mRNA stabilization and microRNA expression[J]. The Journal of Allergy and Clinical Immunology,2016,137(4):1 264-1 267.

猜你喜歡
肉羊肉牛奶牛
乍暖還寒時奶牛注意防凍傷
冬季肉牛咋喂精料
冬春如何提高肉牛采食量
肉??谘渍Ψ乐?/a>
夏季奶牛如何預(yù)防熱應(yīng)激
肉羊的飼養(yǎng)管理
肉羊育肥技術(shù)的要點
肉羊人工授精技術(shù)
奶牛吃草
肉羊舍飼快速育肥技術(shù)
芜湖县| 扎囊县| 惠水县| 临泽县| 大同县| 都安| 侯马市| 岢岚县| 西贡区| 舞钢市| 五原县| 根河市| 广东省| 长阳| 华阴市| 兴隆县| 许昌县| 吉木乃县| 三明市| 南江县| 乌鲁木齐县| 白沙| 西盟| 新竹市| 阜阳市| 仙居县| 双鸭山市| 天长市| 维西| 来凤县| 当涂县| 中宁县| 会泽县| 抚州市| 承德县| 南阳市| 五寨县| 德昌县| 健康| 通榆县| 遂昌县|