李靖靖,李紅梅
(鄒平縣綜合檢驗檢測中心,山東鄒平 256200)
隨著臨床上抗生素的普遍應(yīng)用,很多感染性病菌的耐藥性也逐漸增強,致使抗生素的劑量不斷加大,如耐青霉素的肺炎球菌、耐萬古霉素的腸球菌、耐甲氧西林的金黃色葡萄球菌等[1-2]。因此迫切需要新型抗生素來抵抗這些耐藥菌株的感染,而普那霉素則成了新型抗生素的首選。普那霉素屬于鏈陽性菌素類抗生素,由始旋鏈霉菌發(fā)酵產(chǎn)生,可以通過與核糖體結(jié)合從而抑制蛋白的合成,對大多數(shù)革蘭氏陽性菌和部分革蘭氏陰性菌有強烈的抑制作用,是萬古霉素的替代藥物[3]。更重要的是,對普那霉素制劑的臨床應(yīng)用證明,只有極少數(shù)的細菌會對其產(chǎn)生微弱的耐藥性,因此普那霉素在抵抗多重耐藥菌方面起到了重要作用,具有廣闊市場前景[4]。
目前,國內(nèi)對普那霉素的研究較少,菌株發(fā)酵產(chǎn)量尚處于較低的水平,一般效價不超過2 000 μ/mL,發(fā)酵單位不超過1 500 mg/L[3-4]。為了進一步提升普那霉素的發(fā)酵水平、降低生產(chǎn)成本,試驗對一株普那霉素產(chǎn)生菌Streptomyces pristinaespiralis LS15進行了搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基的優(yōu)化,并且取得了較好的效果。
放線菌S.pristinaespiralis LS15,土壤中篩選并由實驗室保藏。
瓊脂培養(yǎng)基:淀粉15 g/L,黃豆粕3 g/L,可溶性酵母粉1 g/L,瓊脂18 g/L,初始pH值7.0。于121℃條件下滅菌20 min。
種子培養(yǎng)基:可溶性酵母粉6 g/L,葡萄糖30 g/L,KH2PO4·2H2O 1.2 g/L,(NH4)2SO45 g/L,K2HPO4·2H2O 1.0 g/L,MgSO4·7H2O 0.6 g/L,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.03 g/L,ZnSO4·7H2O 0.03 g/L,pH 值 7.0。于115℃條件下滅菌20 min。
發(fā)酵培養(yǎng)基:同種子培養(yǎng)基。
種子液培養(yǎng):從瓊脂培養(yǎng)基上刮取孢子兩環(huán),在無菌條件下接入50 mL/250 mL的種子培養(yǎng)基中,于30℃,200 r/min條件下?lián)u床培養(yǎng)30 h。
發(fā)酵培養(yǎng):吸取種子液4 mL,無菌條件下接入50 mL/250 mL的發(fā)酵培養(yǎng)基中,于30℃,200 r/min條件下?lián)u床培養(yǎng)72 h。
發(fā)酵培養(yǎng)基中有8種成分,其中FeSO4·7H2O和ZnSO4·7H2O這2種成分屬于微量元素,添加量較小,因而暫時不作為優(yōu)化的對象,其余6種培養(yǎng)基組分的添加量較大,在此作為重點優(yōu)化對象。PB-CCD的設(shè)計及結(jié)果分析采用軟件Design-Expert 8.0。
高效液相色譜法測定發(fā)酵液中普那霉素含量[3]。
己糖激酶(Hexokinase,HK)、丙酮酸激酶(Pyruvate kinase,PK)、天冬氨酸激酶 (Aspartokinase,AK)、檸檬酸合成酶(Citrate synthase,CS) 的酶活測定參照相關(guān)文獻[5-8]。
S.pristinaespiralis LS15目前發(fā)酵培養(yǎng)基的組成有8種物質(zhì),如前所述,鋅和鐵2種金屬離子對于微生物的生理代謝及酶的催化具有重要作用,嚴格來講不屬于營養(yǎng)成分,而且其濃度在一定范圍內(nèi)對普那霉素的產(chǎn)量影響不大,所以暫時沒有對其進行優(yōu)化。試驗采用PB-CCD的響應(yīng)面方法對菌株S.pristinaespiralis LS15發(fā)酵培養(yǎng)基的6種主要營養(yǎng)成分進行了優(yōu)化研究,并取得了較好的效果。
Plackett-Burman(PB) 試驗是一種近飽和二水平試驗設(shè)計方法,能夠在眾多因素中快速地評選出哪些因素對于目標具有顯著的影響[9-10]。采用Design-Expert 7.0軟件,分別對培養(yǎng)基中的優(yōu)化成分選擇了較高水平(以+1表示) 和較低水平(以-1表示)。
PB試驗的分組設(shè)計見表1。
表1 PB試驗的分組設(shè)計
PB試驗根據(jù)所設(shè)計的高低水平可以自動生成一組試驗方案,共12組。按照該方案配制發(fā)酵培養(yǎng)基對S.pristinaespiralis LS15進行不同組別的發(fā)酵試驗,每組3個平行,發(fā)酵結(jié)束后測定普那霉素產(chǎn)量并利用Design-Expert 7.0軟件進行數(shù)據(jù)分析。如表2所示,p值是表征模型及因素顯著與否的重要參數(shù),如果p<0.05,那就表明該因素具有顯著影響。從表3中看出,首先該模型的p=0.018 4,說明該PB試驗的設(shè)計是合理的,效果非常顯著。p<0.05的因素有3個,分別是K2HPO4、酵母抽提物和MgSO4,說明這3種成分影響普那霉素搖瓶產(chǎn)量程度較大,而葡萄糖、硫酸銨和磷酸二氫鉀這3種成分影響較小。表2中的系數(shù)代表了該因素的增量與普那霉素產(chǎn)量的關(guān)系,例如,酵母抽提物、K2HPO4和MgSO4這3個因素的系數(shù)為正值,表示增加三者的濃度可以進一步提高普那霉素的產(chǎn)量,而增加其他3個因素的濃度會降低普那霉素的合成。但是,由于葡萄糖等3種成分的p>0.05,影響不顯著,所以在后續(xù)的試驗設(shè)計中,只考慮酵母抽提物、K2HPO4和MgSO4三者即可。
PB模型的顯著性分析見表2。
表2 PB模型的顯著性分析
根據(jù)表2中的系數(shù)和p值分析,對于普那霉素產(chǎn)量影響較小的3個因素不再做進一步優(yōu)化,其濃度仍然為葡萄糖 50 g/L,KH2PO41 g/L,(NH4)2SO45 g/L,而對影響顯著的酵母抽提物、K2HPO4和MgSO4這3種營養(yǎng)物質(zhì)做后續(xù)的爬坡試驗,以合適的步長最快地逼近最高適響應(yīng)區(qū)域。從表4顯示的結(jié)果可以看出,隨著正系數(shù)影響因素質(zhì)量濃度的增加,普那霉素的產(chǎn)量也隨之增加,與PB試驗?zāi)P偷念A(yù)測相吻合,在第4組試驗中達到最高值為1.92 g/L。該組別的營養(yǎng)成分質(zhì)量濃度不一定就是最優(yōu)值,但可以肯定普那霉素的產(chǎn)量最高點就在組別4附近,因為各種營養(yǎng)成分間還存在著交互作用,因此將第4組中的可溶性酵母粉、磷酸氫二鉀和硫酸鎂作為后續(xù)試驗的中心點。
梯度爬坡試驗見表3。
表3 梯度爬坡試驗/g·L-1
在中心組合試驗中,將酵母抽提物質(zhì)量濃度設(shè)定為7~9 g/L,K2HPO4質(zhì)量濃度設(shè)定2~3 g/L,MgSO4質(zhì)量濃度設(shè)定1~2 g/L,Design-Expert 7.0軟件會自動生成 5 個水平 (-1.682,-1.000,0,1.000,1.682)的試驗考查。
中心組合試驗設(shè)計及結(jié)果見表4。
表4 中心組合試驗設(shè)計及結(jié)果
從表4可以看出,該模型的p<0.000 1,失擬合度不顯著,表明模型可信度較高。而且,根據(jù)普那霉素的實際搖瓶產(chǎn)量與模型預(yù)測值相比較,兩者數(shù)據(jù)差別不大,說明該模型的準確度較高。
Design-Expert軟件同時可以生成3種因素的響應(yīng)面圖及其等高線圖,該圖能夠反映出各種組分的相互影響[11-12]。
酵母抽提物和磷酸氫二鉀對普那霉素搖瓶產(chǎn)量的影響見圖1,酵母抽提物和硫酸鎂對普那霉素搖瓶產(chǎn)量的影響見圖2,磷酸氫二鉀和硫酸鎂對普那霉素搖瓶產(chǎn)量的影響見圖3。
從圖1、圖2、圖3可以看出,營養(yǎng)成分間存在兩兩的交互作用,任何一種成分的過高或者過低都會使普那霉素的產(chǎn)量下降。
圖1 酵母抽提物和磷酸氫二鉀對普那霉素搖瓶產(chǎn)量的影響
圖2 酵母抽提物和硫酸鎂對普那霉素搖瓶產(chǎn)量的影響
Design-Expert 8.0軟件擬合得到了普那霉素搖瓶產(chǎn)量的二次多項式方程為:
其中b,e,f分別為酵母抽提物、磷酸氫二鉀和硫酸鎂的質(zhì)量濃度。對該回歸方程的3個自變量求導(dǎo)即可得到模型的極值點,軟件的數(shù)據(jù)分析顯示,當酵母抽提物質(zhì)量濃度7.52 g/L,磷酸氫二鉀質(zhì)量濃度2.26 g/L,硫酸鎂質(zhì)量濃度1.81 g/L時,普那霉素產(chǎn)量最高為2.25 g/L。
圖3 磷酸氫二鉀和硫酸鎂對普那霉素搖瓶產(chǎn)量的影響
根據(jù)PB-CCD的培養(yǎng)基優(yōu)化試驗,得到的優(yōu)化培養(yǎng)基為:酵母抽提物7.5 g/L,葡萄糖50 g/L,KH2PO·42H2O 1.2 g/L,(NH)42SO48 g/L,K2HPO·42H2O 2.5 g/L,MgSO4·7H2O 2.0 g/L,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.05 g/L,ZnSO·47H2O 0.05 g/L。以上述配比進行普那霉素的搖瓶發(fā)酵,實際質(zhì)量濃度分別為2.33,2.25,2.28 g/L,基本符合模型的預(yù)測值,比起初始培養(yǎng)基的1.18 g/L提高了86.4%,證明了PB-CCD培養(yǎng)基優(yōu)化方法的有效性。
為了初步說明S.pristinaespiralis LS15在優(yōu)化培養(yǎng)基中能夠高產(chǎn)普那霉素,試驗選取了菌株代謝途徑中的一些關(guān)鍵酶進行了酶活測定,這些酶包括糖酵解途徑(EMP途徑) 中的己糖激酶(hexokinase,HK) 和丙酮酸激酶(pyruvate kinase,PK),二氨基庚二酸途徑(DAP途徑) 中的天冬氨酸激酶(aspartokinase,AK)和三羧酸循環(huán)過程中(TCA) 的檸檬酸合成酶(citrate synthase,CS)。S.pristinaespiralis LS15 分別在初始培養(yǎng)基和優(yōu)化培養(yǎng)基中發(fā)酵,相同時間相同處理方式下測定4種酶的活力。
菌株S.pristinaespiralis LS15在2種培養(yǎng)基中的酶活比較見表5。
普那霉素的分子骨架由很多氨基酸殘基聚合而成[2],因此菌體細胞中氨基酸的合成對于普那霉素的產(chǎn)量有重要的影響,而氨基酸的合成主要來自TCA循環(huán)。從表5的酶活比較中可以看出,CS作為TCA循環(huán)中的第1個關(guān)鍵酶,其酶活在優(yōu)化培養(yǎng)基中提高了68.7%,說明TCA循環(huán)在優(yōu)化培養(yǎng)基中得到了強化。賴氨酸主要由DAP途徑合成,而DAP途徑中的關(guān)鍵酶AK在優(yōu)化培養(yǎng)基中的活性提高了近1倍。TCA循環(huán)的增強勢必需要上游EMP途徑的增強,通過酶活比較可知,EMP途徑中的HK與PK也確實有不同程度的酶活提升。
表5 菌株S.pristinaespiralis LS15在2種培養(yǎng)基中的酶活比較
發(fā)酵是一個非常復(fù)雜的生化反應(yīng)過程,影響其好壞有諸多因素,其中營養(yǎng)成分是一個非常重要的因素,是進行發(fā)酵調(diào)控及過程優(yōu)化的基礎(chǔ),并且需要針對不同的普那霉素生產(chǎn)菌或者突變株開發(fā)出適合其生長及合成產(chǎn)物的培養(yǎng)基。國內(nèi)學(xué)者對普那霉素的研究較少,何云飛等人[13]對一株普那霉素產(chǎn)生菌S.pristinaespiralis 9-10的培養(yǎng)基優(yōu)化發(fā)現(xiàn),適合其發(fā)酵的碳源為葡萄糖或淀粉,有機氮源為魚粉,且二者濃度對普那霉素產(chǎn)量均有較大影響;對S.pristinaespiralis ZP-7[14]的研究發(fā)現(xiàn),培養(yǎng)基中添加1.5 g/L的正丙醇有利于提升普那霉素的發(fā)酵產(chǎn)量;錢思宇等人[15]以S.pristinaespiralis RP59500為研究對象,發(fā)現(xiàn)最適碳源和氮源分別為蔗糖、酵母粉,且補加氨基酸可以有效提升普那霉素的發(fā)酵產(chǎn)量。試驗確定對S.pristinaespiralis LS15發(fā)酵具有顯著影響作用的因素為酵母抽提物、K2HPO4和MgSO4,最終搖瓶產(chǎn)量為2.23 g/L,該發(fā)酵水平仍然不能滿足工業(yè)化生產(chǎn)需求,后續(xù)研究工作需要聚焦于發(fā)酵工藝方面進行優(yōu)化及調(diào)控,進一步提升普那霉素的發(fā)酵水平。
[1] Barrett J F,Kuanbert D H.Is the new streptogramin derivative the answer to MRSA[J].Curr.Invest.Drugs,1993,2(3):245-253.
[2] VazquezD.The Streptogramin family of antibioties,In:Coreora JN,Hahn FE,eds[J].Antibioties,1975,4(12):521-529.
[3] Bergeron M, Moniay G.The pharmacokineties of quinupristin/dalfopristinin laboratory animal sand in humans[J].Antimicrob.Chemother,1997,39 (23):129-135.
[4] Griswold M W,Lomaestro B M,Brioeland L L.Quinupristin/daffopristin (RP59500) injectable Streptogramin combination[J].Am.Healt.Syst.Pharm,1996,53(21):41-53.
[5] Teichgraber P,Biesold A,Pigereva D.Subcellular localization of Hexokinase in the rat cortex[J].Biokhimiya,1972,37 (4):748-756.
[6] Hamano Y,Nicchu I.ε-Poly-L-lysine producer,Streptomyces albulus,has feedback inhibition resistant aspartokinase[J].Appl.Microbiol.Biotechnol,2007 (5):873-882.
[7] Jhadeswar M,William C,Plaxton D.Phosphoenolpyruvate carboxylase protein kinase from developing castor oil seeds:partial purification,characterization,and reversible control by photosynthate supply[J].Planta,2007 (2):1 299-1 310.
[8] James C K,Liang B B.Brain mitochondrial citrate synthase and glutamate dehydrogenase:differential inhibition by fatty acyl coenzyme A derivatives[J].Metabolic.Brain.Disease,1994 (9):143-152.
[9] 姜珊,劉梅,王寶杰,等.大腸桿菌表達抗脂多糖因子的發(fā)酵條件優(yōu)化 [J].中國農(nóng)業(yè)科技導(dǎo)報,2011,13(4):128-134.
[10] 龐倩嬋,紀凱華,王燕森,等.響應(yīng)面法優(yōu)化Paenibacillussp.JX426產(chǎn)黃原膠降解酶發(fā)酵培養(yǎng)基 [J].中國釀造,2011(2):33-37.
[11] 楊玉紅,劉芳,康宗利,等.響應(yīng)面法分析優(yōu)化Streptomyces albus B-215發(fā)酵產(chǎn)聚賴氨酸培養(yǎng)基 [J].中國釀造,2011,11(4):138-142.
[12] Bankar S B,Singhal R S.Optimization of poly-lysine production by Streptomyces noursei NRRL 5126[J].Bioresour Technol,2010 (10):8 370-8 375.
[13] 何云飛.普那霉素發(fā)酵工藝研究 [D].杭州:浙江大學(xué),2007.
[14] 朱林東.普那霉素產(chǎn)生菌基因組重排育種 [D].杭州:浙江大學(xué),2006.
[15] 錢思宇,劉穎利,王昂,等.普那霉素發(fā)酵工藝研究[J].河北化工,2012,35(4):9-14.◇