黃梅青 朱燕華 趙世元
[摘要] 目的 探討石仙桃多糖對(duì)肺炎支原體肺炎模型小鼠的肺泡灌洗液(BALF)中γ-干擾素(IFN-γ)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白細(xì)胞介素(IL)-1β、IL-12等細(xì)胞因子表達(dá)的影響。 方法 采用配對(duì)設(shè)計(jì)隨機(jī)方法將90只BABL/C裸鼠分為三組:模型組、克拉霉素組和石仙桃多糖組,每組30只。用PPLO肉湯培養(yǎng)基培養(yǎng)肺炎支原體,將成功培養(yǎng)的肺炎支原體滴入裸鼠鼻腔1×107 CCU/mL菌液各50 μL(1、5、8 d)。造模第9天開始,石仙桃多糖組用石仙桃多糖干預(yù),克拉霉素組按15 mg/kg劑量灌胃給藥,連續(xù)6 d,模型組灌胃等體積的生理鹽水。干預(yù)1、3、6 d后,分別收集小鼠BALF,用SP4瓊脂平板定量培養(yǎng)BALF肺炎支原體,采用酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)法測(cè)定小鼠BALF中IL-1β、IL-12、IFN-γ、TNF-α等細(xì)胞因子水平,肺部組織用中性甲醛固定HE染色,觀察肺炎支原體感染小鼠肺的病變程度。 結(jié)果 與模型組比較,石仙桃多糖組BALF定量培養(yǎng)肺炎支原體菌落數(shù)量明顯減少(P < 0.05),肺部炎癥明顯好轉(zhuǎn),肺組織病理學(xué)評(píng)分和肺實(shí)質(zhì)炎癥評(píng)分明顯下降(P < 0.05或P < 0.01)。治療第1、3、6天,石仙桃多糖組IL-1β、IL-12、IFN-γ、TNF-α水平較模型組明顯降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。 結(jié)論 石仙桃多糖顯著減輕肺炎支原體肺炎小鼠肺部炎癥,其機(jī)制可能與降低肺炎支原體肺炎模型小鼠體內(nèi)Th1/Th2細(xì)胞因子IL-1β、IL-12、IFN-γ和TNF-α的表達(dá)有關(guān)。
[關(guān)鍵詞] 石仙桃;多糖;肺炎支原體;細(xì)胞因子;Th1/Th2
[中圖分類號(hào)] R766.4 [文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼] A [文章編號(hào)] 1673-7210(2018)03(b)-0015-05
Effect of polysaccharide of Pholidota chinensis Lindl. on the expression of Th1/Th2 cytokines in mice infected with Mycoplasma pneumoniae
HUANG Meiqing1 ZHU Yanhua2 ZHAO Shiyuan2
1.Department of Pediatrics, Chongzuo People's Hospital, Guangxi Zhuang Autonomous Region, Chongzuo 532200, China; 2.Department of Pharmacy, the Affiliated National Hospital of Guangxi Medical University, Guangxi Zhuang Autonomous Region, Nanning 530001, China
[Abstract] Objective To investigate the effects of polysaccharide of Pholidota chinensis Lindl. on the expression of γ- interferon (IFN-γ), tumor necrosis factor-α (TNF-α), interleukin (IL)-1β, IL-12 and other cytokines in bronchoalveolar lavage fluid (BALF) of model mice of Mycoplasma pneumoniae pneumonia. Methods By matched pair design random method, ninety BALB/c nude mice were randomly divided into three groups: model group, Clarithromycin group and polysaccharide of Pholidota chinensis Lindl. group, with 30 mice in each group. PPLO broth medium was used to cultivate mycoplasma pneumonia, the successfully cultivated Mycoplasma pneumoniae was dropped into the nasal cavity of nude mice 1×107 CCU/mL bacteria solution, each 50 μL (1, 5, 8 d). From the ninth day of modeling, polysaccharide of Pholidota chinensis Lindl. group was started to be use polysaccharide of Pholidota chinensis Lindl., Clarithromycin group was given 15 mg/kg of Clarithromycin by intragastric administration, continued for 6 d, the model group was given same volume of normal saline by gavage. After intervention for 1, 3, 6 d, the mice BALF was collected, SP4 agar plate was used to cultivate BALF Mycoplasma pneumoniae quantificationally, enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) was used to detect the levels of IL-1β, IL-12, IFN-γ, TNF-α. Lung tissue was fixed with neutral formalin to take HE staining. The pathological degree of mice infected by Mycoplasma pneumoniae was observed. Results Compared with model group, the number of bacterial colonies of Mycoplasma pneumoniae cultivated by BALF quantificationally in polysaccharide of Pholidota chinensis Lindl. group was reduced significantly (P < 0.05), the pulmonary inflammation was improved significantly, and the scores of lung pathology and pulmonary parenchyma were decreased significantly (P < 0.05 or P < 0.01). After treatment for 1, 3, 6 d, the levels of IL-1β, IL-12, IFN-γ, TNF-α in polysaccharide of Pholidota chinensis Lindl. group were significantly lower than those of model group, the differences were statistically significant (P < 0.05). Conclusion Polysaccharide of Pholidota chinensis Lindl. can significantly reduce the pulmonary inflammation of mice with Mycoplasma pneumoniae pneumonia, the mechanism may be related to reduce the expression of Th1/Th2 cytokines of IL-1β, IL-12, IFN-γ, TNF-α in model mice with Mycoplasma pneumoniae pneumonia.
[Key words] Pholidota chinensis Lindl.; Polysaccharide; Mycoplasma pneumoniae; Cytokine; Th1/Th2石仙桃來(lái)源于蘭科石仙桃屬植物石仙桃Pholidota chinensis Lindl.的假鱗莖或全草,廣泛分布于福建、廣東、廣西等省,其水提物具有養(yǎng)陰、清肺、利濕、消瘀的功效,民間用來(lái)治療眩暈、頭痛、咳嗽、吐血、夢(mèng)遺、痢疾等[1]。石仙桃主要成分是多糖[2],其藥理作用研究較少。本研究采用石仙桃提取的石仙桃多糖通過(guò)建立肺炎支原體肺炎模型BALB/c小鼠,觀察肺炎支原體菌落數(shù)量、肺組織病理學(xué)評(píng)分、肺實(shí)質(zhì)炎癥評(píng)分和肺泡灌洗液(BALF)中γ-干擾素(IFN-γ)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、白細(xì)胞介素(IL)-1β、IL-12等的表達(dá),探討石仙桃多糖治療肺炎支原體肺炎小鼠可能的作用機(jī)制。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
90只BALB/c小鼠,SPF級(jí),北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司提供,動(dòng)物合格證編號(hào):SCXK(京)2016-009。BALB/c小鼠5周齡,(20±2)g,雌雄各半,大鼠飼養(yǎng)條件:室溫20~25℃,用干燥鋸末墊底,室內(nèi)通風(fēng)良好,光線良好充足。大鼠在廣西中醫(yī)藥大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心飼養(yǎng)。
1.2 實(shí)驗(yàn)用藥
石仙桃鱗徑采自廣西區(qū)境內(nèi),經(jīng)廣西中醫(yī)藥大學(xué)藥用植物教研室劉壽養(yǎng)教授鑒定為蘭科石仙桃屬植物石仙桃,石仙桃鱗莖洗凈后切細(xì),干燥后打粉。石仙桃粉加1∶40蒸餾水80℃回流5 h,待冷卻后用無(wú)水乙醇沉淀,沉淀物用丙酮和乙醚萃取數(shù)次,得粗多糖。粗多糖用Sevag法脫除蛋白質(zhì),用95%乙醇沉淀,再將沉淀物水解、醇沉,用丙酮和乙醚脫水,重復(fù)操作數(shù)次,得石仙桃多糖[2]。經(jīng)高效色譜,有一對(duì)稱單峰,并在260~280 nm無(wú)吸收峰,說(shuō)明多糖含量較高。樣品真空包裝、冰箱冷藏保存在廣西醫(yī)科大學(xué)附屬民族醫(yī)院中心實(shí)驗(yàn)室。
1.3 主要儀器和試劑
UV紫外可見分光光度計(jì)(美國(guó)安捷倫公司,型號(hào):1100型);紅外光譜儀(德國(guó)Bruker公司,型號(hào):IR EQUINOX 55);超導(dǎo)核磁共振譜儀(英國(guó)VG公司,型號(hào):ESCALABMK-11型);熔點(diǎn)測(cè)定儀(北京科儀電光儀器廠,型號(hào)XPR-201);離心機(jī)(常州市凱航儀器有限公司,型號(hào):YXJ-2);酶標(biāo)儀(上??迫A生產(chǎn),型號(hào):MK3)。
柱層析用硅膠(100~200目)、薄層層析硅膠(200~300目)均由青島海洋化工生產(chǎn)(批號(hào):14089、141020)。PPLO肉湯培養(yǎng)基購(gòu)于青島海博生物技術(shù)有限公司,肺炎支原體菌液購(gòu)于上海寶米科生物科技有限公司??死顾胤稚⑵ń髦扑幱邢挢?zé)任公司生產(chǎn),批號(hào):20150319)。細(xì)胞因子試劑盒IL-1β(批號(hào):20160608)、IL-12(批號(hào):20160628)、IFN-γ(批號(hào):20160518)、TNF-α(批號(hào):20160512)購(gòu)于BioSource International,Camarillo,CA。
1.4 實(shí)驗(yàn)方法
1.4.1 肺炎支原體的培養(yǎng) 肺炎支原體培養(yǎng)在每瓶20 mL的SP4肉湯中,經(jīng)37℃、5%CO2培養(yǎng)72 h后,肉湯變成橙色,倒出上清液,加新鮮的SP4肉湯2 mL,收集貼壁存活肺炎支原體。將肺炎支原體配成108~109 CFU/mL,加制霉菌素(50 U/mL)和氨芐青霉素(1 mg/mL),樣本保存在-80℃?zhèn)溆谩?/p>
1.4.2 動(dòng)物模型的建立 實(shí)驗(yàn)方案由廣西醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物倫理委員會(huì)審查,所有的動(dòng)物按照實(shí)驗(yàn)動(dòng)物的護(hù)理和使用指南處理。新購(gòu)BALB/c小鼠適應(yīng)新環(huán)境3 d。采用配對(duì)設(shè)計(jì)隨機(jī)方法將90只BALB/c小鼠分為模型組、克拉霉素組和石仙桃多糖組,每組30只。各組小鼠第1天滴鼻接種含1×107 CCU/mL肺炎支原體菌液50 μL(將小鼠頭后仰滴加菌液,使菌液流入呼吸道),第5、8天接種含1×107 CCU/mL肺炎支原體菌液各100 μL。造模成功標(biāo)準(zhǔn):造摸第9天小鼠血液分離培養(yǎng)和PCR檢測(cè)肺炎支原體,確認(rèn)肺炎支原體模型的建立[3]。石仙桃多糖組小鼠于第9天起首次灌胃石仙桃多糖30 mg/kg(0.2 g溶于5%葡萄糖注射液0.1 mL,即0.05 mL/g),以后每天按15 mg/kg灌胃,連續(xù)6 d??死顾亟M造摸第9天起按15 mg/kg克拉霉素劑量灌胃給藥,連續(xù)6 d。模型組同期灌胃給予等體積生理鹽水。用藥期間每天觀察各組小鼠表現(xiàn),如小鼠存活、進(jìn)食、飲水、活動(dòng)度、精神狀態(tài)差,有無(wú)豎毛寒戰(zhàn)、咳嗽,口鼻分泌物有無(wú)增多。在用藥1、3、6 d后,各組分別取10只小鼠,用乙酰丙嗪氯胺酮按5 mg/kg腹腔注射麻醉小鼠后,用25號(hào)針頭將500 μL SP4肉湯注入肺部,隨后又將該液抽吸到注射器,BALF分3管,第1管做肺炎支原體培養(yǎng),第2管做細(xì)胞計(jì)數(shù),第3管離心吸上清并儲(chǔ)存在-80℃;肺標(biāo)本用10%福爾馬林溶液固定進(jìn)行組織學(xué)評(píng)價(jià)。
1.5 觀察指標(biāo)
1.5.1 BAL肺炎支原體培養(yǎng) 將BAL用SP4肉湯稀釋10倍稀釋,接種在SP4瓊脂平板,置37℃培養(yǎng)48 h。通過(guò)計(jì)數(shù)瓊脂板上的菌落數(shù)量推算BAL標(biāo)本細(xì)菌數(shù)量(用log10 CFU/mL表示)。
1.5.2 肺組織病理學(xué)評(píng)分和肺實(shí)質(zhì)炎癥評(píng)分 肺組織經(jīng)10%福爾馬林固定,石蠟包埋切片,經(jīng)蘇木精-伊紅染色。肺組織病理學(xué)評(píng)分由專業(yè)病理醫(yī)師雙盲鏡檢。肺組織病理學(xué)評(píng)分分級(jí)基于細(xì)支氣管支氣管浸潤(rùn)數(shù)目、細(xì)支氣管支氣管管腔滲出程度、血管周圍浸潤(rùn)百分率和實(shí)質(zhì)性肺炎嚴(yán)重程度(中性粒細(xì)胞肺泡浸潤(rùn)),該系統(tǒng)評(píng)分分值為0~26分,分?jǐn)?shù)越高代表肺組織炎性浸潤(rùn)程度越高。肺實(shí)質(zhì)炎癥評(píng)分是基于分級(jí)的中性粒細(xì)胞肺泡浸潤(rùn)(0分,沒有實(shí)質(zhì)性肺炎;3分,片狀實(shí)質(zhì)性肺炎;5分,片狀融合實(shí)質(zhì)性肺炎)[4]。
1.5.3 各組小鼠BALF中Th1/Th2細(xì)胞因子的檢測(cè) 采用酶聯(lián)免疫吸附測(cè)定(ELISA)法檢測(cè)BALF中IL-1β、IL-12、IFN-γ、TNF-α等細(xì)胞因子的水平,操作步驟嚴(yán)格按照試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
采用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)處理,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,多組比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t法。以P < 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 石仙桃多糖對(duì)肺炎支原體肺炎小鼠BALF肺炎支原體培養(yǎng)結(jié)果的影響
各組小鼠BALF定量培養(yǎng)肺炎支原體,結(jié)果顯示,與模型組比較,石仙桃多糖組及克拉霉素組小鼠治療1、3、6 d后,BAL標(biāo)本細(xì)菌數(shù)量均呈現(xiàn)逐漸減少的趨勢(shì),但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P > 0.05)。見圖1。
2.2 石仙桃多糖對(duì)肺炎支原體肺炎小鼠肺組織病理和肺實(shí)質(zhì)炎癥的影響
治療3 d后,與模型組比較,石仙桃多糖組及克拉霉素組肺組織病理學(xué)評(píng)分和肺實(shí)質(zhì)炎癥評(píng)分均明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05或P < 0.01)。治療6 d后,模型組小鼠肺組織出現(xiàn)重度炎癥改變:肺泡出現(xiàn)大量的滲出物,肺泡間質(zhì)增寬,在支氣管和血管周圍以及肺泡間質(zhì)有大量淋巴細(xì)胞和巨噬細(xì)胞浸潤(rùn);克拉霉素組炎癥細(xì)胞明顯減少;石仙桃多糖組小鼠肺組織中炎癥細(xì)胞也明顯減少,可見肺泡間質(zhì)稍增寬,在支氣管、血管周圍有少量淋巴細(xì)胞和巨噬細(xì)胞。見圖2~4。
2.3 石仙桃多糖不同干預(yù)時(shí)間對(duì)肺炎支原體肺炎小鼠BALF中Th1/Th2細(xì)胞因子表達(dá)的影響
治療第1天,石仙桃多糖組肺炎支原體肺炎小鼠BALF中IL-1β、IFN-γ水平明顯下調(diào),與模型組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。治療第3天,石仙桃多糖組肺炎支原體肺炎小鼠BALF中IL-1β、IL-12、IFN-γ水平明顯下調(diào),與模型組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。治療第6天,石仙桃多糖組肺炎支原體肺炎小鼠BALF中IL-1β、IL-12、TNF-α水平明顯下調(diào),與模型組比較差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P < 0.05)。見表1。
3 討論
石仙桃屬是蘭科植物,別名石橄欖、石上仙桃和石上蓮等。石仙桃性甘、淡、涼,具有清熱潤(rùn)燥、化疾止咳、滋陰解毒、涼血止痛等功效,民間用于肺熱咳嗽、肺結(jié)核咳血、淋巴結(jié)結(jié)核、小兒疳積、胃十二指腸潰瘍、慢性骨髓炎等。用石仙桃的鮮品或干品煎湯內(nèi)服,可治肺結(jié)核咳血、慢性咳嗽、胃腸炎、慢性胃炎、小便不利、濕熱浮腫、咽喉腫痛[5-6]。石仙桃的主要成分是多糖,含量高達(dá)2.25%[7]。研究表明,多糖具有多方面的生物活性,如抗病毒、抗炎、抗腫瘤、抗凝血、降糖等作用[8]。但迄今為止,有關(guān)石仙桃多糖的藥理作用研究國(guó)內(nèi)外均鮮見報(bào)道。本研究采用廣西柳州柳江區(qū)石仙桃提取的石仙桃多糖,通過(guò)建立肺炎支原體肺炎模型BALB/c小鼠,探討石仙桃多糖治療肺炎支原體肺炎小鼠可能的作用機(jī)制。
本研究采用石仙桃多糖干預(yù)肺炎支原體肺炎模型小鼠,定量培養(yǎng)小鼠BALF肺炎支原體,結(jié)果發(fā)現(xiàn),肺炎支原體有減少的趨勢(shì),但與模型組比較沒有顯著差異(P > 0.05),石仙桃多糖對(duì)肺炎支原體肺炎定量微生物培養(yǎng)結(jié)果的影響與石仙桃多糖改善肺部炎癥不相關(guān),其可能通過(guò)抑制微生物蛋白合成,影響體內(nèi)肺炎支原體復(fù)制頻率,從而改變宿主免疫系統(tǒng)的激活。
研究發(fā)現(xiàn)肺炎支原體肺炎在發(fā)病免疫學(xué)中起重要作用,其中T細(xì)胞既有免疫保護(hù)又有免疫致病的雙重作用[9-11]。機(jī)體在抵抗病原體、預(yù)防肺炎支原體肺炎肺外并發(fā)癥、加速機(jī)體恢復(fù)中依賴T細(xì)胞的激活。研究發(fā)現(xiàn),SCID小鼠和普通小鼠感染相同數(shù)量的肺炎支原體,普通小鼠肺部炎癥明顯加重,而SCID小鼠由于免疫T或B細(xì)胞,其肺部炎癥較輕,淋巴細(xì)胞在肺炎支原體肺炎肺部癥狀中起重要作用[12-15]。肺炎支原體肺炎的細(xì)胞免疫調(diào)節(jié)使Th1表達(dá)上調(diào),造成了呼吸系統(tǒng)的免疫損傷[16-18]。根據(jù)細(xì)胞因子分為Th1和Th2兩大功能細(xì)胞亞群,Th1細(xì)胞分泌IFN-γ、IL-2、TNF-β、IL-12細(xì)胞因子,主要參與細(xì)胞免疫反應(yīng),在機(jī)體清除病原微生物的過(guò)程中起重要作用。Th2細(xì)胞主要分泌IL-1β、IL-4、IL-5、IL-10、IL-13等細(xì)胞因子,主要參與體液免疫調(diào)節(jié)。人體健康情況下,Th1/Th2處于平衡狀態(tài)。若Th1/Th2失衡,可以使免疫功能發(fā)生紊亂,在其他誘因的協(xié)同下可致免疫性疾病[19]。
肺炎支原體肺炎機(jī)體Th1/Th2值下降,Th2細(xì)胞占優(yōu)勢(shì),機(jī)體存在免疫失調(diào)[20]。本研究通過(guò)觀察肺炎支原體肺炎小鼠BALF不同時(shí)間細(xì)胞因子的表達(dá),結(jié)果顯示,治療第1天,石仙桃多糖組肺炎支原體肺炎小鼠BALF中IL-1β、IFN-γ水平明顯下調(diào),治療第3天,石仙桃多糖組肺炎支原體肺炎小鼠BALF中IL-1β、IL-12、IFN-γ水平明顯下調(diào)。IL-12在Th1型細(xì)胞因子中較為重要,它能調(diào)節(jié)Th1/Th2平衡,IL-12表達(dá)下調(diào)時(shí),Th1反應(yīng)低下,而Th2反應(yīng)增強(qiáng)[13];同時(shí)IL-12對(duì)Th2型細(xì)胞因子的產(chǎn)生具有抑制作用,可抑制Th2型應(yīng)答反應(yīng),減輕氣道炎性反應(yīng)。呼吸系統(tǒng)的免疫損傷迅速減輕。
綜上所述,石仙桃多糖干預(yù)肺炎支原體模型小鼠能迅速調(diào)節(jié)肺炎支原體肺炎小鼠體內(nèi)的免疫功能,小鼠BALF中IL-1β、IFN-γ、IL-12、TNF-α等細(xì)胞因子明顯下調(diào),輔助性Th1細(xì)胞因子明顯降低,小鼠肺部炎癥明顯減少,其作用機(jī)制可能與調(diào)節(jié)肺炎支原體模型小鼠體內(nèi)Th1/Th2細(xì)胞有關(guān)。本研究結(jié)果為石仙桃多糖研發(fā)成為抗支原體藥物提供理論依據(jù)。
[參考文獻(xiàn)]
[1] 易綺斐,邢福武,陳紅鋒,等.我國(guó)石仙桃屬植物的分布和開發(fā)利用[J].華南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2004,25(3):94-97.
[2] 楊?;ǎ毯?,管永光,等.石仙桃多糖的提取工藝及純化研究[J].食品科學(xué),2009,30(2):130-133.
[3] Kim MH,Kang SY,Lee,WI,et al. Comparison of two enzyme immunoassays for detcting mycoplasma pneumonia [J]. Lab Med,2012,43(4):74-77.
[4] Cimolai N,Taylor GP,Mah D,et al. Definition and application of a histopathological scoring scheme for an animal model of acute Mycoplasma pneumoniae pulmonary infection[J]. Microbiol Immunol,1992,36(5):465-478.
[5] 翁水旺.石仙桃的研究進(jìn)展[J].中國(guó)現(xiàn)代中藥,2012,6(8):35-36.
[6] 劉建新,謝水祥,連其深.石仙桃的鎮(zhèn)定、催眠和抗驚厥作用[J].中國(guó)醫(yī)學(xué)理論與實(shí)踐,2012(7):926-927.
[7] 畢志明,王崢濤,徐珞珊,等.云南石仙桃化學(xué)成分的研究[J].中國(guó)中藥雜志,2014,29(1):47-49.
[8] 鞠海,張建民,魏鋒,等.天然多糖的分離、純化和結(jié)構(gòu)鑒定[J].國(guó)外醫(yī)藥:植物藥分冊(cè),2015,15(3):107-113.
[9] 牛波,池躍朋,帥金鳳,等.兒童難治性肺炎支原體肺炎免疫機(jī)制探討[J].中國(guó)醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2016,29(6):107-110.
[10] 賀金娥,高萃,曲暉,等.支原體肺炎患兒血清白介素6、腫瘤壞死因子-α、C-反應(yīng)蛋白水平及臨床意義[J].中國(guó)醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2015,12(27):106-108.
[11] 石孝孝,楊曉榮,汪莉莉,等.支氣管哮喘合并肺炎支原體感染患兒外周血CD25、IFN-γ、IL-5表達(dá)水平及相關(guān)性[J].中國(guó)醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2016,29(6):109-112.
[12] Cartner SC,Lindsey JR,Gibbs-Erwin J,et al. Roles of innate and adaptive immunity in respiratory mycoplasmosis [J]. Infect Immun,2015,66(8):3485-3491.
[13] Aurora AB,Baluk P,Zhang D,et al. Immune complex dep?鄄endent remodeling of the airway vasculature in response to achronic bacterial infection [J]. J Immunol,2015,175(10):6319-6326.
[14] Jones HP,Tabor L,Sun X,et al. Depletion of CD8+ T cells exacerbates CD4+ Th cell-associated inflammatory lesions during murine mycoplasma respiratory disease [J]. Imm?鄄unol,2012,168(7):3493-3501.
[15] Yang J,Hooper WC,Phillips DJ,et al. Regulation of proin?鄄flammatory cytokines in human lung epithelial cells infec?鄄ted with Mycoplasmap neumoniae [J]. Infect Immun,2012, 70(7):3649.
[16] Trinchieri G. Biological properties and therapeutic applica?鄄tions of interleukin-12 [J]. Eur Cytokine Netw,2015,8(3):305-307.
[17] Al-Daghri NM,Alokail MS,Draz HM,et al. Th1/Th2 cyt?鄄okine pattern in Arab children with severe asthma [J]. Int J Clin Exp Med,2014,7(8):2286-2291.
[18] Gut W,Pancer K,Abramczuk E,et al. RSV respiratory inf?鄄ection in children under 5 y.o. -- dynamics of the imm?鄄une response Th1/Th2 and IgE [J]. Przegl Epidemiol,2013, 67(1):17-22.
[19] Herring AC,Hernández Y,Huffnagle GB,et al. Role and development of TH1/TH2 immune responses in the lungs [J]. Semin Respir Crit Care Med,2014,25(1):3-10.
[20] Rogala B,Bozek A,Gluck J,et al. Prevalence of IgE-med?鄄iated allergy and evaluation of Th1/Th2 cytokine profiles in patients with severe bronchial asthma [J]. Postepy Derm?鄄atol Alergol,2015,32(4):274-280.
(收稿日期:2017-11-25 本文編輯:張瑜杰)