張宇潔 王麗軍 關波

摘要[目的]通過可培養(yǎng)的方式從泡菜中分離和篩選產轉糖基活性β半乳糖苷酶（βgal）的菌株。[方法]以乳糖為唯一碳源，CaCO3溶鈣圈和添加XGal的MRS篩選平板進行初篩，再通過oNPG法測定菌株βgal活性進行復篩，最后以粗酶液催化乳糖進行轉糖基反應，通過TLC分析確認轉糖基活性。[結果]通過3級篩選，得到具有轉糖基活性βgal的菌株6株。結合其形態(tài)學、生理生化特征及16S rDNA序列同源性分析，確定篩選獲得產轉糖基活性βgal菌株中，5株為發(fā)酵乳桿菌（Lactobacillus fermentum），1株為植物乳桿菌（Lactobacillus plantarum）。[結論]該研究可為以乳糖為底物高效合成功能性的低聚半乳糖提供新的酶源。

關鍵詞泡菜;β-半乳糖苷酶;轉糖基活性;乳酸桿菌;系統(tǒng)發(fā)育

中圖分類號TS255.53文獻標識碼A文章編號0517-6611（2018）25-0159-03

Screening and Identification of Strains Producing βgalactosidase with Transgalactosylation Activity from the Pickles of Hui in Xinjiang

ZHANG Yujie，WANG Lijun，GUAN Bo et al

（School of Food Science， Shihezi University，Shihezi， Xinjiang 832002）

Abstract[Objective]To isolate and screen the strains producing transglycosylated active βgalactosidase（βgal） from pickles by culturable methods. [Method]With lactose as the only carbon source， CaCO3 calcium solution and XGal MRS screening plate were screened， and the activity of strain βgal was rescreened by oNPG method. Finally， the glycosyl reaction was catalyzed by crude enzyme solution， and the activity of glycosyl group was confirmed by TLC analysis. [Result]A total of 6 strains of transglycosyl activated βgal were obtained by three stage screening. According to its morphological， physiological and biochemical characteristics and the homology analysis of 16S rDNA sequence， 5 strains of Lactobacillus fermentum and 1 strain of Lactobacillus plantarum were selected and obtained. [Conclusion]This study provides a new enzyme source for the efficient synthesis of functional Galacto oligosaccharides based on lactose.

Key wordsPickles;βgalactosidase;Transglycosylation activity;Lactobacillus;Phylogeny

β-半乳糖苷酶（β-半乳糖苷半乳糖水解酶，EC 3.2.1.23;βgal）能水解多糖或寡糖中的β-半乳糖苷鍵，一些β-半乳糖苷酶也能催化轉糖基反應[1]。該酶可有效解決乳糖不耐癥問題。乳酸菌來源的β-半乳糖苷酶是胞內酶，最適pH接近中性（pH 6.5 ～ 7.5），尤其適用于牛乳和乳清中乳糖的水解。乳酸菌作為β-半乳糖苷酶的來源，具有多種重要生理功能，作為食品級微生物，應用于食品工業(yè)具有“先天優(yōu)勢”，更容易被消費者接受。據相關文獻報道，乳酸菌來源的β-半乳糖苷酶主要合成β（1→3）和β（1→6）等鍵型結構的低聚糖，應用于功能性低聚糖的生產比目前商業(yè)化的半乳寡聚糖[主要是β（1→4）鍵型]更易被腸道微生物所利用，具有更好的益生效果[2]。

目前為止，盡管具有轉半乳糖基活性β-半乳糖苷酶的微生物來源廣泛，但在食品工業(yè)獲得批準使用并實現工業(yè)化生產的只有米曲霉和克魯維酵母菌屬等少數微生物[3-4]。因此尋找安全性更好、酶學性質更穩(wěn)定，并具有一定生物技術特性的β-半乳糖苷酶成為該領域的研究熱點。筆者對新疆回民自制酸泡菜中產轉糖基活性乳糖酶的菌株進行了分離和鑒定，并對其乳糖酶的轉糖基活性進行了初步分析。

1材料與方法

1.1材料

1.1.1原料。

該試驗所用泡菜取自新疆焉耆地區(qū)回民傳統(tǒng)手工酸白菜。

1.1.2培養(yǎng)基。

MRS培養(yǎng)基：蛋白胨10 g/L，牛肉浸膏10 g/L，酵母浸膏5 g/L，葡萄糖20 g/L，吐溫-80 1 mL/L，K2HPO4 2 g/L，醋酸鈉5 g/L，檸檬酸二銨2 g/L，MgSO4·7H2O 2 g/L，MnSO4·4H2O 0.05 g/L，瓊脂15 g/L（pH 6.2～6.4）。PY基礎培養(yǎng)基：蛋白胨10 g/L，酵母提取物10 g/L，鹽溶液40 mL/L。明膠基礎培養(yǎng)基：蛋白胨5 g/L，牛肉膏 3 g/L，明膠120 g/L，pH 7.0～7.2。硫酸亞鐵半固體培養(yǎng)基：蛋白胨10 g/L，牛肉浸粉3 g/L，酵母提取物3 g/L，硫酸亞鐵0.2 g/L，硫代硫酸鈉0.3 g/L，NaCl 5 g/L，瓊脂粉12 g/L，調pH 7.4 。

1.2方法

1.2.1產βgal菌株的分離、初篩及純化。

取泡菜樣品適量于滅菌生理鹽水中，37 ℃搖床2 h。用已滅菌的生理鹽水稀釋，選3個稀釋度，每個稀釋度取0.1 mL菌種稀釋液，分別滴加到含2%碳酸鈣的MRS平板上涂布，37 ℃培養(yǎng)24 h。接種環(huán)挑取溶鈣圈單菌落于含XGal的篩選平板上劃線分離，37 ℃培養(yǎng)24 h。挑取藍色單菌落于MRS平板上劃線純化，37 ℃培養(yǎng)24 h。

1.2.2βgal酶活的測定。

1.2.2.1oNP標準曲線的繪制。取oNP標準品配制成1 mmol/L（1 μmol/mL）oNP母液，用pH 7.0的磷酸緩沖液稀釋，每毫升分別含oNP 0.02、0.04、0.06、0.08、0.10、0.12、014 μmol，以pH 7.0的磷酸緩沖液為空白，測波長420 nm處吸光度，繪制標準曲線。

1.2.2.2βgal酶活力的計算。50 μL oNPG溶液（50 mmol/L pH 6.5）加入酶標板小孔中，再加入50 μL的粗酶液，于37 ℃下反應10 min，加入200 μL 0.5 mol/L的碳酸鈉溶液終止反應，于420 nm波長處測定吸光值。

1.2.3βgal轉糖基反應的TLC。

1.2.3.1轉糖基試驗。取500 μL用磷酸緩沖液（50 mmol/L pH 6.5）配制的20%乳糖溶液置于離心管中，水浴預熱至37 ℃后加入1 mL粗酶液，37 ℃反應24 h后，沸水浴滅酶10 min，將樣品用無水乙醇稀釋至濃度為1 mg/mL。通過TLC分析低聚糖產量。

1.2.3.2TLC檢測。取活化過的硅膠G玻璃板一塊，用微量進樣器點樣，注意設置標準糖對照，用量約為毛細管1/3，上展層劑使用氯仿、冰乙酸和水的混合物（氯仿∶冰乙酸∶水=30∶35∶5），層析1 h，取出晾干后噴霧顯色劑，置于烘箱中，85 ℃烘烤10 min，觀察層析板上顯現的不同顏色并比較，初步確認轉糖基產物，從而獲得產轉糖基活性乳糖酶的菌株。

1.2.4產βgal菌株的鑒定[5]。

1.2.4.1菌株的形態(tài)特征。接菌于營養(yǎng)瓊脂培養(yǎng)基37 ℃培養(yǎng)24 h，觀察菌落形狀、色澤、透明度等培養(yǎng)特征。挑取少許菌體進行革蘭氏染色觀察。

1.2.4.2

產βgal菌株的生理生化特性。過氧化氫酶試驗;糖發(fā)酵試驗;明膠液化試驗;淀粉水解試驗;硫化氫試驗。

1.2.4.3產βgal菌株的分子鑒定。采用尿素法提取產酶菌株的基因組DNA[1]。采用16S rRNA基因通用引物27f和1492r擴增菌株的16S rDNA。將擴增PCR產物回收后與pMD19-T載體連接，轉化大腸桿菌DH5α后，提取轉化子質粒進行測序。序列比較分析建立系統(tǒng)發(fā)育樹。

2結果與分析

2.1產βgal菌株的形態(tài)特征

從傳統(tǒng)回民自制泡菜中分離純化的菌株均為桿狀，形成乳白色、圓形菌落，形態(tài)如圖1b所示，在添加CaCO3的MRS平板上菌落周圍具有明顯的溶鈣圈（圖1a），革蘭氏染色呈陽性（圖1d），初步表明分離純化的菌株應為乳酸菌菌株。將純化獲得的乳酸菌菌株接種到添加XGal的MRS平板上進行初篩，菌落變藍則表明篩選獲得的乳酸菌菌株能夠產乳糖酶（圖1c）。該研究共篩選獲得產βgal菌株25株。

2.2產βgal菌株酶活的測定

2.2.1

oNP標準曲線的繪制。

以每毫升oNP的濃度為橫坐標，以波長420 nm處測得的吸光度為縱坐標，得到oNP標準曲線，如圖2所示。

2.2.2產βgal菌株的酶活。

采用oNPG法測定25株產酶菌株的酶活，25株初篩菌株的乳糖酶酶活見表1。從表1中可知，在相同培養(yǎng)基、接種量、培養(yǎng)溫度37 ℃及培養(yǎng)36 h后不同菌株所得粗酶液的酶活最低為2.799 U/mL（PC-25），最高為26.289 U/mL（PC-17）。

2.3產βgal菌株粗酶液以乳糖為底物的TLC分析

對相同條件下處理的樣品進行轉糖基反應，通過TLC分析其產物如圖3所示。得到6株具有轉糖基活性的菌株，分別為PC-2、PC-4、PC-5、PC-8、PC-9、PC-10。

2.4產轉糖基活性βgal菌株的生理生化特性

菌株的生理生化鑒定結果顯示，6株菌均能發(fā)酵葡萄糖、乳糖，4號菌還可以發(fā)酵蔗糖、麥芽糖、甘露糖，6株菌均不能發(fā)酵阿拉伯糖、鼠李糖，且淀粉水解試驗、明膠水解試驗、硫化氫產生試驗均為陰性，表明6株菌株在代謝過程中均不能分泌產生淀粉酶和尿素酶來降解大分子物質，也不能產過氧化氫和硫化氫。這些特征與乳酸桿菌的特征極為相似，綜上初步斷定6株菌為乳桿菌。

2.5序列分析

以篩選獲得的具有轉糖基活性乳糖酶菌株的16S rDNA序列與BLAST比對獲得的具有相似性的16S rDNA序列構建系統(tǒng)發(fā)育樹（圖4），表明篩選獲得的產轉糖基活性乳糖酶的菌株均為乳酸桿菌屬（Lactobacillus）菌株，其中5株為發(fā)酵乳桿菌（Lactobacillus fermentum），1株為植物乳桿菌（Lactobacillus plantarum）。

3討論

該試驗以新疆回民自制酸泡菜為研究材料，利用CaCO3溶鈣圈和添加XGal的MRS篩選平板進行初篩獲得產乳糖酶的疑似乳酸菌菌株25株;以濃度20%的乳糖為轉糖基反應底物與適量粗酶液反應，產物采用TLC技術鑒定，獲得產轉糖基活性乳糖酶的菌株6株。采用革蘭氏染色、糖發(fā)酵試驗、淀粉水解試驗、16S rDNA序列技術等7種方法對菌株進行了鑒定，得出了產轉糖基活性乳糖酶菌株的種屬關系，確定其中5株為發(fā)酵乳桿菌（Lactobacillus fermentum），1株為植物乳桿菌（Lactobacillus plantarum）。

目前，產低聚半乳糖微生物酶的使用是國際半乳寡聚糖生產的趨勢，現已有多種不同的產轉糖基化β-半乳糖苷酶微生物的研究，并且還在發(fā)展和尋找新的微生物酶源[6]。乳桿菌屬于益生菌，其廣泛存在于動物腸道、含碳水化合物的動植物發(fā)酵制品中，過去人們更加注意乳酸桿菌和雙歧桿菌對乳糖水解活性的研究，而對轉糖基活性提高發(fā)酵乳制品質量的研究很少。近年來，雙歧桿菌及乳桿菌來源的轉糖基活性β-半乳糖苷酶由于具有獨特的轉糖基特性，逐漸受到關注[7-10]。該研究篩選的產轉糖基活性β-半乳糖苷酶的植物乳桿菌和發(fā)酵乳桿菌，為以乳糖為底物高效合成功能性的低聚半乳糖提供了新的酶源。

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