国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

RNA干擾沉默同源異型基因A5逆轉(zhuǎn)K562/ADM細(xì)胞耐藥性的研究*

2018-03-05 09:05高菲劉文君
關(guān)鍵詞:空白對(duì)照白血病耐藥

高菲,劉文君

(西南醫(yī)科大學(xué)附屬醫(yī)院 兒科,四川 瀘州 646000)

白血?。╨eukemia)是一類造血干細(xì)胞異常的惡性克隆性疾病,是兒童最常見(jiàn)的惡性腫瘤,嚴(yán)重危害兒童的健康[1-2],其治療主要是以化療為主的綜合性治療,而耐藥已成為白血病治療的一大阻礙。研究發(fā)現(xiàn),同源盒(homeobox,HOX)基因的過(guò)表達(dá)可使細(xì)胞分化成熟障礙、造血能力降低,最終可導(dǎo)致造血系統(tǒng)惡性腫瘤的發(fā)生和發(fā)展[3-4]。作為HOX基因家族中的一員,HOXA5定位于7號(hào)染色體(7p15.2),其表達(dá)主要局限在粒-單核細(xì)胞系。據(jù)報(bào)道,HOXA5基因與腫瘤的耐藥性有關(guān),但其作用機(jī)制不清[5]。近年來(lái)研究發(fā)現(xiàn)信號(hào)通路異常與白血病的發(fā)生、發(fā)展及其多重耐藥密切相關(guān),其中p38絲裂原活化蛋白激酶(p38 mitogen-activated protein kinase,p38MAPK)信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路異常是白血病耐藥的重要機(jī)制之一[6-9],其主要參與細(xì)胞的活化、生長(zhǎng)及凋亡。研究表明HOX基因與p38MAPK信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路的活化存在相關(guān)性[10]。因此,我們推測(cè)HOXA5基因可能通過(guò)p38MAPK通路逆轉(zhuǎn)K562/ADM的耐藥性。

RNA干擾(RNA interferene,RNAi)技術(shù)是雙鏈RNA(double strand RNA,dsRNA)介導(dǎo)的序列特異性轉(zhuǎn)錄后引起同向靶基因表達(dá)沉默,具有快速、特異、高效等優(yōu)點(diǎn)[11]。本實(shí)驗(yàn)建立在前期設(shè)計(jì)并合成3條針對(duì)HOXA5的特異性有效siRNA序列,并通過(guò)相關(guān)檢測(cè)方法篩選出對(duì)HOXA5表達(dá)抑制效率最佳的1條siRNA序列的基礎(chǔ)上[12-13],通過(guò)RNAi技術(shù)沉默HOXA5,探討p38MAPK信號(hào)通路在耐藥白血病細(xì)胞中的作用,為耐藥白血病的靶向治療提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

人白血病耐阿霉素細(xì)胞株K562/ADM細(xì)胞(購(gòu)自上海信裕生物科技有限公司),阿霉素(購(gòu)自浙江海正藥業(yè)股份有限工司),RPMI 1640培養(yǎng)液和胎牛血清(購(gòu)自美國(guó)Hyclone公司),二甲基亞砜(DMSO)(購(gòu)自美國(guó)Sigma公司),100 u/ml青霉素和0.1 mg/ml鏈霉素雙抗、總RNA提取試劑盒、CCK8及辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔二抗(購(gòu)自碧云天公司),逆轉(zhuǎn)錄試劑盒及實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(quantitative real-time polymerase chain reaction,qRT-PCR)試劑盒(購(gòu)自日本ToYoBo公司),Annexin V-PE/7-AAD細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒及細(xì)胞周期檢測(cè)試劑盒(購(gòu)自南京凱基生物科技有限公司),脂質(zhì)體LipofectamineTM2000(購(gòu)自美國(guó)Invitrogen公司),靶向HOXA5的siRNA序列、陰性對(duì)照siRNA序列(杭州艾迪康公司合成),兔抗人HOXA5多克隆抗體一抗(購(gòu)自英國(guó)Abcam公司),兔抗人p38MAPK及p-p38MAPK多克隆抗體一抗(購(gòu)自美國(guó)CST公司)。

1.2 細(xì)胞培養(yǎng)

將K562/ADM細(xì)胞懸浮于含有10%胎牛血清、100 u/ml青霉素和0.1 mg/ml鏈霉素雙抗、1 000 ng/ml阿霉素完全培養(yǎng)基中并接種在培養(yǎng)瓶,置于5%二氧化碳CO2的37℃飽和濕度的培養(yǎng)箱中連續(xù)培養(yǎng)。每2天更換1次培養(yǎng)液并傳代,實(shí)驗(yàn)前細(xì)胞用無(wú)ADM的完全培養(yǎng)基培養(yǎng)2周,取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 細(xì)胞的實(shí)驗(yàn)分組及轉(zhuǎn)染 實(shí)驗(yàn)先分為K562細(xì)胞及K562/ADM細(xì)胞組。然后以本課題組前期實(shí)驗(yàn)為基礎(chǔ)對(duì)K562/ADM細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)染后再分為3組:實(shí)驗(yàn)組(pRNAT-GFP-Neo-siHOXA5),陰性對(duì)照組(pRNAT-GFP-Neo-siNC),空白對(duì)照組(未作任何處理的K562/ADM)。本課題組前期設(shè)計(jì)并合成3條針對(duì)HOXA5的特異性有效siRNA序列,并篩選出對(duì)HOXA5抑制率最高的1條序列,正向:5'-TTGCGGTCGCTATCCAAATGG-3',反向:5'-CCATT TGGATAGCGACCGCAA-3'[12-13]。根據(jù)此序列合成靶向抑制HOXA5的特異性真核表達(dá)載體pRNAT-GFPNeo-siHOXA5,并設(shè)計(jì)合成陰性對(duì)照載體pRNATGFP-Neo-siNC。轉(zhuǎn)染時(shí)調(diào)整細(xì)胞濃度為3×107個(gè)/ml接種于6孔板內(nèi),按LipofectamineTM2000說(shuō)明書將脂質(zhì)體與表達(dá)載體在無(wú)血清無(wú)抗生素培養(yǎng)基中混合配成轉(zhuǎn)染液轉(zhuǎn)染K562/ADM細(xì)胞。優(yōu)化轉(zhuǎn)染條件,實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3次。收集上述各組細(xì)胞進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。

1.3.2 CCK-8檢測(cè) CCK-8實(shí)驗(yàn)采用的ADM的干預(yù)濃度依次為1.25、2.50、5.00、10.00、20.00及40.00 μg/ml。分別收集上述各組細(xì)胞,經(jīng)不同濃度的ADM干預(yù)后調(diào)整細(xì)胞濃度為1×105個(gè)/ml,用微量移液器吸取100 μl細(xì)胞懸液加入96孔板中,同時(shí)設(shè)置對(duì)照組和空白調(diào)零組,每組設(shè)3個(gè)復(fù)孔,每孔再加10 μl的CCK-8溶液,放入CO2培養(yǎng)箱內(nèi)作用2 h,在450 nm處用酶標(biāo)儀測(cè)量各孔的OD值。求得均值計(jì)算細(xì)胞增殖抑制率,增殖抑制率=(OD對(duì)照組-OD實(shí)驗(yàn)組)/(OD對(duì)照組-OD空白組)×100%。IC50=Ig-1[Xm-i(∑p-0.5)]。耐藥逆轉(zhuǎn)倍數(shù)=對(duì)照IC50/實(shí)驗(yàn)IC50。

1.3.3 qRT-PCR檢測(cè)各組細(xì)胞中HOXA5及P38的mRNA表達(dá) 收集上述各組細(xì)胞,用總RNA提取試劑盒提取總RNA,逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,熒光定量PCR法擴(kuò)增目的基因和內(nèi)參照基因人GAPDH。HOXA5、p38及GAPDH引物擴(kuò)增片段長(zhǎng)度分別為140、130及262 bp,各引物的序列見(jiàn)表1。熒光定量PCR反應(yīng)條件:95℃預(yù)變性60 s;95℃變性15 s,60℃退火15 s,72℃延伸45 s,共40個(gè)循環(huán)。數(shù)據(jù)運(yùn)用公式RQ=2-△△Ct的方法進(jìn)行分析,由此表示目的基因mRNA的相對(duì)表達(dá)水平。

表1 HOXA5、p38及GAPDH引物序列

1.3.4 Western blot檢測(cè)各組細(xì)胞中HOXA5、p38及p-p38的蛋白表達(dá) 分別收集上述各組細(xì)胞,按照全蛋白提取試劑盒說(shuō)明書提取細(xì)胞全蛋白。BCA法測(cè)蛋白濃度,根據(jù)蛋白濃度取等量蛋白,加5×SDS上樣緩沖液煮沸5 min,進(jìn)行SDS-PAGE電泳后將蛋白轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,用含5%脫脂奶粉的TBST封閉2 h,經(jīng) TBST 充分漂洗(5 min,3次),HOXA5、p38及 p-p38多克隆抗體均按1∶1 000稀釋。4℃孵育過(guò)夜,充分漂洗后加山羊抗兔二抗按照1∶3 000稀釋,室溫27℃孵育1 h,ECL發(fā)光顯影。通過(guò)Gel-Pro annalyzer軟件分析圖像,以HOXA5、p38及p-p38蛋白條帶的灰度值與β-actin蛋白條帶的灰度值的比值表示目的蛋白的相對(duì)表達(dá)水平。

1.3.5 Annexin V-PE/7-AAD細(xì)胞凋亡檢測(cè) 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的K562/ADM,轉(zhuǎn)染24 h后,每組再分為ADM未干預(yù)組及加濃度為2.5 μg/ml的ADM干預(yù)組。用冷PBS將上述細(xì)胞組的細(xì)胞洗2次,調(diào)整細(xì)胞密度為3×105個(gè) /ml將細(xì)胞重懸于 50 μl的 Binding Buffer,并加入5 μl 7-AAD,室溫27℃,避光染色5~15 min,然后分別加入450 μl Binding Buffer混勻,再加入1 μl Annexin V-PE,室溫27℃,避光染色5~15 min,在1 h內(nèi)上流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡率。實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3次。

1.3.6 細(xì)胞周期的檢測(cè) 取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的K562/ADM,轉(zhuǎn)染24 h后用冷PBS將上述細(xì)胞組的細(xì)胞洗2次,調(diào)整細(xì)胞密度為1×106個(gè)/ml,取1 ml的單細(xì)胞懸液去除上清液,用70%的冷乙醇500 μl懸浮細(xì)胞4℃放置2 h或至過(guò)夜對(duì)細(xì)胞進(jìn)行固定,PBS洗滌去乙醇。加入RNAase 100 μl 37℃水浴30 min。采用流式細(xì)胞儀進(jìn)行DNA含量測(cè)定,結(jié)果用Multicycle software進(jìn)行分析。實(shí)驗(yàn)獨(dú)立重復(fù)3次。

1.4 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

數(shù)據(jù)分析采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,計(jì)數(shù)資料用方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 熒光顯微鏡觀察轉(zhuǎn)染的各組細(xì)胞

用脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染K562/ADM細(xì)胞24 h后,在熒光顯微鏡下觀察各組細(xì)胞,因?yàn)檗D(zhuǎn)入的重組質(zhì)粒載體pRNA-GFP-Neo-siHOXA5和pRNAT-GFP-Neo-siNC帶綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)基因,因此實(shí)驗(yàn)組和陰性對(duì)照組在熒光顯微鏡觀察下出現(xiàn)綠色熒光,而空白對(duì)照組未見(jiàn)熒光。見(jiàn)圖1。

2.2 ADM對(duì)各組細(xì)胞的抑制作用

ADM對(duì)各組細(xì)胞均有抑制作用,各組細(xì)胞的IC50比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=98.325,P=0.000),實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞的IC50與對(duì)照組比較降低(P<0.05)。見(jiàn)表 2。

2.3 細(xì)胞中HOXA5、p38的mRNA表達(dá)情況

K562/ADM細(xì)胞中HOXA5的mRNA表達(dá)高于K562細(xì)胞(P<0.05)。重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)染對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的K562/ADM細(xì)胞后,比較各組細(xì)胞中HOXA5 mRNA的表達(dá)量,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=122.282和172.900,均P=0.000),重組質(zhì)粒能抑制K562/ADM細(xì)胞中HOXA5的mRNA表達(dá)(P<0.05),同時(shí)p38的mRNA表達(dá)經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=152.817和34.227,均P=0.001),結(jié)果顯示,實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組比較p38的mRNA表達(dá)增高(P<0.05),而陰性對(duì)照組與空白對(duì)照組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表 3、4 和圖 2。

圖1 普通倒置相差顯微鏡及熒光顯微鏡下轉(zhuǎn)染的各組K562/ADM細(xì)胞

表2 ADM作用下各組細(xì)胞IC50的變化

2.4 各組細(xì)胞中HOXA5、p38及p-p38的表達(dá)情況

Western blot檢測(cè)發(fā)現(xiàn),K562細(xì)胞中HOXA5蛋白的相對(duì)表達(dá)量低于K562/ADM細(xì)胞(P<0.05)。穩(wěn)定轉(zhuǎn)染后比較各組中HOXA5蛋白及p-p38的表達(dá),經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=1722.480和115.433,均P=0.000),實(shí)驗(yàn)組中HOXA5蛋白被抑制(P<0.05)。實(shí)驗(yàn)組中p-p38的蛋白相對(duì)表達(dá)量高于對(duì)照組(P<0.05)。而陰性對(duì)照組與空白對(duì)照組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。結(jié)果表明,siRNA能特異性沉默K562/ADM中的HOXA5基因,并使p38激活為p-p38,但對(duì)p38的蛋白表達(dá)量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=4.153,P=0.074)。見(jiàn)表5和圖3。

表3 HOXA5的mRNA表達(dá) (±s)

表3 HOXA5的mRNA表達(dá) (±s)

相對(duì)表達(dá)量(RQ=2-ΔΔCt)實(shí)驗(yàn)組 0.31±0.12 0.22±0.09陰性對(duì)照組 1.35±0.10 0.99±0.04空白對(duì)照組 1.37±0.06 1.00 K562 0.58±0.11 0.42±0.11 F值 122.282 172.900 P值 0.000 0.000組別 HOXA5 mRNA(目的基因/內(nèi)參照基因)

表4 p38的mRNA表達(dá) (±s)

表4 p38的mRNA表達(dá) (±s)

相對(duì)表達(dá)量(RQ=2-ΔΔCt)實(shí)驗(yàn)組 1.17±0.07 3.26±0.59陰性對(duì)照組 0.38±0.06 1.06±0.29空白對(duì)照組 0.37±0.05 1.00 F值 152.817 34.227 P值 0.000 0.001組別 P38 mRNA(目的基因/內(nèi)參照基因)

圖2 HOXA5、p38及GAPDH的擴(kuò)增產(chǎn)物

2.5 siRNA特異性沉默HOXA5后K562/ADM細(xì)胞的凋亡情況

比較ADM未干預(yù)及ADM干預(yù)中各組細(xì)胞的凋亡,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=17.606和423.492,P=0.003和0.000)。ADM未干預(yù)及干預(yù)中實(shí)驗(yàn)組的凋亡率與對(duì)照組相比增高(P<0.05);ADM干預(yù)中各組細(xì)胞的凋亡率高于ADM未干預(yù)(P<0.05),而ADM干預(yù)與ADM未干預(yù)中陰性對(duì)照組與空白對(duì)照組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見(jiàn)表6和圖4。

2.6 siRNA特異性沉默HOXA5后K562/ADM細(xì)胞的周期變化

各組細(xì)胞的G0/G1期和S期比較,經(jīng)方差分析,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=115.783和70.549,均P=0.000)。與對(duì)照組比較,實(shí)驗(yàn)組G0/G1期升高(P<0.05),而 S期降低(P<0.05)。陰性對(duì)照組與空白對(duì)照組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。3組轉(zhuǎn)染細(xì)胞的G2/M期差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=0.568,P=0.594)。見(jiàn)表7和圖5。

表5 HOXA5、p38、p-p38的蛋白表達(dá) (%,±s)

表5 HOXA5、p38、p-p38的蛋白表達(dá) (%,±s)

圖3 各組細(xì)胞中HOXA5、p38及p-p38的蛋白表達(dá)(Western blot)

表6 ADM干預(yù)下各組細(xì)胞的凋亡率 (%,±s)

表6 ADM干預(yù)下各組細(xì)胞的凋亡率 (%,±s)

圖4 細(xì)胞的凋亡情況 (FCM法)

圖5 細(xì)胞周期的變化 (FCM法)

表7 沉默HOXA5后K562/ADM細(xì)胞周期的分布情況(%,±s)

表7 沉默HOXA5后K562/ADM細(xì)胞周期的分布情況(%,±s)

組別 G0/G1 G2/M S實(shí)驗(yàn)組 46.85±2.01 10.82±2.62 42.93±1.68陰性對(duì)照組 25.52±2.29 12.21±2.51 62.60±2.26空白對(duì)照組 27.55±1.22 11.85±3.00 60.26±2.59 F值 115.783 0.568 70.549 P值 0.000 0.594 0.000

3 討論

哺乳動(dòng)物的HOX基因在結(jié)構(gòu)上分為A、B、C、D 4個(gè)簇,依次定位于7、17、12及2號(hào)染色體上,其按照線性順序進(jìn)行表達(dá)并參與造血細(xì)胞的發(fā)育調(diào)控[14]。據(jù)報(bào)道,HOX基因在許多髓系白血病樣品中高表達(dá),但是其表達(dá)的模式和相關(guān)監(jiān)管機(jī)制并不清楚[15]。在MLL患者中能檢測(cè)到上調(diào)的HOXA基因,HOXA異常表達(dá)是造血細(xì)胞正常分化的一大障礙[16]。而HOXA5基因作為HOXA族中的一員,對(duì)白血病的發(fā)生、發(fā)展同樣具有重要影響。FULLER等[17]發(fā)現(xiàn),過(guò)度表達(dá)HOXA5的K562細(xì)胞株紅細(xì)胞分化被抑制,抑制HOXA5表達(dá)有助于增高紅細(xì)胞祖細(xì)胞的分化及成熟。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,HOXA5基因在K562及K562/ADM細(xì)胞中高表達(dá),且其在K562/ADM中的表達(dá)高于K562細(xì)胞,進(jìn)一步證明HOXA5的過(guò)表達(dá)與白血病的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)。

兒童慢性髓系白血病的5年生存率(5-year event-free survival,EFS)為44%[18],復(fù)發(fā)和耐藥是影響其生存率的重要原因,因此,進(jìn)一步研究髓系白血病的耐藥機(jī)制具有重要意義[19]。有研究表明,運(yùn)用RNAi技術(shù)抑制HOXA7基因的表達(dá)在一定程度上可逆轉(zhuǎn)白血病細(xì)胞U937的多重耐藥[20]。據(jù)報(bào)道,通過(guò)降低和提高細(xì)胞中HOXA5的表達(dá),觀察肺癌細(xì)胞對(duì)小細(xì)胞肺癌(SCLC)常用化療藥物敏感性的變化發(fā)現(xiàn)HOXA5可能參與SCLC耐藥性的產(chǎn)生[5]。而本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示K562/ADM細(xì)胞中HOXA5的表達(dá)增高,RNAi特異性沉默K562/ADM細(xì)胞中的HOXA5基因后,實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞對(duì)ADM的IC50較對(duì)照組的IC50降低2.55倍。結(jié)果提示,HOXA5基因與白血病細(xì)胞的耐藥性相關(guān),沉默HOXA5基因能在一定程度上逆轉(zhuǎn)白血病細(xì)胞的耐藥性,與上述報(bào)道[20,5]的研究結(jié)果相似。

CUI等[10]應(yīng)用TGF-β2抑制性抗體及p38抑制劑等干預(yù)胰腺癌細(xì)胞后發(fā)現(xiàn)下調(diào)HOXA10能降低TGF-β2及MMP-3的表達(dá)并抑制p38的活化,表明HOX基因與p38的活化相關(guān)。本實(shí)驗(yàn)中有效沉默K562/ADM細(xì)胞中的HOXA5基因后,經(jīng)檢測(cè)后發(fā)現(xiàn)實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞中的p38 mRNA及p-p38蛋白表達(dá)增高。結(jié)果提示,沉默HOXA5能增強(qiáng)p38mRNA的表達(dá),并能激活p38使其磷酸化為p-p38,與CUI等[10]的研究結(jié)果相似。

結(jié)果顯示ADM未干預(yù)及ADM干預(yù)中,實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞的凋亡率較對(duì)照組增高;并且ADM干預(yù)組中各組細(xì)胞的凋亡率高于ADM未干預(yù)組。在細(xì)胞周期檢測(cè)中,實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組比較G0/G1期細(xì)胞比例增加,S期細(xì)胞比例相應(yīng)降低,說(shuō)明抑制HOXA5的表達(dá)能減緩G0/G1期細(xì)胞進(jìn)入增殖周期,減少細(xì)胞分裂增殖。以上結(jié)果提示沉默HOXA5基因后,能在一定程度上能增強(qiáng)細(xì)胞對(duì)ADM的敏感性,阻滯細(xì)胞的G0/G1期,減少細(xì)胞分裂增殖,從而促進(jìn)細(xì)胞的凋亡。

綜上所述,HOXA5與K562/ADM細(xì)胞的耐藥性密切相關(guān)。沉默HOXA5在一定程度上能逆轉(zhuǎn)白血病的多重耐藥,其機(jī)制可能是通過(guò)增強(qiáng)p38的mRNA表達(dá)并使其激活為p-p38。RNAi技術(shù)沉默HOXA5基因后,激活p38MAPK信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路逆轉(zhuǎn)K562/ADM細(xì)胞的耐藥性可能成為耐藥白血病治療的新靶點(diǎn)。

[1]MAGNO G D, SILVA N L, FELIZ P V, et al. Avascular necrosis of the jaws as initial presentation of acute leukemia[J]. Quintessence International, 2016, 47(9): 791-796.

[2]XU Q, LIU W J. Platelet changes in acute leukemia[J]. Cell Biochemistry and Biophysic, 2013, 67(3): 1473-1479.

[3]LIU W J, ZHANG T, GUO Q L, et al. Effect of ATRA on the expression of HOXA5 gene in K562 cells and its relationship with cell cycle and apoptosis[J]. MOL MED REP, 2016, 13: 4221-4228.

[4]FOURNIER M, RONDEAU I S, LAROCHELLE F, et al. Inability of HOXB4 to enhance self- renewal of malignant B cells:favourable pro fi le for the expansion of autologous hematopoietic stem cells[J]. Experimental Hematology, 2014, 42(7): 526-535.

[5]肖法嫚,陳珍珠 ,曾香萍,等. 同源異型盒基因 HOXA5對(duì)小細(xì)胞肺癌細(xì)胞多藥耐藥性的影響[J]. 南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2013,33(11): 1665-1668.

[6]WESAM A, RICHARD V E. Signal transduction in the chronic leukemias: Implications for targeted therapies[J]. Curr Hematol Malig Rep, 2013, 8(1): 71-80.

[7]IGEA A, NEBREDA A R. The stress kinase p38αas a target for cancer therapy[J]. Cancer Research, 2015, 75(19): 3997-4002.

[8]KIM S H, BARK H, CHOI C H. Mercury induces multidrug resistance-associated protein gene through p38 mitogen-activated protein kinase[J]. Toxicology Letters, 2004, 155(1): 143-150.

[9]BARANCíK M, BOHáCOVá V, KVACKAJOVá J, et al.SB203580, a specific inhibitor of p38-MAPK pathway, is a new reversal agent of P-glycoprotein-mediated multidrug resistance[J].European Journal of Pharmaceutical Sciences, 2001, 14(1): 29-36.

[10]CUI X P, QIN C K, ZHANG Z H, et al. HOXA10 promotes cell invasion and MMP-3 expression via TGFβ2 -mediated activation of the p38 MAPK pathway in pancreatic cancer cells[J]. Digestive Diseases and Sciences, 2014, 59: 1442-1451.

[11]OLIVIERI D, SYKORA M M, SACHIDANANDAM R, et al.An in vivo RNAi assay identifies major genetic and cellular requirements for primary piRNA biogenesis in Drosophila[J].Embo Journal, 2010, 29(19): 3301-3317.

[12]HUANG H P, LIU W J, GUO Q L, et al. Effect of silencing HOXA5 gene using RNA interference on cell cycle and apoptosis in Jurkat cells[J]. INT J MOL MED, 2016, 37(3): 669-678.

[13]YANG Y, LIU W J, HUANG H P, et al. The in fl uence of HOXA5-speci fi c siRNA on the expression of Livin and Smac proteins[J].EUR REV MED PHARMACO, 2016(20): 3101-3111.

[14]ALHARBI R A, PETTENGELL R, PANDHA H S, et al. The role of HOX genes in normal hematopoiesis and acute leukemia[J].Leukemia, 2013, 27(5): 1000-1008.

[15]SPENCER D H, YOUNG M A, LAMPRECHT T L, et al.Epigenomic analysis of the HOX gene loci reveals mechanisms that may control canonical expression patterns in AML and normal hematopoietic cells[J]. Leukemia, 2015, 29(6): 1279-1289.

[16]ALESSA K, DENISE L, ROLF M. The IRX1/HOXA connection:insights into a novel t (4; 11) - specific cancer mechanism[J].Oncotarget, 2016, 7(23): 35341-35352.

[17]FULLER J F, MCADARA J, YARON Y, et al. Characterization of HOX gene expression during myelopoiesis: role of HOX A5 in lineage commitment and maturation[J]. Blood, 1999, 93(10):3391-3400.

[18]GATTA G, LUKSCH R, COLEMAN M P, et al. Survival from acute non- lymphocytic leukaemia (ANLL) and chronic myeloid leukaemia (CML) in European children since 1978: a populationbased study[J]. European Journal of Cancer, 2001, 37(6): 695-702.

[19]SUMITOMO Y, KOYA J, NAKAZAKI K, et al. Cytoprotective autophagy maintains leukemia- initiating cells in murine myeloid leukemia[J]. Blood, 2016, 128(12): 1614-1624.

[20]尹寶慧,賈秀紅,李建廠. RNA干擾抑制HOXA7表達(dá)能逆轉(zhuǎn)白血病U937細(xì)胞多藥耐藥[J]. 腫瘤,2013,33(7): 155-160.

猜你喜歡
空白對(duì)照白血病耐藥
白血病“造訪”,人體會(huì)有哪些信號(hào)?
小麥不同肥力下經(jīng)濟(jì)效益試驗(yàn)研究
外源性透明質(zhì)酸對(duì)人牙周膜細(xì)胞增殖及成牙骨質(zhì)、成纖維分化的影響
如何判斷靶向治療耐藥
Ibalizumab治療成人多耐藥HIV-1感染的研究進(jìn)展
miR-181a在卵巢癌細(xì)胞中對(duì)順鉑的耐藥作用
例析陰性對(duì)照與陽(yáng)性對(duì)照在高中生物實(shí)驗(yàn)教學(xué)中的應(yīng)用
超級(jí)耐藥菌威脅全球,到底是誰(shuí)惹的禍?
走進(jìn)兒童白血病的世界
鏡像治療截肢后幻肢痛的隨機(jī)對(duì)照試驗(yàn)