王文龍,趙學(xué)亮,孫 柯,馮陳晨,白麗艷,王姝懿,3,王夢(mèng)雅,劉春霞
(1. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院,農(nóng)業(yè)部動(dòng)物疾病臨床診療技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,呼和浩特 010018;2. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)學(xué)院,呼和浩特 010018;3. 內(nèi)蒙古自治區(qū)綜合疾病預(yù)防控制中心,呼和浩特 010018; 4. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,呼和浩特010018)
駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)(Parabronemaskrjabini)屬于旋尾目,副柔屬[1-2],是一種寄生在駱駝、牛、羊等反芻動(dòng)物真胃引起疾病的寄生蟲(chóng),其中駱駝是其最適宜的終末宿主[3-4]。當(dāng)駱駝大量感染斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)時(shí)會(huì)導(dǎo)致腹瀉、生長(zhǎng)遲緩,真胃黏膜潰瘍、出血,淋巴細(xì)胞浸潤(rùn)等現(xiàn)象,嚴(yán)重者會(huì)導(dǎo)致貧血死亡。國(guó)內(nèi)自楊曉野[5]最早發(fā)現(xiàn)斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病以來(lái),經(jīng)流行病學(xué)調(diào)查發(fā)現(xiàn)斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)已廣泛存在,并且在不同地區(qū)的感染率為72%~100%。據(jù)報(bào)道,內(nèi)蒙古地區(qū)雙峰駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)感染率高達(dá)100%,感染強(qiáng)度最高可達(dá)7 611條[6]。目前,斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病仍然嚴(yán)重危害我國(guó)牧區(qū)駱駝的健康,制約著當(dāng)?shù)仞B(yǎng)駝業(yè)的發(fā)展,給農(nóng)牧民造成巨大的經(jīng)濟(jì)損失。
由于駱駝主要分布在經(jīng)濟(jì)欠發(fā)達(dá)國(guó)家或地區(qū),導(dǎo)致斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病的相關(guān)研究資料較少,尤其是駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病致病作用的資料極度缺乏。目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)于駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病的研究主要在于形態(tài)學(xué)鑒定、流行病學(xué)調(diào)查等方面[7],尚無(wú)有效疫苗用于該病的預(yù)防,也未見(jiàn)報(bào)道該病有效的生前診斷方法。目前,在生產(chǎn)實(shí)踐中,往往是在沒(méi)有診斷依據(jù)的情況下盲目給藥驅(qū)蟲(chóng),不僅造成經(jīng)濟(jì)損失,而且也會(huì)導(dǎo)致藥物殘留超標(biāo)和耐藥蟲(chóng)株的產(chǎn)生。因此,對(duì)該病的研究應(yīng)致力于在探索斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病生物學(xué)特征的基礎(chǔ)上,尋找有效的生前診斷方法和制定新的防治措施。
本試驗(yàn)選取駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)為研究對(duì)象,參考已報(bào)道的線(xiàn)蟲(chóng)免疫學(xué)診斷抗原的特點(diǎn),在斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)轉(zhuǎn)錄組測(cè)序分析的基礎(chǔ)上[8-9],篩選出與斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)免疫相關(guān)的基因,通過(guò)Blastx比對(duì)確定駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)免疫相關(guān)基因CTPK(CAMK/TSSK protein kinase)。通過(guò)克隆斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)CTPK基因的CDS區(qū),利用生物信息學(xué)方法對(duì)該基因結(jié)構(gòu)、理化性質(zhì)及抗原表位等進(jìn)行分析和預(yù)測(cè),以期找到優(yōu)勢(shì)抗原表位,為駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病生前診斷方法iELISA的建立和DNA疫苗的研究奠定了理論基礎(chǔ)。
1.1.1蟲(chóng)體和質(zhì)粒駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)樣本采自于巴彥淖爾市烏拉特后旗雙峰駝?wù)嫖浮T隗w視鏡下根據(jù)蟲(chóng)體不同形態(tài)特征鑒定雌雄后分裝到2 mL凍存管中,標(biāo)記后放入液氮中由本實(shí)驗(yàn)室保存,用于RNA的提取。
試驗(yàn)所用菌株:E.coliDH5α,北京全式金(TransGen Biotech)生物技術(shù)有限公司;質(zhì)粒載體:克隆載體pMD19-T simple vector,大連寶生物工程有限公司。
1.1.2主要試劑與儀器Trizol 通用型RNA快速提取試劑盒、高保真酶Prime STAR?GXL DNA Polymerase、標(biāo)準(zhǔn)相對(duì)分子質(zhì)量DNA Marker購(gòu)自TaKaRa公司;DNA凝膠回收試劑盒,購(gòu)自AXYGEN公司,DEPC處理水。NanoDROP核酸濃度測(cè)定儀,ND2000美國(guó)Thermo公司;凝膠影像儀,北京賽智創(chuàng)業(yè)科技有限公司等。
1.2.1總RNA提取與反轉(zhuǎn)錄按照Trizol[10]抽提總RNA說(shuō)明書(shū),提取斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)總RNA。將獲得的總RNA進(jìn)行濃度、純度檢測(cè)后,利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒合成cDNA。
1.2.2目的基因的擴(kuò)增CTPK序列來(lái)自本實(shí)驗(yàn)室駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)高通量轉(zhuǎn)錄組測(cè)序序列,應(yīng)用Primer5.0和Oligo6.24軟件設(shè)計(jì)引物,同時(shí)在引物序列中加入酶切位點(diǎn)EcoRⅠ和XhoⅠ,并由華大基因有限公司合成,預(yù)期擴(kuò)增的DNA片段約為519 bp。引物序列,上游引物:5′-GCAGAATTCATGTCCACAAAGACCAC-3′(下劃線(xiàn)為EcoRⅠ酶切位點(diǎn));下游引物:5′-CCACTCGAGACCGTTTTGTTGCACG-3′(下劃線(xiàn)為XhoⅠ酶切位點(diǎn))。以合成的cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,PCR反應(yīng)體系50 μL:cDNA 4 μL;Up-Primer 1 μL;Down-Primer 1 μL;Prime Star GXL DNA Polymerase 2 μL;5×Prime Star GXL Buffer(Mg2+plus) 10 μL;dNTP Mixture 4 μL;ddH2O 補(bǔ)齊至 50 μL。PCR擴(kuò)增條件: 95 ℃預(yù)變性5 min; 94 ℃變性30 s, 55 ℃退火30 s, 72 ℃延伸1 min,共31個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。將PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)。
將PCR產(chǎn)物目的片段按照Axygen DNA膠回收試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行膠回收,利用寶生物公司的DNA A-Tailing Kit對(duì)CTPK基因PCR產(chǎn)物進(jìn)行平末端DNA片段的3′末端加一個(gè)“A-尾”,從而提高了平末端DNA片段的TA克隆效率。具體步驟:10×A-Tailing Buffer 5 μL;dNTP Mixture 4 μL;A-Tailing Enzyme 0.5 μL;平末端DNA片段0.5~5 μg;補(bǔ)ddH2O至50 μL;緩慢混勻后,72 ℃反應(yīng)20 min;在冰浴中靜置2 min。然后按照pMD19-T說(shuō)明書(shū),將加尾后的PCR產(chǎn)物與克隆載體 pMD19-T 16 ℃過(guò)夜連接,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化至Trans1-T1感受態(tài)細(xì)胞中:將100 μL 感受態(tài)細(xì)胞放入冰盒中融化,加入過(guò)夜連接產(chǎn)物10 μL,混勻后冰浴30 min,42 ℃水浴45 s,冰浴2 min,然后加入無(wú)抗性L(fǎng)B培養(yǎng)液500 μL,37 ℃ 190 r·min-1搖菌2~3 h,最后取100 μL涂布在氨芐青霉素抗性的LB固體培養(yǎng)基上,37 ℃倒置過(guò)夜培養(yǎng)。挑取單克隆菌落放入含有氨芐抗性的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃搖菌一段時(shí)間后,觀察菌液渾濁程度,如有渾濁可進(jìn)行菌液PCR鑒定,陽(yáng)性菌株送華大基因公司進(jìn)行雙向序列測(cè)定。將測(cè)序結(jié)果正確的質(zhì)粒命名為pMD19T-CTPK。
使用DNAStar中的EditSeq推導(dǎo)斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)CTPK基因的氨基酸序列,然后利用Prot-Param在線(xiàn)軟件分析CTPK蛋白的氨基酸序列組成和理化性質(zhì);利用ProtScale軟件分析氨基酸殘基的親疏水性;利用TMHMM Server和SignaIP 4.1 Server[11]分析工具預(yù)測(cè)該蛋白質(zhì)的跨膜區(qū)及信號(hào)肽;利用SOPMA在線(xiàn)軟件分析蛋白質(zhì)的二級(jí)結(jié)構(gòu);根據(jù)在線(xiàn)軟件Phyre2.0[12]預(yù)測(cè)CTPK蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu);應(yīng)用NetPhos3.0 Server軟件預(yù)測(cè)磷酸化位點(diǎn);運(yùn)用SecretomeP軟件預(yù)測(cè)非典型分泌蛋白;利用DNAStar分析CTPK蛋白質(zhì)表面可行性,B細(xì)胞、T細(xì)胞抗原表位等[13]。
以cDNA為模板擴(kuò)增CTPK基因,目的片段為519 bp,用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果與預(yù)期目的基因片段大小一致(圖1)。
M. DNA相對(duì)分子質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)DL2000;1~4. CTPK基因擴(kuò)增產(chǎn)物M. DNA marker DL2000;1-4. Products of CTPK gene圖1 CTPK基因PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.1 PCR amplification of CTPK gene
2.2.1CTPK基因序列分析與測(cè)定利用NCBI中的ORF Finder工具,對(duì)CTPK基因cDNA全長(zhǎng)序列進(jìn)行分析,結(jié)果表明,該基因cDNA序列全長(zhǎng)共519 bp,含有一個(gè)編碼173個(gè)氨基酸的完整ORF。重組基因測(cè)序后序列與轉(zhuǎn)錄組測(cè)序序列相似性為98.46%,發(fā)現(xiàn)8個(gè)突變位點(diǎn):C139T、G165A、C189T、G199A、A213G、G321A、A348T、G408A。利用在線(xiàn)軟件Rare Codon Caltor對(duì)斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)重組基因測(cè)序序列和轉(zhuǎn)錄組序列進(jìn)行稀有密碼子分析,發(fā)現(xiàn)是同義突變,且突變前后稀有密碼子種類(lèi)、數(shù)量沒(méi)有改變。
2.2.2CTPK蛋白理化性質(zhì)分析使用Port-Param在線(xiàn)軟件分析CTPK蛋白的理化性質(zhì),結(jié)果表明CTPK蛋白相對(duì)分子質(zhì)量為20.264 ku,理論等電點(diǎn)(theoretical PI)為9.53,原子總數(shù)共2 831個(gè),分子式(Formula)為C895H1403N263O264S6,包含20種氨基酸,其中含量最高的是Lys(占8.7%),含量最低的是Trp占0.6%;帶正電荷數(shù)(Arg+Lys)為27個(gè),帶負(fù)電荷數(shù)(Asp+Glu)為16個(gè);蛋白質(zhì)不穩(wěn)定指數(shù)(instability index)為53.22,說(shuō)明該蛋白質(zhì)是不穩(wěn)定蛋白(注:不穩(wěn)定系數(shù)小于40,說(shuō)明是穩(wěn)定蛋白,反之則是不穩(wěn)定蛋白);脂肪系數(shù)(Aliphatic index)為64.74;總平均親水指數(shù)(Grand average of hydropathicity)為-0.925,說(shuō)明該蛋白質(zhì)是親水性蛋白;假定所有的半胱氨酸都形成二硫鍵,CTPK在280 nm處的摩爾消光系數(shù)為23 630 (mol·cm),在0.1%(=1 g·L-1)溶液中的摩爾消光系數(shù)為1.154;而當(dāng)所有的二硫鍵打開(kāi)時(shí)280 nm處摩爾消光系數(shù)為23 380 (mol·cm),在0.1%(=1 g·L-1)溶液中摩爾消光系數(shù)1.517。當(dāng)成熟肽N端的1個(gè)氨基酸為Met時(shí),CTPK蛋白在體外哺乳動(dòng)物網(wǎng)狀紅細(xì)胞中的半衰期為30 h,在酵母體內(nèi)的半衰期大于20 h,在大腸埃希菌體內(nèi)的半衰期大于10 h。
2.2.3CTPK蛋白疏水性/親水性預(yù)測(cè)分析氨基酸殘基根據(jù)其親疏水性可分為親水性氨基酸和疏水性氨基酸。親水性氨基酸位于蛋白質(zhì)的表面,連續(xù)在一起形成抗原表位,同時(shí)也是判斷B細(xì)胞抗原表位的主要參數(shù)[14]。而疏水性氨基酸位于蛋白內(nèi)部。應(yīng)用ProtScale在線(xiàn)軟件對(duì)斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)CTPK基因編碼蛋白親水性/疏水性進(jìn)行分析(圖2)。由輸出的文本可知其疏水性在143~144位點(diǎn)有最大值2.222,在27位點(diǎn)有最小值-3.267。根據(jù)氨基酸分值越高疏水性越強(qiáng)或氨基酸分值越低親水性越強(qiáng)的規(guī)律分析得出,CTPK基因編碼蛋白多肽鏈大部分區(qū)域分值為負(fù)值,說(shuō)明該蛋白質(zhì)是親水性蛋白,與Port-Param預(yù)測(cè)結(jié)果相一致。
2.2.4CTPK蛋白跨膜區(qū)和信號(hào)肽預(yù)測(cè)膜蛋白是鑲嵌在生物膜中的蛋白質(zhì),在細(xì)胞中起著至關(guān)重要的作用,它們構(gòu)成了各種激素、受體和神經(jīng)信號(hào),同時(shí)也是離子跨膜的通道。應(yīng)用TMHMM預(yù)測(cè)CTPK蛋白無(wú)跨膜區(qū),不是跨膜蛋白,且整個(gè)蛋白全部位于膜外(圖3),跨膜區(qū)中的氨基酸期望值約為0.176(該數(shù)值大于18時(shí)表明有跨膜區(qū))。
圖2 CTPK蛋白疏水性預(yù)測(cè)Fig.2 Prediction of hydrophobicity of CTPK protein
信號(hào)肽是由蛋白質(zhì)N端15~30個(gè)氨基酸殘基組成的一段疏水肽段,決定蛋白質(zhì)在細(xì)胞中的最終定位。信號(hào)肽不但決定蛋白質(zhì)是否為分泌蛋白,而且與新生肽鏈在細(xì)胞內(nèi)全方位定位有關(guān)。應(yīng)用在線(xiàn)軟件SignalP對(duì)CTPK蛋白的信號(hào)肽進(jìn)行預(yù)測(cè),綜合圖形和輸出文本分析發(fā)現(xiàn)CTPK不存在信號(hào)肽(圖4),但是在運(yùn)用SecretomeP軟件預(yù)測(cè)非典型分泌蛋白發(fā)現(xiàn),NN-Score=0.912(若NN-Score>0.5,判定為非典型分泌蛋白),所以該蛋白質(zhì)屬于分泌蛋白。
圖3 CTPK 蛋白跨膜結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)Fig.3 Prediction of CTPK protein transmembarne domain
圖4 CTPK 蛋白信號(hào)肽序列預(yù)測(cè)Fig.4 Prediction of signal peptide sequence of CTPK protein
2.2.5CTPK蛋白磷酸化位點(diǎn)的預(yù)測(cè)磷酸化是最重要的蛋白質(zhì)翻譯后修飾之一,與蛋白質(zhì)的功能密切相關(guān),蛋白質(zhì)的磷酸化與去磷酸化為真核細(xì)胞提供了調(diào)節(jié)機(jī)制。隨著生物信息學(xué)的發(fā)展,對(duì)磷酸化位點(diǎn)的預(yù)測(cè)和發(fā)現(xiàn)已成為生物信息學(xué)焦點(diǎn)問(wèn)題之一。通過(guò)在線(xiàn)軟件NetPhos2.0 Server預(yù)測(cè)CTPK蛋白磷酸化位點(diǎn)發(fā)現(xiàn)(圖5),當(dāng)潛在磷酸化位點(diǎn)的閾值為0.5時(shí),CTPK蛋白存在24個(gè)潛在的磷酸化位點(diǎn),其中包括10個(gè)絲氨酸位點(diǎn),11個(gè)蘇氨酸位點(diǎn),3個(gè)酪氨酸位點(diǎn)。
圖5 CTPK蛋白磷酸化位點(diǎn)預(yù)測(cè)Fig.5 Prediction of CTPK protein phosphorylation sites
2.2.6CTPK蛋白二級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)通過(guò)在線(xiàn)軟件SOPMA對(duì)斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)CTPK基因編碼蛋白的二級(jí)結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測(cè),可見(jiàn)CTPK蛋白中參與α螺旋形成的氨基酸有34個(gè),占19.65%;參與β轉(zhuǎn)角形成的氨基酸有25個(gè),占14.45%;參與延伸鏈形成的氨基酸有32個(gè),占18.50%;參與無(wú)規(guī)則卷曲形成的氨基酸為82個(gè),占47.40%。
2.2.7CTPK蛋白三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè)應(yīng)用在線(xiàn)軟件 Phyre2.0 對(duì)CTPK蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)預(yù)測(cè),結(jié)果表明:CTPK蛋白由α螺旋、β轉(zhuǎn)角、延伸鏈和無(wú)規(guī)卷曲組合形成超二級(jí)結(jié)構(gòu),經(jīng)折疊、彎曲等一系列復(fù)雜的過(guò)程形成了CTPK蛋白的三級(jí)結(jié)構(gòu)(圖6)。
圖6 CTPK三級(jí)結(jié)構(gòu)的預(yù)測(cè)Fig.6 Prediction of tertiary structure of CTPK
2.2.8CTPK蛋白抗原表位的分析利用DNAStar軟件對(duì)CTPK蛋白抗原表位進(jìn)行分析,由圖7可知其親水性位點(diǎn)主要在1—69、72—74、78—81、84—95、99—103、113—138、158—162、170—173位氨基酸處,與之前ProtScale預(yù)測(cè)的結(jié)果相符。根據(jù)Plot-Emini方法預(yù)測(cè)其表面可行性(圖8),在1—16、19—33、36—60、67—68、82—85、89—91、101—104、111—121、128—137、159—162、171—173位的氨基酸處有較高的可行性。根據(jù)Jameson-Wolf 方法預(yù)測(cè)CTPK蛋白的抗原性系數(shù),該蛋白質(zhì)含有較多潛在的B細(xì)胞抗原表位(圖9),主要位于1—63、67—73、82—96、98—99、101—107、111—126、133—140、148—151、158—164、171—173位氨基酸殘基或其附近,提示這些區(qū)段含有潛在優(yōu)勢(shì)抗原表位。然后再結(jié)合蛋白質(zhì)二級(jí)結(jié)構(gòu)、親疏水性和表面可能性,綜合分析CTPK蛋白潛在的蛋白抗原表位,在1—60、82—95、111—126、133—137、158—162、171—173等位氨基酸殘基區(qū)域β轉(zhuǎn)角和無(wú)規(guī)則卷曲結(jié)構(gòu)較多、親水性和表面可能性指數(shù)較高,暴露于表面的概率較大,提示作為B細(xì)胞抗原表位的可能性較大。T細(xì)胞表位是可以被TCR識(shí)別的抗原表位。應(yīng)用Rothbard-Tayloy方法預(yù)測(cè)含有特定基序(motif)的潛在T淋巴細(xì)胞抗原表位,利用AMPHI方法預(yù)測(cè)免疫優(yōu)勢(shì)輔助性T淋巴細(xì)胞抗原位點(diǎn),綜合兩種方法預(yù)測(cè)T細(xì)胞抗原表位(圖10),CTPK蛋白的T細(xì)胞抗原表位可能有9個(gè),主要位于4—10、42—52、75—77、90—98、105—113、115—118、123—128、130—140、158—161位氨基酸殘基或其附近,且分布較均勻。
近年來(lái),斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病在駱駝養(yǎng)殖中仍處于較高的感染水平,由于駱駝主要分布在經(jīng)濟(jì)欠發(fā)達(dá)國(guó)家或地區(qū),導(dǎo)致斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病的相關(guān)研究資料較少,到目前為止,其確切的生活史仍未完全研究清楚。在斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病的防治上,尚缺乏有效的生前診斷方法和防治新措施。本研究通過(guò)克隆CTPK的編碼區(qū)序列,利用生物信息學(xué)技術(shù)對(duì)分泌蛋白CTPK進(jìn)行分析,采用不同方法和多種參數(shù)聯(lián)合預(yù)測(cè),以提高預(yù)測(cè)的準(zhǔn)確性,為駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病的生前診斷建立和疫苗研制提供參考。
生物信息學(xué)是近年來(lái)發(fā)展起來(lái)的一種高效的研究手段,促進(jìn)了生物學(xué)研究領(lǐng)域的快速發(fā)展[15],在寄生蟲(chóng)的研究上,也得到了廣泛應(yīng)用[16]。生物信息學(xué)技術(shù)已被廣泛應(yīng)用于預(yù)測(cè)和篩選有效的疫苗候選基因[17]。寄生蟲(chóng)的一些分泌性蛋白是蟲(chóng)體的表皮、腸上皮或分泌排泄器官不斷分泌的抗原物質(zhì)。這些抗原暴露于宿主免疫系統(tǒng),是刺激宿主產(chǎn)生特異性免疫應(yīng)答的重要靶抗原,被認(rèn)為是與寄生蟲(chóng)免疫相關(guān)的抗原蛋白,在寄生蟲(chóng)建立寄生生活,免疫調(diào)節(jié)和免疫逃避中起關(guān)鍵作用[18-19]。這些功能性抗原可以為篩選疫苗抗原、發(fā)掘藥物靶點(diǎn)和確定診斷抗原提供依據(jù)[20-21]。
圖7 CTPK蛋白親水性預(yù)測(cè)Fig.7 Prediction of hydrophilicity of CTPK protein
圖8 CTPK蛋白表面可及性預(yù)測(cè)結(jié)果Fig.8 Prediction of surface probability of CTPK protein
圖9 CTPK蛋白B細(xì)胞抗原表位預(yù)測(cè)結(jié)果Fig.9 Prediction of B-cell antigenic epitopes of CTPK protein
圖10 CTPK蛋白T細(xì)胞抗原表位預(yù)測(cè)結(jié)果Fig.10 Prediction for T-cell antigenic epitopes of CTPK protein
本試驗(yàn)克隆了CTPK的編碼區(qū)序列,采用生物信息學(xué)方法對(duì)分泌蛋白CTPK的理化性質(zhì)、二級(jí)結(jié)構(gòu)、B/T細(xì)胞抗原表位進(jìn)行預(yù)測(cè)分析,結(jié)果表明:蛋白質(zhì)理論相對(duì)分子質(zhì)量為20.264 ku,理論等電點(diǎn)為9.53,在組成CTPK蛋白的20種氨基酸中,含量最高的是Lys占8.7%,含量最低的是Trp占0.6%;蛋白質(zhì)不穩(wěn)定指數(shù)為53.22,說(shuō)明該蛋白質(zhì)是不穩(wěn)定蛋白;總平均親水指數(shù)為-0.925,說(shuō)明該蛋白質(zhì)是親水性蛋白,親水區(qū)的存在有利于蛋白的高效表達(dá);CTPK蛋白是一種不具有信號(hào)肽序列的非典型分泌蛋白(NN-Score=0.912),蛋白跨膜區(qū)預(yù)測(cè)分析表明該蛋白質(zhì)不是跨膜蛋白,主要位于胞外區(qū)。利用DNAStar對(duì)斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)CTPK蛋白的T/B細(xì)胞抗原表位進(jìn)行預(yù)測(cè),從該蛋白質(zhì)的親水性與表面可行性等方面分析,該蛋白質(zhì)親水性多肽較多,其合成的多肽很可能易溶于水;表面可行性較高區(qū)域可能位于CTPK蛋白分子表面。綜合分析發(fā)現(xiàn)在1—60、82—95、111—126、133—137、158—162、171—173位氨基酸殘基存在潛在的B細(xì)胞抗原表位;在4—10、42—52、75—77、90—98、105—113、115—118、123—128、130—140、158—161位氨基酸殘基存在潛在的T細(xì)胞抗原表位,具有較好的抗原性,符合寄生蟲(chóng)免疫學(xué)診斷和免疫防治候選基因的特點(diǎn)。本試驗(yàn)為駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病早期快速診斷試劑盒的建立奠定基礎(chǔ),同時(shí)也為其DNA疫苗的研制提供理論依據(jù)。
擴(kuò)增斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)免疫相關(guān)基因CTPK的CDS區(qū),其cDNA序列全長(zhǎng)共519 bp,編碼173個(gè)氨基酸,推導(dǎo)CTPK的相對(duì)分子質(zhì)量為20.26 ku,理論等電點(diǎn)為9.53。結(jié)構(gòu)分析發(fā)現(xiàn),蛋白質(zhì)無(wú)跨膜區(qū),無(wú)規(guī)則卷曲構(gòu)成二級(jí)結(jié)構(gòu)的主要組分,親水性氨基酸比例超過(guò)60%;抗原表位預(yù)測(cè)表明,CTPK蛋白是一種抗原性較高的親水性蛋白。推測(cè)CTPK有望用作斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)的免疫診斷抗原和疫苗候選抗原。
參考文獻(xiàn)(References):
[1]盧俊杰, 靳家聲. 人和動(dòng)物寄生線(xiàn)蟲(chóng)圖譜[M]. 北京: 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社, 2002: 405-459.
LU J J, JIN J S. The map of human and animal parasitic nematodes[M]. Beijing: China Agricultural Science and Technology Press, 2002: 405-459. (in Chinese)
[2]沈杰, 黃兵. 中國(guó)家畜家禽寄生蟲(chóng)名錄[M]. 北京: 中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)技術(shù)出版社, 2004: 105-111.
SHEN J, HUANG B. A list of parasites for livestock and poultry in China[M]. Beijing: China Agricultural Science and Technology Press, 2004: 105-111. (in Chinese)
[3]HASHEMINASAB S S. Molecular characterization of the first internal transcribed spacer of rDNA ofParabronemaskrjabinifor the first time in sheep[J].AnnParasitol, 2015, 61(4): 241-246.
[4]HASHEMINASAB S S, JALOUSIAN F, MESHGI B. Molecular and morphological characterization ofParabronemaskrjabiniof sheep and goats at three different geographical zones in Iran[J].AnnParasitol, 2016, 62(1): 55-61.
[5]楊曉野. 內(nèi)蒙古自治區(qū)駱駝寄生蟲(chóng)種類(lèi)調(diào)查[D]. 呼和浩特: 內(nèi)蒙古農(nóng)牧學(xué)院, 1985: 40-41.
YANG X Y. Camel parasitic species investigation in Inner Mongolia Autonomous Region[D]. Hohhot: Inner Mongolia Agricultural University, 1985: 40-41. (in Chinese)
[6]楊蓮茹, 楊曉野, 劉珍蓮, 等. 內(nèi)蒙古地區(qū)駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)(Parabronemaskrjabini)病調(diào)查[J]. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào), 2004, 25(1): 43-45.
YANG L R, YANG X Y, LIU Z L, et al. Investigation ofParabronemaSkrjabinidisease of camels in Inner Mongolia Region[J].JournalofInnerMongoliaAgriculturalUniversity, 2004, 25(1): 43-45. (in Chinese)
[7]趙治國(guó). 我國(guó)駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)病傳播媒介的研究[D]. 呼和浩特: 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 2010.
ZHAO Z G. Study on the vector of camelParabronemosisin China[D]. Hohhot: Inner Mongolia Agricultural University, 2010. (in Chinese)
[8]張曉東, 楊曉野, 楊蓮茹, 等. 斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)rDNA-ITS片段的克隆及序列分析[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2009, 40(5): 775-779.
ZHANG X D, YANG X Y, YANG L R, et al. Cloning and sequence analysis of the rDNA-ITS ofParabronemaskrjabini[J].ActaVeterinariaetZootechnicaSinica, 2009, 40(5): 775-779. (in Chinese)
[9]馮陳晨, 王文龍, 呼和巴特爾. 駱駝斯氏副柔線(xiàn)蟲(chóng)轉(zhuǎn)錄組的高通量測(cè)序及分析[J]. 中國(guó)獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2017, 37(4): 671-675.
FENG C C, WANG W L, HUHR B T E. Sequencing and analysis of the transcriptome ofParabronemaskrjabiniin camle[J].ChineseJournalofVeterinaryScience, 2017, 37(4): 671-675. (in Chinese)
[11]PETERSEN T N, BRUNAK S, VON HEIJNE G, et al. SignalP 4.0: discriminating signal peptides from transmembrane regions[J].NatMethods, 2011, 8(10): 785-786.
[12]KELLEY L A, MEZULIS S, YATES C M, et al. The Phyre2 web portal for protein modeling, prediction and analysis[J].NatProtoc, 2015, 10(6): 845-858.
[13]李玲玲, 朱珊麗, 李文姝, 等. EB病毒核蛋白-1 B細(xì)胞表位的預(yù)測(cè)及其同源性分析[J]. 生物醫(yī)學(xué)工程學(xué)雜志, 2011, 28(2): 371-375.
LI L L, ZHU S L, LI W S, et al. Prediction and research on homology of B-cell epitopes of Epstein-Barr virus nuclear antigen-1[J].JournalofBiomedicalEngineering, 2011, 28(2): 371-375. (in Chinese)
[14]SIVALINGAM G N, SHEPHERD A J. An analysis of B-cell epitope discontinuity[J].MolImmunol, 2012, 51(3-4): 304-309.
[15]BLAZIE S M, BABB C, WILKY H, et al. Comparative RNA-Seq analysis reveals pervasive tissue-specific alternative polyadenylation inCaenorhabditiselegansintestine and muscles[J].BMCBiol, 2015, 13: 4.
[16]LIU G H, XU M J, CHANG Q C, et al.Denovotranscriptomic analysis of the female and male adults of the blood flukeSchistosomaturkestanicum[J].ParasitVectors, 2016, 9: 143.
[17]成文敏, 潘偉榮, 尹俊芳, 等. 版納微型豬近交系DLDH基因編碼區(qū)序列擴(kuò)增及生物信息學(xué)分析[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報(bào), 2015, 46(10): 1706-1712.
CHENG W M, PAN W R, YIN J F, et al. Amplification and bioinformatics analysis of coding region of theDLDHgene in Banna Mini-pig inbred line (BMI)[J].ActaVeterinariaetZootechnicaSinica, 2015, 46(10): 1706-1712. (in Chinese)
[18]TRITTEN L, CLARKE D, TIMMINS S, et al.Dirofilariaimmitisexhibits sex-and stage-specific differences in excretory/secretory miRNA and protein profiles[J].VetParasitol, 2016, 232: 1-7.
[19]EBERLE R, BRATTIG N W, TRUSCH M, et al. Isolation, identification and functional profile of excretory-secretory peptides fromOnchocercaochengi[J].ActaTrop, 2015, 142: 156-166.
[20]CAO X D, FU Z Q, ZHANG M, et al. iTRAQ-based comparative proteomic analysis of excretory-secretory proteins of schistosomula and adult worms ofSchistosomajaponicum[J].JProteomics, 2016, 138: 30-39.
[21]CAO X D, FU Z Q, ZHANG M, et al. Excretory/secretory proteome of 14-day schistosomula,Schistosomajaponicum[J].JProteomics, 2016, 130: 221-230.