魏好程,邵 杰,何傳波,李 漫,熊何健*
自由基是人體生命活動(dòng)中各種生化反應(yīng)的中間代謝產(chǎn)物,因其單電子的結(jié)構(gòu)而表現(xiàn)出極其活潑的不穩(wěn)定性[1],人體內(nèi)自由基的過量積累會(huì)造成機(jī)體在分子水平、細(xì)胞水平及組織器官水平的各種不可逆的氧化損傷[2],引起機(jī)體免疫功能下降,導(dǎo)致機(jī)體衰老。食品中含有多種抗氧化物質(zhì),生命組織中也存在多種內(nèi)源性抗氧化物質(zhì)協(xié)同維持機(jī)體內(nèi)生命過程中自由基的平衡。
近年來,科學(xué)家不斷地從海洋生物中發(fā)現(xiàn)一些具有抗氧化活性和增強(qiáng)機(jī)體免疫力的化合物,其中多糖類物質(zhì)因易被生物體吸收,通過清除體內(nèi)自由基,表現(xiàn)出較強(qiáng)的抗氧化作用和其他生物活性而受到人們的關(guān)注。鮑是我國極具經(jīng)濟(jì)價(jià)值的水產(chǎn)品之一,近年來因人工養(yǎng)殖技術(shù)鮑產(chǎn)量得以大幅提升,2015年我國鮑養(yǎng)殖量12.8萬 t,其中福建省鮑產(chǎn)量10.0萬 t,經(jīng)濟(jì)產(chǎn)值已經(jīng)超過100億 元,鮑產(chǎn)業(yè)已成為福建省海洋漁業(yè)的重要支柱產(chǎn)業(yè)之一[3]。鮑在加工過程中會(huì)產(chǎn)生約自身體質(zhì)量35%的內(nèi)臟下腳料,常被直接丟棄,不僅污染環(huán)境,而且造成資源浪費(fèi)[4]。鮑內(nèi)臟包含肝胰腺、腎臟、性腺等內(nèi)臟組織,還含有鮑消化后的產(chǎn)物。酶解后的鮑內(nèi)臟含有豐富的消化酶、蛋白肽、多糖和脂肪酸等生理活性物質(zhì),是海洋活性功能物質(zhì)的良好來源[5-6],鮑內(nèi)臟的精深加工已成為產(chǎn)業(yè)發(fā)展的迫切需求。
已有研究表明,鮑臟器中存在多種清除自由基、促進(jìn)淋巴細(xì)胞增殖、抑制腫瘤細(xì)胞生長的活性成分,表現(xiàn)出抗氧化、增強(qiáng)機(jī)體免疫和抗癌等功能活性。王姣等[7]研究表明鮑內(nèi)臟多糖(abalone visceral polysaccharides,AVP)對(duì)1,1-二苯基-2-三硝基苯肼自由基和羥自由基具有良好的清除作用。陳秀琴[8]運(yùn)用酶解法發(fā)現(xiàn)鮑內(nèi)臟蛋白肽也能很好地體外清除自由基活性,表現(xiàn)出良好抗氧化功效。蘇永昌等[9]采用不同種類蛋白酶酶解提取鮑內(nèi)臟多糖后發(fā)現(xiàn),胃蛋白酶對(duì)鮑內(nèi)臟多糖提取效果最好,得到的各組多糖均表現(xiàn)出良好的抗氧化作用,而何傳波等[10]利用堿性蛋白酶制備的鮑內(nèi)臟蛋白肽,表現(xiàn)出較好的體內(nèi)抗氧化活性。程婷婷等[11]從鮑臟器中分離純化出一種多糖,表現(xiàn)出一定的體外抗腫瘤活性。朱莉莉[12]、王蒞莎[13]等分別從鮑內(nèi)臟中分離提取的鮑內(nèi)臟多糖,能顯著抑制H22肝癌細(xì)胞生長,以及對(duì)HeLa和K562細(xì)胞具有一定程度的抑制作用,表現(xiàn)出抗腫瘤活性和增強(qiáng)免疫活性。相關(guān)研究報(bào)道多聚焦于鮑內(nèi)臟多糖和多肽的功能活性研究,但功能活性實(shí)驗(yàn)多停留在體外實(shí)驗(yàn)和細(xì)胞實(shí)驗(yàn)階段,關(guān)于鮑內(nèi)臟多糖對(duì)動(dòng)物體內(nèi)實(shí)驗(yàn)的相關(guān)報(bào)道還很有限。
本研究在課題組已有的二次酶解技術(shù)工藝制備鮑內(nèi)臟多糖的基礎(chǔ)上,結(jié)合前期已取得的體外抗氧化研究結(jié)果[7,14],開展鮑內(nèi)臟多糖體內(nèi)抗氧化及增強(qiáng)小鼠免疫活性的研究,以期為鮑的綜合利用及產(chǎn)業(yè)發(fā)展提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
SPF級(jí)雄性KM小鼠、SPF級(jí)雄性BALB/C小鼠,體質(zhì)量(18±2)g,均購于上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司,許可證號(hào)SCXK(滬)2012-0002。分籠飼養(yǎng),每天光照12 h,動(dòng)物房環(huán)境溫度20~25 ℃,相對(duì)濕度50%~60%,自由進(jìn)食進(jìn)水,每天更換飼料、飲水和墊料,進(jìn)行7 d適應(yīng)性喂養(yǎng)。
鮑內(nèi)臟多糖由集美大學(xué)食品與生物工程學(xué)院功能性食品研究實(shí)驗(yàn)室自制。經(jīng)高效液相色譜檢測(cè),實(shí)驗(yàn)用鮑內(nèi)臟多糖樣品含有甘露糖、葡萄糖胺、半乳糖胺、葡萄糖、半乳糖、木糖、巖藻糖7 種單糖,總糖含量49.6%。
總超氧化物歧化酶(total superoxide dismutase,T-SOD)測(cè)試盒、丙二醛(malondialdehyde,MDA)測(cè)試盒、還原型谷胱甘肽(glutathione,GSH)測(cè)試盒、蛋白質(zhì)羰基測(cè)試盒、考馬斯亮藍(lán)測(cè)試盒 南京建成試劑有限公司。
JDC-0.2真空冷凍干燥機(jī) 廈門柏嘉生物科技有限公司;RNF0460-011多功能卷式膜小試設(shè)備 廈門福美科技有限公司;UV-8000A紫外-可見分光光度計(jì) 上海尤尼柯儀器有限公司;Ultimate 3000高效液相色譜儀美國DIONEX公司。
1.3.1 體內(nèi)抗氧化活性動(dòng)物實(shí)驗(yàn)分組及給藥實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
實(shí)驗(yàn)參照[2012]107號(hào)《關(guān)于印發(fā)抗氧化功能評(píng)價(jià)方法等9 個(gè)保健功能評(píng)價(jià)方法的通知》中抗氧化功能評(píng)價(jià)方法[15],將70 只KM小鼠適應(yīng)環(huán)境后,隨機(jī)分為7 組,每組10 只,設(shè)定為空白對(duì)照組、模型對(duì)照組、陽性對(duì)照組、鮑內(nèi)臟多糖低劑量組、中劑量組和高劑量組。各劑量組給藥劑量參照《抗氧化功能評(píng)價(jià)方法》[15]、Finkel[16]和羅曉航[17]等動(dòng)物實(shí)驗(yàn)劑量設(shè)定方法,略作調(diào)整。中劑量組給藥劑量設(shè)定為人體臨床用量的10 倍(小鼠),高劑量組給藥劑量設(shè)定為人體臨床用量20 倍,低劑量組給藥劑量設(shè)定為人體臨床用量的5 倍。其中,陽性對(duì)照組抗壞血酸為人體攝入量的5 倍,即10 mg/kg劑量VC溶液每天灌胃0.5 mL,鮑內(nèi)臟多糖低、中、高劑量組分別以200、400、800 mg/kg劑量每天灌胃0.5 mL,空白對(duì)照組和模型對(duì)照組每天灌胃等體積的0.5 mL生理鹽水。
1.3.2 乙醇氧化損傷模型動(dòng)物實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
參照《抗氧化功能評(píng)價(jià)方法》中乙醇氧化損傷模型造模方法[15],實(shí)驗(yàn)期間小鼠自由攝食和飲水,每天上午8:00進(jìn)行灌胃。小鼠連續(xù)灌胃30 d后,除空白組外,其他各組小鼠禁食16 h后一次性給予體積分?jǐn)?shù)50%乙醇溶液12 mL/kg劑量灌胃處理,6 h后將小鼠處死解剖,取出肝臟,在冰冷的生理鹽水中漂洗,除去血液,濾紙吸干表面水分后用生理鹽水低溫勻漿,制備勻漿液,2 000 r/min離心10 min,留上清液,待測(cè)。
1.3.3 體內(nèi)抗氧化活性指標(biāo)測(cè)定
SOD活力采用黃嘌呤氧化酶法測(cè)定。MDA含量測(cè)定采用硫代巴比妥酸法測(cè)定。GSH含量采用硫代二硝基苯甲酸顯色分光光度法測(cè)定。其中樣本蛋白質(zhì)量濃度采用考馬斯亮藍(lán)顯色分光光度法測(cè)定,根據(jù)式(1)計(jì)算;蛋白質(zhì)羰基含量采用分光光度法測(cè)定,根據(jù)式(2)計(jì)算。以上4 項(xiàng)指標(biāo)檢測(cè)操作均嚴(yán)格按照試劑盒說明書進(jìn)行。
1.3.4 增強(qiáng)免疫力動(dòng)物實(shí)驗(yàn)分組及給藥實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
實(shí)驗(yàn)選擇正常動(dòng)物模型,將60 只BALB/C小鼠適應(yīng)環(huán)境后,隨機(jī)分為6 組,每組10 只,設(shè)定為空白對(duì)照組、陽性對(duì)照組、鮑內(nèi)臟多糖低劑量組、中劑量組和高劑量組。其中空白對(duì)照組每天灌胃0.5 mL生理鹽水,陽性對(duì)照組以25 mg/kg劑量鹽酸左旋咪唑每天灌胃0.5 mL,鮑內(nèi)臟多糖低、中、高劑量組分別每天以200、400、800 mg/kg劑量灌胃0.5 mL。實(shí)驗(yàn)期間小鼠自由攝食和飲水,每天上午8:00進(jìn)行灌胃,連續(xù)灌胃30 d后稱質(zhì)量,各組小鼠根據(jù)檢測(cè)指標(biāo)方法進(jìn)行相應(yīng)處理取樣,各動(dòng)物模型實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)參照1.3.1節(jié)所述。
1.3.5 增強(qiáng)免疫力功能指標(biāo)測(cè)定
免疫力活性功能評(píng)價(jià)采用免疫器官指數(shù)、細(xì)胞免疫、體液免疫和非特異性免疫中單核-巨噬細(xì)胞功能進(jìn)行綜合評(píng)價(jià)。其中體質(zhì)量和免疫器官指數(shù)采用稱質(zhì)量法測(cè)定;遲發(fā)型變態(tài)反應(yīng)(delayed type hypersensitivity,DTH)測(cè)定采用足跖增厚法;血清溶血素抗體水平測(cè)定采用血凝法;小鼠碳廓清實(shí)驗(yàn)采用校正吞噬指數(shù)法,各項(xiàng)檢測(cè)方法參照《增強(qiáng)免疫力功能評(píng)價(jià)方法》[18]要求進(jìn)行。
實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均以 ±s表示,使用SPSS 17.0軟件的單因素方差分析(One-way ANOVA)中的鄧肯氏多重比較分析差異顯著性。
按照1.3.1節(jié)方法,灌胃30 d前后,分別對(duì)各實(shí)驗(yàn)組小鼠進(jìn)行體質(zhì)量測(cè)量,實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)如表1所示。
表1 鮑內(nèi)臟多糖對(duì)小鼠體質(zhì)量的影響(n=10)Table 1 Effect of AVP on body weight of mice (n= 10)
由表1可知,各實(shí)驗(yàn)組小鼠灌胃前體質(zhì)量無顯著差異(P>0.05),表明實(shí)驗(yàn)用小鼠體質(zhì)量個(gè)體差異不顯著,實(shí)驗(yàn)具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。連續(xù)灌胃30 d后,各組小鼠之間的體質(zhì)量均無顯著差異(P>0.05),各組小鼠灌胃前后體質(zhì)量的增加量也無顯著差異(P>0.05)。表明鮑內(nèi)臟多糖對(duì)小鼠體質(zhì)量無顯著影響,對(duì)小鼠毒副作用較小。
基于不同原理的各種抗氧化活性檢測(cè)和評(píng)價(jià)方法,能從不同機(jī)理反映抗氧化活性物質(zhì)的多種功能特性[19]。但由于抗氧化反應(yīng)的多樣性和復(fù)雜性,加之各種方法自身局限性,尚未形成一種標(biāo)準(zhǔn)方法[20]。本實(shí)驗(yàn)在課題組已有的鮑內(nèi)臟多糖體外抗氧化實(shí)驗(yàn)的基礎(chǔ)上[7],選擇SOD活力和GSH、MDA、蛋白質(zhì)羰基含量作為體內(nèi)抗氧化活性綜合評(píng)價(jià)指標(biāo)。乙醇氧化損傷模型動(dòng)物實(shí)驗(yàn)各組小鼠肝臟中SOD活力和GSH、MDA、蛋白質(zhì)羰基含量變化如表2所示。
表2 鮑內(nèi)臟多糖對(duì)小鼠肝臟中SOD活力和GSH、MDA、蛋白質(zhì)羰基含量的影響(n= 10)Table 2 Effect of AVP on SOD activity, GSH, MDA and protein carbonyl content in liver of mice (n= 10)
SOD是一種源于生命體的活性物質(zhì),是生物體內(nèi)重要的抗氧化酶,可以保護(hù)細(xì)胞免受自由基攻擊[21-22]。而GSH在生物體內(nèi)作為一種還原劑能消除機(jī)體內(nèi)的過氧化氫及脂質(zhì)過氧化物,可以防止細(xì)胞膜與其他生物組織免受過氧化損傷[23-24]。MDA是脂質(zhì)過氧化的主要產(chǎn)物,能引起蛋白質(zhì)、核酸等生命大分子的交聯(lián)聚合,具有細(xì)胞毒性,其含量與細(xì)胞氧化損傷的程度呈正相關(guān)[25]。機(jī)體內(nèi)蛋白質(zhì)羰基作為蛋白質(zhì)氧化的產(chǎn)物,是體內(nèi)蛋白質(zhì)遭到自由基攻擊的重要標(biāo)志,其含量間接反映了機(jī)體內(nèi)蛋白質(zhì)抵抗自由基攻擊的能力[26-27]。
由表2可知,模型對(duì)照組小鼠肝臟內(nèi)SOD活力、GSH含量極顯著低于空白對(duì)照組(P<0.01),而MDA和蛋白質(zhì)羰基含量極顯著均高于空白對(duì)照組(P<0.01),表明乙醇氧化損傷動(dòng)物造模實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)成功。
乙醇氧化損傷模型小鼠經(jīng)鮑內(nèi)臟多糖中、高劑量灌胃處理后,小鼠肝臟中SOD活力均極顯著高于模型對(duì)照組(P<0.01)、GSH含量均顯著高于模型對(duì)照組(P<0.05)。同時(shí),數(shù)據(jù)表明鮑內(nèi)臟多糖各處理組中小鼠肝臟SOD活力、GSH含量與灌胃劑量呈現(xiàn)正相關(guān)性。鮑內(nèi)臟多糖中劑量組小鼠肝臟SOD活力比乙醇氧化損傷模型對(duì)照組小鼠肝臟中SOD活力提高了20.6%,而GSH含量提高了1.02 倍。表明鮑內(nèi)臟多糖能增強(qiáng)小鼠體內(nèi)SOD活力和提高GSH含量,減輕超氧陰離子自由基損傷,幫助氧化損傷機(jī)體GSH含量恢復(fù)正常水平,提高機(jī)體的抗氧化能力。
經(jīng)鮑內(nèi)臟多糖、中、高劑量灌胃處理后,小鼠肝臟中MDA含量均極顯著低于模型對(duì)照組(P<0.01),蛋白質(zhì)羰基含量均顯著低于模型對(duì)照組(P<0.05)。同時(shí),數(shù)據(jù)表明鮑內(nèi)臟多糖處理組小鼠肝臟中MDA含量、蛋白質(zhì)羰基含量與灌胃劑量呈現(xiàn)負(fù)相關(guān)性。鮑內(nèi)臟多糖中劑量組小鼠肝臟中MDA含量比乙醇氧化損傷模型對(duì)照組小鼠肝臟中MDA含量降低了56.2%,而蛋白質(zhì)羰基含量降低45.4%。表明鮑內(nèi)臟多糖都具有清除體內(nèi)氧自由基、拮抗氧自由基對(duì)蛋白質(zhì)的攻擊、降低體內(nèi)脂質(zhì)過氧化程度和蛋白質(zhì)的氧化損傷程度的作用。
另外,鮑內(nèi)臟多糖中劑量組小鼠肝臟中GSH含量、MDA含量和蛋白質(zhì)羰基含量3 項(xiàng)檢測(cè)指標(biāo)與相對(duì)應(yīng)的陽性對(duì)照組無顯著差異(P>0.05),鮑內(nèi)臟多糖高劑量組中SOD活力與相對(duì)應(yīng)的陽性對(duì)照組無顯著差異(P>0.05),這表明鮑內(nèi)臟多糖具有良好的體內(nèi)抗氧化活性。
免疫功能與健康密切相關(guān),增強(qiáng)機(jī)體的免疫功能是疾病治療和機(jī)體康復(fù)的重要途徑。在增強(qiáng)免疫力功能評(píng)價(jià)中有多種指標(biāo)和方法從不同角度反映供試樣品體內(nèi)增強(qiáng)小鼠免疫力的能力。本實(shí)驗(yàn)中鮑內(nèi)臟多糖對(duì)增強(qiáng)小鼠免疫力的影響如表3所示。
免疫器官指數(shù)包括胸腺或脾臟的相對(duì)質(zhì)量,可反映機(jī)體免疫細(xì)胞的生長發(fā)育、增殖及功能狀態(tài)。DTH是由致敏性T細(xì)胞介導(dǎo)的一種細(xì)胞免疫反應(yīng),是細(xì)胞免疫的體內(nèi)檢測(cè)法,其通過測(cè)定小鼠的局部腫脹程度(足跖增厚)可以反映DTH的反應(yīng)強(qiáng)度。血清溶血素水平反映機(jī)體形成抗體的能力,揭示小鼠體內(nèi)B細(xì)胞增殖分化產(chǎn)生抗綿羊紅細(xì)胞(sheep red blood cell,SRBC)抗體(溶血素)的水平,以此來評(píng)價(jià)機(jī)體的體液免疫功能[28]。碳廓清法常被用來檢測(cè)機(jī)體的非特異性免疫功能,反映機(jī)體單核-巨噬細(xì)胞的吞噬能力。增強(qiáng)機(jī)體免疫力功能評(píng)價(jià)中常采用免疫器官指數(shù)、細(xì)胞免疫、體液免疫和非特異性免疫作為功能活性物質(zhì)增強(qiáng)免疫力的一項(xiàng)綜合指標(biāo)[29]。
表3 鮑內(nèi)臟多糖對(duì)小鼠免疫器官指數(shù)、DTH、血清溶血素抗體水平和碳廓清能力的影響(n=10)Table 3 Effect of AVP on immune organ indices, DTH, serum hemolysin and carbon clearance in mice (n= 10)
由表3可知,鮑內(nèi)臟多糖低、中、高各劑量組與空白對(duì)照組相比均能夠顯著提高小鼠脾臟指數(shù)和小鼠胸腺指數(shù)(P<0.05)。鮑內(nèi)臟多糖各劑量組小鼠的足跖腫脹程度、溶血素抗體水平均極顯著地高于空白對(duì)照組(P<0.01),吞噬指數(shù)顯著高于空白對(duì)照組(P<0.05)。其中,鮑內(nèi)臟多糖中劑量組小鼠脾臟指數(shù)和胸腺指數(shù)比空白對(duì)照組分別提高21.9%和152%;小鼠足跖增厚度比空白對(duì)照組提高了40.3%;小鼠血清溶血素抗體水平比空白對(duì)照組提高了49.3%;小鼠單核-巨噬細(xì)胞碳廓清吞噬指數(shù)提高了10%。比較鮑內(nèi)臟多糖不同劑量組的各項(xiàng)指標(biāo)發(fā)現(xiàn),除了免疫器官指數(shù)和吞噬指數(shù)外,其余指標(biāo)均呈現(xiàn)量效關(guān)系,且效果優(yōu)于陽性對(duì)照。研究表明鮑內(nèi)臟多糖能夠提高小鼠免疫器官指數(shù)、提高小鼠足跖腫脹程度、提高小鼠血清的抗體水平和提高小鼠的吞噬指數(shù),從免疫器官指數(shù)、細(xì)胞免疫、體液免疫以及非特異性免疫方面均表現(xiàn)出有良好的增強(qiáng)免疫力活性功能。
通過乙醇氧化損傷模型實(shí)驗(yàn),鮑內(nèi)臟多糖可顯著提高模型小鼠肝臟SOD活性、顯著提高小鼠體內(nèi)GSH含量、顯著降低小鼠體內(nèi)MDA和蛋白質(zhì)羰基含量。對(duì)輔助清除氧化模型小鼠體內(nèi)超氧陰離子、保護(hù)細(xì)胞膜結(jié)構(gòu)和功能完整性、減少細(xì)胞損傷和降低體內(nèi)脂質(zhì)過氧化和蛋白質(zhì)氧化損傷方面均有良好作用。
鮑內(nèi)臟多糖低、中、高劑量組與提高乙醇氧化損傷模型小鼠SOD活性和提高GSH含量呈顯著正相關(guān)性;與降低小鼠體內(nèi)MDA和蛋白質(zhì)羰基含量呈顯著負(fù)相關(guān)性。中劑量鮑內(nèi)臟多糖處理組小鼠體內(nèi)抗氧化指標(biāo)除SOD活力外其他與陽性對(duì)照組無顯著差異,高劑量組小鼠SOD活力與陽性對(duì)照組無顯著差異,這與課題組先前開展的鮑內(nèi)臟多糖體外抗氧化活性研究中鮑內(nèi)臟多糖對(duì)H2O2損傷的LO2細(xì)胞中GSH-Px、SOD活力和MDA含量的影響與多糖劑量呈顯著正相關(guān)性和高劑量處理組兩項(xiàng)指標(biāo)均優(yōu)于陽性對(duì)照組的結(jié)果基本一致[7],表明鮑內(nèi)臟多糖通過促進(jìn)機(jī)體和細(xì)胞內(nèi)抗氧化酶活性,減少有毒過氧化產(chǎn)物實(shí)現(xiàn)抗氧化作用,與Zhai Li等[30]在川芎嗪衍生物的作用機(jī)理是一致的。根據(jù)《抗氧化功能評(píng)價(jià)方法》中結(jié)果判定依據(jù),動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中脂質(zhì)氧化產(chǎn)物、蛋白質(zhì)氧化產(chǎn)物、抗氧化酶、抗氧化物質(zhì)4 項(xiàng)指標(biāo)中3 項(xiàng)陽性,可判定該受試樣品抗氧化功能動(dòng)物實(shí)驗(yàn)結(jié)果陽性,表明鮑內(nèi)臟多糖具有一定的抗氧化活性。
在增強(qiáng)小鼠免疫力功能評(píng)價(jià)中,鮑內(nèi)臟多糖能夠極顯著提高小鼠脾臟指數(shù)和小鼠胸腺指數(shù)、足跖增厚,極顯著提高小鼠溶血素抗體水平,顯著提高小鼠吞噬指數(shù);在免疫器官指數(shù)、細(xì)胞免疫、體液免疫以及非特異性免疫方面均表現(xiàn)出有良好的增強(qiáng)免疫力活性功能,并且與多糖灌胃劑量呈現(xiàn)一定的量效關(guān)系;參照《增強(qiáng)免疫力功能評(píng)價(jià)方法(征求意見稿)》中結(jié)果判定方法,正常小鼠動(dòng)物模型中4 項(xiàng)指標(biāo)為陽性,可判定該受試樣品增強(qiáng)小鼠免疫力結(jié)果陽性,表明鮑內(nèi)臟多糖具有增強(qiáng)小鼠免疫力功能。
食品加工技術(shù)對(duì)生物活性多糖結(jié)構(gòu)和功能特性的影響是十分顯著的[31],目前多采用較為溫和的生物酶解技術(shù)進(jìn)行活性物質(zhì)提取。本研究利用酶解技術(shù)提取的鮑內(nèi)臟多糖和劉娜等[5]利用酶解技術(shù)提取的鮑性腺多糖分別在乙醇氧化損傷模型小鼠和高脂血癥大鼠中表現(xiàn)出良好的體內(nèi)抗氧化能力結(jié)果一致。另外,本研究所用的鮑內(nèi)臟多糖采用工業(yè)化生產(chǎn)工藝流程制備,鮑內(nèi)臟多糖的成分還相對(duì)復(fù)雜,與先前分離純化的單一活性多糖在體外抗氧化活性功能上還具有差異性[7],保健功能因子的分離、純化及各組分活性驗(yàn)證還需大量數(shù)據(jù)支持。實(shí)驗(yàn)結(jié)果為鮑內(nèi)臟的有效利用提供了理論依據(jù),可以極大地減少優(yōu)質(zhì)海洋生物資源的浪費(fèi)和環(huán)境污染,對(duì)提高鮑產(chǎn)品提升經(jīng)濟(jì)價(jià)值、完善產(chǎn)業(yè)鏈起到積極的推動(dòng)作用。
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