何洪炳,蔡明成,梁小虎,賴松家(四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院遺傳所,四川 成都 611130)
【研究意義】兔流行性腸炎病(Epizootic rabbit Enteropathy,ERE)[1-2]的病因復(fù)雜,根據(jù)病原體的類型腸道疾病被分為特異性腸炎(Specific Enteropathies)和非特異性消化道紊亂(Non-Specific Digestive Disorders,NSDD)。特異性腸炎主要來源一些特定病原微生物,如細菌、病毒和毒素、寄生蟲等。非特異性消化道紊亂無特定致病病原微生物,病因十分復(fù)雜,飼養(yǎng)管理不當(dāng)、日糧纖維不當(dāng)、環(huán)境溫濕度的變化引起的應(yīng)激等均可誘發(fā)腸炎。已有研究表明,在飼養(yǎng)環(huán)境和管理良好的條件下,日糧中粗纖維含量和種類是誘發(fā)家兔非特異性消化道紊亂疾病的重要因素[3]?!厩叭搜芯窟M展】圓小囊是家兔特有的免疫淋巴器官,位于家兔回腸末端,屬于腸道的組成部分,呈膨大結(jié)構(gòu),具有消化、免疫和神經(jīng)內(nèi)分泌等功能。已有的研究表明,家兔圓小囊能特異性攝取腸腔內(nèi)的生物大分子和微生物到淋巴細胞中[4],參與整個腸道免疫調(diào)控。圓頂上皮(dome epithelium)是一個傳遞抗原的通道,作為圓小囊重要的免疫組成部分,在傳遞抗原的同時也可以抵抗和防止抗原侵入組織深部淋巴組織,在腸道免疫防御中發(fā)揮重要的作用[5-8]。MicroRNAs是一種長度約為23 bp的單鏈非編碼RNA[9],可靶向mRNA的3’端非翻譯區(qū)(UTR)發(fā)揮調(diào)控作用,不完全靶向抑制轉(zhuǎn)錄后翻譯,完全靶向則引發(fā)降解。MicroRNAs可以參與調(diào)節(jié)哺乳動物的生長發(fā)育、細胞分化、細胞增殖、細胞凋亡等生命活動[10-13]。人類基因組中預(yù)測并鑒定了超過1000 miRNAs,調(diào)節(jié)成千上萬的人類蛋白編碼基因[14-15]。近年來,miRNAs被認為是調(diào)節(jié)體內(nèi)免疫反應(yīng)的關(guān)鍵因子,miRNAs在系統(tǒng)性紅斑狼瘡[16]、類風(fēng)濕性關(guān)節(jié)炎[17]、銀屑病[18]和炎癥性腸炎病(Inflammatory bowel disease,IBD)[19]存在表達差異且與自身免疫病顯著相關(guān)。通過對人IBD外周血和各個組織的miRNAs測序表明miRNAs參與IBD的調(diào)節(jié)[20]。在體外細胞和誘導(dǎo)腸炎的模式動物中,也驗證了一些關(guān)鍵的miRNAs可調(diào)控信號通路參與IBD發(fā)病過程。綜上表明,miRNAs在人IBD中存在差異表達,暗示其在腸炎中起重要的調(diào)節(jié)作用,同時也可以作為分子標記預(yù)防和治療腸炎?!颈狙芯壳腥朦c】本研究通過構(gòu)建家兔非特異性消化道紊亂型腸炎模型,鑒定不同腸炎程度家兔中圓小囊miR-130b的表達趨勢,同時利用生物信息學(xué)軟件分析其靶基因,研究miRNA-130b與靶基因之間的聯(lián)系,探討miR-130b在家兔腸炎中的調(diào)控模式。【擬解決的關(guān)鍵問題】為家兔腸炎的預(yù)防與治療提供分子基礎(chǔ)。
本實驗選用60只49日齡的健康新西蘭兔作為試驗兔,10只飼喂正常飼料,50只飼喂低纖維飼料(纖維素CF 9 %、木質(zhì)素ADF 13 %)誘導(dǎo)非特異性消化道紊亂型腸炎。試驗前預(yù)飼喂7 d適應(yīng)環(huán)境,正式試驗14 d,日糧飼喂量為自由采食的85 %,正式試驗期每天觀察試驗兔臨床表現(xiàn)1次,并記錄試驗兔的臨床癥狀。70日齡時,通過耳緣靜脈注射戊巴比妥鈉致死(符合動物福利保護法),進行病理學(xué)檢查記錄和樣品的采集。
采集圓小囊組織樣本1 g并用錫箔紙包裹置于-80 ℃液氮中用于RNA的抽提。組織切片樣本的采集,取試驗兔的空腸、結(jié)腸(取腸段相同的部位),用4 %多聚甲醛浸泡固定,在四川農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院制作切片。
觀察試驗兔的飲食、飲水、腹脹情況及排泄物狀態(tài)等,臨床患病指標的判定和記錄參照Bennegadi的方法[21]。解剖死亡兔,觀察并記錄其消化道臨床癥狀。主要觀察各腸段、腸系膜出血情況、腸系膜淋巴結(jié)、圓小囊等免疫器官的變化。切片用HE染色后在高倍視野中(200×)觀察每張切片,對隱窩、粘膜固有層、上皮細胞、凋亡細胞及杯狀細胞等的變化。
采用Trizol法提取圓小囊的總RNA。參照反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Takara,Mir-XTMmiRNA First-Strand Synthesis Kit 貨號:1604342A和Takara, PrimeScriptTMRT reagent Kit with gDNA Eraer 貨號AK4002)進行miRNA和mRNA的反轉(zhuǎn)錄,得到各自的cDNA。利用miRBase和NCBI等在線工具,得到該miRNA的成熟序列,采用加尾法設(shè)計miRNA的引物,由成都擎科生物科技有限公司合成。下游引物是試劑盒自帶,內(nèi)參用試劑盒自帶U6作為引物。采用SYBR?Green I進行熒光定量,參照試劑盒說明書進行(Takara 貨號:AK9801),10 μl體系:5 μl SYBR?Green I,0.4 μl Forward、Reverse引物,3.2 μl ddH2O,1μl cDNA。
利用Targetscan、miRBase和miRWalk等生物信息學(xué)在線工具預(yù)測和用DAVID信號通路富集篩選出miR-130b的靶基因。
實驗熒光定量結(jié)果用Excel初步統(tǒng)計并采用2-△△ct進行分析,運用SAS8分析軟件進行顯著性分析,結(jié)果采用“平均值±標準差”表示。用SigmaPlot軟件計算STAT3和miR-130b表達量的皮爾遜相關(guān)性。
表1 臨床評分(CSS)Table 1 Clinical score (CSS)
每天對試驗兔采食情況、排泄物、腹脹情況進行觀察記錄(表1);臨床癥狀的評分標準為(clinical symptom score, CSS):0分,無癥狀;1分,采食量變少,糞便呈串連狀;2分,腹部臌脹、腹瀉嚴重、盲腸有結(jié)塊等有明顯的患腸炎現(xiàn)象。預(yù)飼期因環(huán)境應(yīng)激,健康對照和誘導(dǎo)組均死去1只,正式試驗期誘導(dǎo)組因嚴重腹瀉死亡10只。去除因患病死去12只,最終得到對照健康組9只、誘導(dǎo)健康組10、誘導(dǎo)輕微組9只、誘導(dǎo)嚴重組20只。
解剖癥狀觀察評分標準(GLS)見表2:無癥狀, 0分;1個腸段出現(xiàn)脹氣,內(nèi)有大量粘液等,1分; 2個以上腸道脹氣、腸壁變厚、大量粘液或腸系膜出血等,2分。除去因患病嚴重或其他原因死去12只(同上),最終得到對照健康組9只、誘導(dǎo)健康組10、誘導(dǎo)輕微組11只、誘導(dǎo)嚴重組18只。
組織病理學(xué)切片觀察與分析發(fā)現(xiàn),在空腸和結(jié)腸炎癥組織中,都存在組織損傷及炎性損傷、隱窩結(jié)構(gòu)異常。在空腸中并未發(fā)現(xiàn)淋巴細胞和紅細胞的內(nèi)容物,但存在局部上皮細胞壞死、溶解,而且伴有中性粒細胞的侵潤(圖1 B空腸嚴重,紅色箭頭);粘膜固有層、粘膜下層結(jié)締組織間質(zhì)有炎癥細胞的侵潤(圖1 B空腸嚴重,黑色箭頭),肌層纖維發(fā)生不同程度的溶解,肌膜有輕度溶解,伴有炎性細胞的侵潤(圖1 B空腸嚴重,黃色箭頭)。
在結(jié)腸嚴重組切片中,可見其隱窩結(jié)構(gòu)異常,隱窩變大變空,且杯狀細胞部分融合(圖1 D結(jié)腸嚴重,紅色箭頭);上皮細胞的形態(tài)發(fā)生變化,有壞死溶解現(xiàn)象,伴有炎癥粒細胞的侵潤(圖1 D結(jié)腸嚴重,黃色箭頭)。肌層纖維發(fā)生不同程度的溶解,肌膜有輕度溶解,伴有炎性細胞的侵潤(圖1 D結(jié)腸嚴重,黑色箭頭)。
通過對試驗兔臨床癥狀,解剖學(xué)癥狀和切片的觀察將其分為健康對照組、誘導(dǎo)健康組、輕微組、嚴重組。
表2 剖檢評分(GLS)Table 2 Score of necropsy (GLS)
(A)空腸健康對照病理切片(H.E.200X);(B)空腸嚴重組病理切片(H.E.200X); (C)結(jié)腸健康對照病理切片(H.E.200X);(D)結(jié)腸嚴重對照病理切片(H.E.200X)圖1 組織病理學(xué)切片 Fig.1 Histopathological section
圖2 生物學(xué)信息預(yù)測miR-130b靶基因為STAT3 Fig.2 Biological information predicts that the target gene of miR-130b is STAT3
對miR-130b靶基因進行生物信息學(xué)預(yù)測,用DAVID進行炎癥相關(guān)的基因富集,通過篩選,STAT3可作為miR-130b的靶基因(圖2)。
本試驗引物信息見表3。
表3 試驗引物信息Table 3 Tested primer information
注: ‘*’表示該基因為內(nèi)參基因。
Note: ‘*’ said the gene as a reference gene.
(A)IL-22;(B)TNF-α;(C)IL-18* 表示0.01≤ P ≤ 0.05; ** 表示 P <0.01; *** 表示0.001≤ P ≤0.005; **** 表示 P <0.001圖3 炎癥因子在圓小囊中的表達量Fig.3 Expression of inflammatory factors in sacculus
(A)miR-130在圓小囊中的表達量;(B)STAT3在圓小囊中的表達量 * 表示0.01≤ P≤0.05; ** 表示 P <0.01; *** 表示0.001≤ P≤ 0.005; **** 表示 P <0.001圖4 miR-130和STAT3在圓小囊中的表達量Fig.4 Expression of miR-130 and STAT3 in the sacculus rounds
通過qPCR檢測,發(fā)現(xiàn)在家兔圓小囊中,IL-22、TNF-α和IL-18的表達隨著患腸炎程度的加重呈上調(diào)趨勢(圖3)。IL-22和TNF-α在嚴重組的表達量極顯著高于對照健康(P<0.01),同時輕微組和誘導(dǎo)健康組也顯著高于健康對照組(P<0.05)。IL-18在嚴重組的表達量極顯著高于健康對照組和輕微組(P<0.01),顯著高于誘導(dǎo)健康組(P<0.05),而健康對照組、誘導(dǎo)健康組和輕微組表達無顯著差異。
不同腸炎程度的家兔圓小囊中miR-130b的表達量研究發(fā)現(xiàn),miR-130b隨著患腸炎程度的加深表達下調(diào)趨勢,誘導(dǎo)健康組、輕微組和嚴重組都極顯著低于健康對照組(P<0.01),并且,輕微患病組和嚴重患病組也極顯著低于誘導(dǎo)健康組(P<0.01)。輕微組和嚴重組之間差異不顯著(圖4 A)。
同時,利用RT-qPCR技術(shù)檢測了靶基因STAT3在圓小囊各種患腸炎狀態(tài)下的表達量,發(fā)現(xiàn)在圓小囊中,STAT3隨著腸炎嚴重程度的加深而表達上升。嚴重組極顯著高于健康對照組、誘導(dǎo)健康組和輕微組(P<0.01),且輕微組極顯著高于健康對照組(P<0.01),誘導(dǎo)健康組和輕微組差異不顯著,健康對照組和誘導(dǎo)健康組差異不顯著(圖4 B)。
圖5 患腸炎圓小囊組織中STAT3與miR-130b的相關(guān)性分析Fig.5 Analysis of the correlation between STAT3 and miR-130b in the tissues of enteritis sacculus
由圖5可以看出,SigmaPlot軟件計算所有STAT3和miR-130b表達量的皮爾遜相關(guān)性發(fā)現(xiàn),在家兔腸炎圓小囊中,miR-130b和STAT3的表達量稱顯著的負相關(guān)(r=-0.635,P<0.01)。
家兔腸炎可能由多種因素引起,研究已經(jīng)發(fā)現(xiàn)能夠引起特異性腸炎的病原微生物主要有大腸桿菌、病毒、真菌等,其中大腸桿菌(Esherichiacoli)引起的腸炎最為普遍[22-23]。由日糧粗纖維不適引起的腹瀉,外界應(yīng)激性引起的腹瀉,出血性腸炎和兔流行性腸炎等疾病[24; 21-22]為非特異性腸炎。家兔日糧中的纖維對家兔來說可促進消化系統(tǒng)的發(fā)育,增強胃腸道蠕動等功能有尤為重要的作用。有研究表明日糧中纖維素(CF)<12 %、木質(zhì)素(ADF)<15 %則會引起家兔非特異性免疫[25-26]。
本試驗利用低纖維誘導(dǎo)家兔非特異性消化道紊亂型腸炎模型,根據(jù)家兔臨床癥狀、解剖病理學(xué)評分發(fā)現(xiàn)在腸炎發(fā)生過程中,家兔會隨著炎癥程度的加深出現(xiàn)不同的臨床癥狀,而且其腸道也會發(fā)生不同程度的病變。切片觀察發(fā)現(xiàn)空腸和結(jié)腸的隱窩變大且上皮細胞和杯狀細胞溶解出現(xiàn)不同程度的溶解,粘膜固有層、粘膜下層的結(jié)締組織間質(zhì)存在大量的炎癥細胞的侵潤。炎癥細胞主要包括巨噬細胞、粒細胞(GRAN)、淋巴細胞等,它們的持續(xù)存在導(dǎo)致了腸炎反應(yīng)的持續(xù),試驗結(jié)果低纖維日糧可以誘發(fā)家兔非特異性消化道紊亂型腸炎的發(fā)生,各腸段病理學(xué)變化與家兔感染性實驗(ERE)相似[27]。炎癥性細胞可以上調(diào)腫瘤壞死因子(tumornecrosisfactor-α)[28]、IL-18[29]和IL-22[30]影響腸炎的發(fā)生,其研究結(jié)果與本實驗結(jié)果一致。通過臨床癥狀和解剖學(xué)評分及病理學(xué)切片的觀察,和檢測炎癥因子的表達情況,能夠充分說明本試驗誘導(dǎo)腸炎模型成功,樣本可進行下一步試驗。
近年來,大量研究表明miRNAs在腸炎組織中存在異常表達,并證實miRNAs參與腸炎的發(fā)生。wu等[20]檢測了miRNAs在潰瘍性結(jié)腸炎中的表達差異,發(fā)現(xiàn)miR-16、miR-21、miR-23a等9個microRNAs表達上調(diào),miR-192、miR-375和miR-422b表達下調(diào)。這表明miRNAs在腸炎的發(fā)生過程中發(fā)揮著重要的作用。本試驗研究發(fā)現(xiàn),miR-130b在家兔低纖維日糧誘導(dǎo)的非特異性消化道紊亂型腸炎的兔圓小囊中表達均明顯下調(diào),提示miR-130b可能是參與腸炎發(fā)生的新的因子。miR-130b被越來越多的研究證實在多種疾病中發(fā)揮重要的作用。在胃癌、結(jié)直腸癌、子宮內(nèi)膜癌等的發(fā)生和發(fā)展研究中發(fā)現(xiàn), miR-130b可促進癌細胞的增殖和侵襲[31-33]。另外,miR-130b下調(diào)可以導(dǎo)致活化的成纖維細胞和上皮-間充質(zhì)串?dāng)_促進失調(diào),進而影響肺腺上皮細胞IGF-1的分泌,提示miRNA-130b的調(diào)控作用可預(yù)防肺纖維化[34]。這些研究結(jié)果充分說明miR-130b廣泛參與細胞各種生命活動。
為了更深一步探索miR-130b參與家兔非特異性消化道紊亂型腸炎的發(fā)病機制,為家兔腸炎治療奠定知識基礎(chǔ),本研究通過生物信息學(xué)在線工具預(yù)測及分析,得到STAT3可作為miR-130b的直接靶基因,通過qPCR定量發(fā)現(xiàn),在患腸炎的家兔圓小囊組織內(nèi)miR-130b和靶基因STAT3的表達量呈顯著負相關(guān),且STAT3隨患病程度加深而升高。家兔和人源性的miR-130b及STAT3的3'UTR均十分保守,預(yù)測結(jié)果為且miR-130b與STAT3的3'UTR區(qū)有一段相互匹配,存在miR-130b直接調(diào)控STAT3直接調(diào)控的可能性。有研究表明,STAT3缺失會導(dǎo)致斑馬魚脊柱畸形和免疫障礙[35],Gang Zhao等[36]發(fā)現(xiàn)miR-130b在人胰腺癌組織對比癌旁組織的表達量顯著下調(diào),STAT3在胰腺癌組織中表達顯著上調(diào),兩者之間存在顯著的負相關(guān),并用雙熒光素酶報告證實了miR-130b可直接靶向STAT3,證明STAT3可作為miR-130b的靶基因,參與胰腺癌的發(fā)生,與本試驗結(jié)果一致。另外有研究表明IL-6可以通過JAK/STAT3信號通路活化STAT3,活化的STAT3可激活相關(guān)炎癥通路,而抑制IL-6的信號可導(dǎo)致減少STAT3活化,進而減少IL-10的表達,由于IL-10缺乏的缺乏進而導(dǎo)致的結(jié)腸炎的發(fā)生[37]。有研究表明,敲除小鼠IL-6基因后再誘導(dǎo)發(fā)生結(jié)腸炎的實驗中,JAK//STAT信號通路中,活化的STAT3水平隨著炎癥程度的降低而降低,表明了STAT3的活化是炎癥發(fā)生的重要誘因[38]。多項研究表明,在IBD患者炎癥腸粘膜中,通過熒光定量和蛋白檢測發(fā)現(xiàn)總的STAT3和磷酸化的STAT3水平均高表達,進一步研究發(fā)現(xiàn)磷酸化的STAT3水平與炎癥嚴重程度呈正相關(guān)[39-40]。同時,有研究發(fā)現(xiàn)抑制IL-6 /STAT3的級聯(lián)效應(yīng)能導(dǎo)致獲得性免疫介導(dǎo)的結(jié)腸炎被抑制[41]。 Koukos 等[42]對UC兒童和試驗誘導(dǎo)小鼠結(jié)腸炎的實驗中發(fā)現(xiàn),miR-124在炎癥組織中表達量顯著下調(diào),STAT3和它下游基因的表達水平均顯著上調(diào)。同時他們也證明,下調(diào)miR-124可以增加STAT3的表達和從而促進炎癥和UC腸炎病的發(fā)生。以上各項研究都表明了IL-6/STAT3信號通路參與腸炎的發(fā)生過程,STAT3是參與炎癥發(fā)生的重要調(diào)控因子。
本研究結(jié)果表明,STAT3的3’-UTR區(qū)可能是家兔miR-130b的潛在的作用靶點,與家兔患非特異性消化道紊亂型腸炎顯著相關(guān),在家兔患非特異性消化道紊亂型腸炎的持續(xù)過程中miR-130b顯著下調(diào),可能增加STAT3的表達和活性,促進下游基因的轉(zhuǎn)錄,進而促進炎癥的發(fā)生。這項研究也暗示了miR-130b在家兔腸炎的發(fā)生和發(fā)展中有重要的調(diào)節(jié)作用??偟膩碚f,miR-130b可能作為家兔炎癥發(fā)生的標志物和抑制劑。
參考文獻:
[1]Licois D, Coudert P, Ceré N, et al. Epizootic enterocolitis of the rabbit: review of current research[J]. World Rabbit Sci, 2000, 8: 187-194.
[2]Jones J, Duff J. Rabbit epizootic enterocolitis[J]. Vet. Rec., 2001, 149(17): 532.
[4]Simecka J W. Mucosal immunity of the gastrointestinal tract and oral tolerance[J]. Adv. Drug. Deliv. Rev., 1998, 34(2): 235-259.
[5]劉 環(huán),佘銳萍,宋俊霞,等. 兔圓小囊免疫功能及其與腸道粘膜局部免疫關(guān)系的研究 Ⅳ. 實驗性感染腸球蟲兔的圓小囊上皮間淋巴細胞及杯狀細胞定量觀察[J]. 畜牧獸醫(yī)學(xué)報,1997,28(5):448-452.
[6]She R-P, Liu H-H, Jia J-Z, et al. Observation on ultrastructure of gut-associated lymphoid tissue-sacculus rotundus of rabbit[J]. JOURNAL-CHINESE ELECTRON MICROSCOPY SOCIETY, 2002, 21(4): 359-363.
[7]She R-P, Yang H-C, Jia J-Z, et al. Ultrastructural pathologic observation on the Gut-associated lymphoid tissues of sacculus rotundus of rabbits infected with rabbit haemorrhagic disease virus[J]. Agricultural Sciences in China, 2003, 2(4): 446-453.
[8]佘銳萍,楊漢春,馬毅新,等. 不同日月齡兔感染 RHDV 后圓小囊的比較病理學(xué)觀察[J]. 中國農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2004,9(1):49-53.
[9]Gregory R I, Chendrimada T P, Cooch N, et al. Human RISC couples microRNA biogenesis and posttranscriptional gene silencing[J]. Cell, 2005, 123(4): 631-640.
[10]Ambros V. MicroRNA pathways in flies and worms: growth, death, fat, stress, and timing[J]. Cell, 2003, 113(6): 673-676.
[11]Carrington J C, Ambros V. Role of microRNAs in plant and animal development[J]. Science, 2003, 301(5631): 336-338.
[12]Bartel D P. MicroRNAs: genomics, biogenesis, mechanism, and function[J]. Cell, 2004, 116(2): 281-297.
[13]Boehm M, Slack F. A developmental timing microRNA and its target regulate life span inC.elegans[J]. Science, 2005, 310(5756): 1954-1957.
[14]Berezikov E, Guryev V, Van De Belt J, et al. Phylogenetic shadowing and computational identification of human microRNA genes[J]. Cell, 2005, 120(1): 21-24.
[15]Lewis B P, Burge C B, Bartel D P. Conserved seed pairing, often flanked by adenosines, indicates that thousands of human genes are microRNA targets[J]. Cell, 2005, 120(1): 15-20.
[16]崔慧娟, 唐元家, 羅曉兵, 等. 系統(tǒng)性紅斑狼瘡患者中 miR-146a 表達缺陷與 I 型干擾素通路過度活化相關(guān)[J]. 現(xiàn)代免疫學(xué), 2008(4).
[17]錢 龍, 高登文, 汪國生, 等. Pre-miR-146a 基因 rs2910164 位點單核苷酸基因多態(tài)性及 miR-146a 表達與類風(fēng)濕關(guān)節(jié)炎相關(guān)性研究[J]. 中華微生物學(xué)和免疫學(xué)雜志, 2012, 32(3): 253-257.
[18]孫中斌, 晉 亮, 黨二樂, 等. MiR-486-3p 在銀屑病皮損的表達及對角蛋白 17 表達的影響[J]. 中華皮膚科雜志, 2013, 46(3): 160-163.
[19]Clark P M, Dawany N, Dampier W, et al. Bioinformatics analysis reveals transcriptome and microRNA signatures and drug repositioning targets for IBD and other autoimmune diseases[J]. Inflamm. Bowel. Dis., 2012, 18(12): 2315-2333.
[20]Wu F, Zikusoka M, Trindade A, et al. MicroRNAs are differentially expressed in ulcerative colitis and alter expression of macrophage inflammatory peptide-2α[J]. Gastroenterology, 2008, 135(5): 1624-1635. e24.
[21]Bennegadi N, Gidenne T, Licois D. Impact of fibre deficiency and sanitary status on non-specific enteropathy of the growing rabbit[J]. Anim Res, 2001, 50(5): 401-413.
[22]De Blas J, Carabao R, Chamorro S, et al. Review. New trends in rabbit feeding: influence of nutrition on intestinal health[J]. Spanish Journal of Agricultural Research (Espaa), 2008.
[23]Schlolaut W, Hudson R, R?del H. Impact of rearing mangement on health in domestic rabbits: a review[C]. World Rabbit Science, 2013: 145-159.
[24]Whitney J. A review of non-specific enteritis in the rabbit[J]. Lab. Anim., 1976, 10(3): 209-221.
[25]Haligur M, Ozmen O, Demir N. Pathological and ultrastructural studies on mucoid enteropathy in New Zealand rabbits[J]. Journal of Exotic Pet Medicine, 2009, 18(3): 224-228.
[26]朱巖麗, 李福昌, 王春陽, 等. 不同中性洗滌纖維與淀粉比例飼糧對生長肉兔生產(chǎn)性能, 盲腸發(fā)酵及胃腸道發(fā)育的影響[J]. 動物營養(yǎng)學(xué)報, 2013, 25(8): 1791-1798.
[27]Dewrée R, Meulemans L, Lassence C, et al. Experimentally induced epizootic rabbit enteropathy: clinical, histopathologicaI, ultrastructural, bacteriological and haematological findings[J]. World Rabbit Science, 2010, 15(2): 91-102.
[28]Mahida Y R. The key role of macrophages in the immunopathogenesis of inflammatory bowel disease[J]. Inflamm. Bowel. Dis., 2000, 6(1): 21-33.
[29]Papadakis K A, Targan S R. Role of cytokines in the pathogenesis of inflammatory bowel disease[J]. Annu. Rev. Med., 2000, 51(1): 289-298.
[30]Wolk K, Kunz S, Witte E, et al. IL-22 increases the innate immunity of tissues[J]. Immunity, 2004, 21(2): 241-254.
[31]Lai K W, Koh K X, Loh M, et al. MicroRNA-130b regulates the tumour suppressor RUNX3 in gastric cancer[J]. Eur. J. Cancer, 2010, 46(8): 1456-1463.
[32]Colangelo T, Fucci A, Votino C, et al. MicroRNA-130b promotes tumor development and is associated with poor prognosis in colorectal cancer[J]. Neoplasia, 2013, 15(9): 1086-1099.
[33]Li B-L, Lu C, Lu W, et al. miR-130b is an EMT-related microRNA that targets DICER1 for aggression in endometrial cancer[J]. Med Oncol, 2013, 30(1): 484.
[34]Li S, Geng J, Xu X, et al. miR-130b-3p modulates epithelial-mesenchymal crosstalk in lung fibrosis by targeting IGF-1[J]. PLoS. ONE, 2016, 11(3): e0150418.
[35]Xiong S, Wu J, Jing J, et al. Loss of stat3 function leads to spine malformation and immune disorder in zebrafish[J]. Science Bulletin, 2017, 62(3): 185-196.
[36]Zhao G, Zhang J-G, Shi Y, et al. MiR-130b is a prognostic marker and inhibits cell proliferation and invasion in pancreatic cancer through targeting STAT3[J]. PLoS. ONE, 2013, 8(9): e73803.
[37]Atreya R, Mudter J, Finotto S, et al. Blockade of interleukin 6 trans signaling suppresses T-cell resistance against apoptosis in chronic intestinal inflammation: evidence in crohn disease and experimental colitis in vivo[J]. Nat. Med., 2000, 6(5): 583-588.
[38]Suzuki A, Hanada T, Mitsuyama K, et al. CIS3/SOCS3/SSI3 plays a negative regulatory role in STAT3 activation and intestinal inflammation[J]. J. Exp. Med., 2001, 193(4): 471-482.
[39]Lovato P, Brender C, Agnholt J, et al. Constitutive STAT3 activation in intestinal T cells from patients with Crohn’s disease[J]. J Biol Chem, 2003, 278(19): 16777-16781.
[40]Musso A, Dentelli P, Carlino A, et al. Signal transducers and activators of transcription 3 signaling pathway. An Essential Mediator of Inflammatory Bowel Disease and Other Forms of Intestinal Inflammation[J]. Inflamm. Bowel. Dis., 2005, 11(2): 91-98.
[41]Sugimoto K. Role of STAT3 in inflammatory bowel disease[J]. World. J. Gastroenterol., 2008, 14(33): 5110-5114.
[42]Koukos G, Polytarchou C, Kaplan J L, et al. MicroRNA-124 regulates STAT3 expression and is down-regulated in colon tissues of pediatric patients with ulcerative colitis[J]. Gastroenterology, 2013, 145(4): 842-852.