沈立君 黃永平 祝學(xué)勇 劉葉 李紅良
心肌肥厚是由生理或病理刺激導(dǎo)致的心臟復(fù)雜的重塑過程,早期階段,心臟肥厚是針對各種刺激產(chǎn)生的適應(yīng)性反應(yīng),可以有效的改善心功能,降低心室壁張力。但是,長期持續(xù)性的病理性心肌肥厚導(dǎo)致心臟擴張及一系列失代償反應(yīng),最終導(dǎo)致心力衰竭甚至猝死的發(fā)生[1]。尋找靶向心肌肥厚發(fā)生發(fā)展的重要調(diào)控因子是預(yù)防和治療病理性心肌肥厚及其所導(dǎo)致的心力衰竭的有效手段。
酸性富含亮氨酸的核磷蛋白32家族成員A(acidic leucine-rich nuclear phosphoprotein 32 family member A, Anp32a),屬于進化上保守的蛋白質(zhì)家族,其結(jié)構(gòu)特征是富含亮氨酸殘基的氨基端結(jié)構(gòu)域和羧基端酸性末尾。研究表明,Anp32a參與多種細胞生命活動過程的調(diào)節(jié),包括RNA轉(zhuǎn)運、轉(zhuǎn)錄,細胞凋亡,囊泡運輸和細胞內(nèi)信號轉(zhuǎn)導(dǎo)[2]。Anp32a在正常組織以及多種癌癥,如乳腺癌、胰腺癌和前列腺癌中表達,并且能夠抑制乳腺癌和前列腺癌的進展,同時也參與調(diào)控神經(jīng)退行性疾病[3]。筆者以Anp32a敲低和過表達的細胞為研究對象,以探討Anp32a在血管緊張素Ⅱ(Ang Ⅱ)刺激誘導(dǎo)的心肌細胞肥大中的作用及機制。
1.1生物信息數(shù)據(jù)分析
在GEO數(shù)據(jù)庫(https://www.ncbi.nlm.nih.gov/gds/)中搜索小鼠心臟主動脈縮窄手術(shù)(TAC)組的芯片數(shù)據(jù),選擇GSE5500數(shù)據(jù)庫插入一篇參考文獻中假手術(shù)(Sham)組與TAC組進行差異分析。使用R軟件包affy讀取基因芯片的數(shù)據(jù),R軟件包gcrma對芯片基因的表達量進行標(biāo)準(zhǔn)化,并使用t檢驗進行差異顯著性檢驗。差異基因篩選標(biāo)準(zhǔn)為差異表達倍數(shù)大于2,且統(tǒng)計學(xué)檢驗P值小于0.05。使用R語言ggplot2軟件包,繪制基因表達的火山圖。
1.2小鼠心臟主動脈縮窄手術(shù)
C57背景野生型,SPF級,8~10周齡雄性小鼠,隨機分為模型組和假手術(shù)組,利用主動脈縮窄手術(shù)構(gòu)建心肌肥厚模型。小鼠稱重后,3%戊巴比妥鈉(50 mg/kg)腹腔注射麻醉,麻醉成功后,左側(cè)胸部備皮,固定于倒V形板斜面上,進行氣管插管并連接呼吸機。用碘酒及75%酒精充分消毒手術(shù)區(qū)域皮膚3遍,于第二、三肋間距胸骨左緣2 mm處用剪刀分離肋間肌打開胸腔,顯微擴胸器將胸部擴開,充分暴露手術(shù)視野,鈍性分離出主動脈弓降支,將7-0手術(shù)絲線穿過血管,墊針平行放置于主動脈上,打結(jié)后迅速去除墊針,術(shù)畢關(guān)閉胸腔。術(shù)后密切觀察小鼠狀態(tài)。假手術(shù)組鈍性分離主動脈降支后僅穿線不結(jié)扎,余步驟與模型組一致。
1.3細胞與分子實驗
1.3.1分子克隆 引物序列(Anp32a-seq-F CCGCTCGAGATGGAGATGGACAA,Anp32a-seq-R CGCGGATCCGTTAGTCATCCTCTTG),由上海生工生物工程股份有限公司合成,從大鼠cDNA擴增Anp32a,通過XhoI和BamHI酶切與載體pENTR-CMV連接,構(gòu)建穿梭載體,通過Gateway?LR ClonaseTMⅡ Enzyme Mix(Invitrogen公司)試劑盒將pENTR-CMV-Anp32a載體與pAd-PL-DEST載體重組,得到包裝腺病毒的過表達質(zhì)粒。
針對大鼠Anp32a基因序列設(shè)計RNA干擾靶序列GCAGAGAAATGTCCGAACCTT,在該序列基礎(chǔ)上合成shRNA正義鏈:CCGGGCAGAGAAATGTCCGAACCTTCTCGAGAAGGTTCGGACATTTC-TCTGCTTTTTG,反義鏈:AATTCAAAAAGCAGAGAAATGTCCGAACCTTCTCGAGAAGG-TTCGGACATTTCTCTGC,引物融合后與AgeI和EcoRI酶切的載體pENTR-U6連接,構(gòu)建穿梭載體,通過Gateway?LR ClonaseTMⅡ Enzyme Mix(Invitrogen公司)試劑盒將pENTR-U6-Anp32a-shRNA載體與pAd-PL-DEST載體重組,得到包裝腺病毒的敲低質(zhì)粒。
1.3.2細胞轉(zhuǎn)染與感染 重組腺病毒質(zhì)粒經(jīng)PacI酶切線性化、純化,然后轉(zhuǎn)染293A 細胞擴增,最后將多次擴增的病毒液利用氯化銫密度梯度離心-透析聯(lián)用法進行純化。利用穿梭質(zhì)粒上帶有的獨立啟動子表達的GFP來初步判定病毒液的滴度。用純化后的病毒液感染H9C2心肌細胞24 h后,細胞饑餓處理12 h,加入終濃度為1 μmol/L 的AngⅡ刺激細胞,對照組使用等量PBS混合,刺激時間48 h。
1.3.3蛋白印記(Western blot)檢測 提取細胞總蛋白,使用BCA蛋白檢測試劑盒(23225; Thermo Fisher Scientific)定量并調(diào)平樣品濃度,將蛋白樣品按30 μg/孔的上樣量依次加到SDS-PAGE膠進行電泳,電泳結(jié)束后用濕轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)移蛋白至PVDF膜。將轉(zhuǎn)有蛋白的PVDF膜放置TBS中洗去轉(zhuǎn)膜液,5%的脫脂奶粉封閉液室溫封閉1 h,加入對應(yīng)一抗,4℃搖床過夜,次日加入對應(yīng)二抗,室溫孵育1 h,于儀器Bio-RadChemiDocTMXRS+中顯影,檢測目的條帶。文中所用到的一抗包括Anp32a(sc-5652, Santa cruz公司),Anp(A1609, Abclonal公司),β-Mhc(22280-1-AP, Proteintech公司),p-Akt(4060, CST公司),Akt(4691, CST公司),Gapdh(2118, CST公司)。
1.3.4實時熒光定量聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(qPCR) 使用TRIZOL(15596-026,Invitrogen)提取細胞、小鼠心臟組織總RNA,Nanodrop 2000(Thermo Fisher Scientific,Madison)和凝膠電泳對分離的RNA進行定量并檢測其完整性。按照Transcriptor First Strand cDNA Synthesis Kit(4896866001; Roche)說明書逆轉(zhuǎn)錄RNA成cDNA。使用LightCycler 480 SYBR Green 1 Master Mix(04887352001,Roche)對PCR擴增產(chǎn)物進行定量。采用Gapdh作為內(nèi)參基因校準(zhǔn)靶基因。文中所用到的引物(武漢擎科創(chuàng)新生物科技有限公司合成)見表1。
表1 qPCR所需的引物序列
1.3.5細胞免疫熒光染色 細胞大小及面積通過細胞免疫熒光染色分析[4]。腺病毒感染24 h后,用AngII及PBS處理H9C2心肌細胞48 h,將細胞置于預(yù)熱(37℃)的100%甲醇中孵育20 min,以淬取GFP綠色熒光信號,用0.1%Triton X-100于PBS中洗5 min,并用α-輔肌動蛋白(05-384,Merck Millipore,1∶100稀釋)染色,加入熒光二抗(驢抗小鼠IgG(H + L)二抗,A21202 ,Invitrogen,1∶200),DAPI封片,于正置熒光顯微鏡下觀察拍照。
1.4統(tǒng)計學(xué)方法 所有檢測結(jié)果均使用平均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,采用SPSS 19.0軟件進行統(tǒng)計學(xué)分析,兩組之間均數(shù)比較使用獨立樣本t檢驗,多組間均數(shù)比較使用單因素方差分析,以P<0.05為差異有顯著性。
2.1生物信息數(shù)據(jù)庫心臟組織Anp32a的表達
通過挖掘分析數(shù)據(jù)庫(GSE5500)中小鼠心臟組織假手術(shù)組與TAC組的芯片數(shù)據(jù),發(fā)現(xiàn)Anp32a的表達顯著下調(diào)。如圖1所示,紅色的點代表TAC手術(shù)后表達上調(diào)的基因,綠色的點代表TAC手術(shù)后表達下調(diào)的基因,黑色的點代表沒有變化的基因。
圖1 火山圖
2.2Anp32a在假手術(shù)組及TAC組不同時間點心臟組織中的表達
qPCR結(jié)果顯示Anp32a在兩組心臟組織中的mRNA相對表達水平,與假手術(shù)組相比,Anp32a在TAC組的表水平隨著TAC手術(shù)時間延長逐漸降低。見表2。
表2 不同組別Anp32a基因表達
注:與sham組相比,*P<0.05
2.3AdAnp32組及AdGFP組細胞大小及心肌肥厚指標(biāo)表達水平的比較
Western blot顯示AdAnp32感染細胞其蛋白表達水平增加(見圖2A),在AdAnp32a感染心肌細胞24 h后,AngII刺激48 h,免疫熒光染色結(jié)果顯示AdAnp32a組細胞明顯小于AdGFP對照組(見圖2B)。Image-Pro Plus 6.0分析計數(shù)400倍顯微鏡下心肌細胞面積(cell surface area, CSA),結(jié)果見表3。進一步裂解細胞取其上清,通過qPCR進行心肌肥厚相關(guān)基因Anp、Bnp、β-Mhc的檢測。如表4所示,AdAnp32a組與其對照AdGFP組相比,Anp、Bnp、β-Mhc基因表達水平降低。
圖2 AdGFP組和AdAnp32a組蛋白表達(A)和免疫熒光染色(B)
表3 兩組細胞大小面積統(tǒng)計/μm2
注:與AdGFP組比較,*P<0.05
表4 不同組別心肌肥厚基因表達
注:n=3次重復(fù)實驗。與對照組比較,*P<0.05
2.4AdshAnp32組及AdshRNA組細胞大小及心肌肥厚指標(biāo)表達水平的比較
Western blot顯示AdshAnp32感染細胞檢測Anp32a蛋白表達水平明顯降低(見圖3A),細胞免疫熒光染色結(jié)果顯示AdshAnp32a組細胞較AdshRNA對照組明顯增大(見圖3B)。細胞面積分析結(jié)果見表5。提取細胞總RNA,qPCR檢測兩組Anp、Bnp、β-Mhc的基因表達,AdshAnp32a上述基因表達較其對照組明顯升高,見表6。
圖3 兩組Western blot結(jié)果(A)和細胞免疫熒光染色(B)
表5 兩組細胞大小面積統(tǒng)計/μm2
注:與AdshRNA組組比較,*P<0.05
表6 兩組心肌肥厚基因表達
注:n=3次重復(fù)實驗。與AdshRNA組比較,*P<0.05
2.5Anp32a對AKT信號通路的影響
如圖4所示,與PBS對照組相比,AngⅡ刺激條件下,Anp、β-Mhc、Akt磷酸化蛋白的水平升高,過表達Anp32a能抑制其升高。
圖4 Anp、β-Mhc、p-Akt的蛋白表達
本研究采用Anp32a敲低和過表達的H9C2心肌細胞為研究對象,通過AngⅡ刺激來探討Anp32a基因在心肌細胞肥大中的作用。實驗結(jié)果顯示Anp32a在心肌肥厚模型中表達顯著降低,這與Gao等[5]研究結(jié)果相似。過表達Anp32a明顯減輕AngⅡ刺激誘導(dǎo)的心肌細胞肥大,并且顯著降低Akt的磷酸化水平。因此,Anp32a可能通過抑制AKT信號通路,在AngⅡ刺激誘導(dǎo)的心肌細胞肥大過程中起到負調(diào)節(jié)作用。
Anp32a家族的成員被廣泛認(rèn)為是核-質(zhì)穿梭蛋白,涉及不同的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑及許多重要的細胞過程,包括增殖、分化、細胞凋亡、腫瘤抑制、調(diào)節(jié)mRNA運輸和穩(wěn)定性、抑制組蛋白乙酰轉(zhuǎn)移酶和基于微管功能的調(diào)節(jié)。Anp32a結(jié)構(gòu)上由富含亮氨酸重復(fù)序列(LRRs)結(jié)構(gòu)域的高度保守的N-末端和主要由聚谷氨酸組成的C-末端組成,其中前者是介導(dǎo)蛋白質(zhì)-蛋白質(zhì)相互作用的基序[6]。在當(dāng)前的研究中,我們發(fā)現(xiàn)Anp32a能夠在心肌細胞中表達,且在病理性心肌肥厚中表達顯著下調(diào)。通過構(gòu)建腺病毒介導(dǎo)Anp32a敲低和過表達的質(zhì)粒,我們首次發(fā)現(xiàn)Anp32a敲低(AdshAnp32a)能夠促進心肌細胞肥大,而Anp32a過表達(AdAnp32a)則抑制這一過程。
病理性心肌肥厚發(fā)病機制復(fù)雜,包括G蛋白偶聯(lián)受體(GPCR)、絲裂原活化的蛋白激酶(MAPK)級聯(lián)、鈣調(diào)磷酸酶-NFAT通路(calcineurin-NFAT circuit)、磷脂酰肌醇3-激酶-絲氨酸/蘇氨酸激酶(PI3K-AKT)信號通路等[7-8]在內(nèi)的多種細胞內(nèi)信號通路在心肌肥厚的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮關(guān)鍵調(diào)控作用。其中,S473和T308介導(dǎo)的AKT磷酸化激活在細胞存活、增殖、代謝、生長等方面發(fā)揮重要作用。值得注意的是,在出生后的心臟中,PI3K-AKT-FOXO軸調(diào)節(jié)心肌細胞大小,其中AKT和FOXO3a的磷酸化水平與體內(nèi)心臟肥大呈正相關(guān)[9]。我們的研究結(jié)果顯示,AdAnp32a能夠抑制AngII刺激誘導(dǎo)的病理性心肌肥厚中磷酸化的AKT水平的上調(diào)。此外,Anp32a是磷酸酶2A(PP2A)的強效抑制劑[10],而PP2A是參與調(diào)控細胞多種基本功能的重要絲氨酸/蘇氨酸磷酸酶[11]。PP2A可能參與Anp32a-AKT調(diào)控的病理性心肌肥厚。
綜上所述,本研究發(fā)現(xiàn)Anp32a在心肌細胞肥大模型中表達降低,過表達Anp32a可有效抑制心肌細胞肥大,這一作用可能是通過抑制AKT等信號通路實現(xiàn)的。因此,靶向Anp32a可能成為預(yù)防和治療病理性心肌肥厚的新策略。
1 Benjamin EJ, Blaha MJ, Chiuve SE, et al. Heart Disease and Stroke Statistics——2017 Update: A Report From the American Heart Association [J]. Circulation, 2017, 135(10): p. e146
2 Opal P, Garcia JJ, McCall AE, et al. Generation and characterization of LANP/pp32 null mice [J]. Mol Cell Biol, 2004, 24(8): 3 140
3 Huyton T, Wolberger C. The crystal structure of the tumor suppressor protein pp32 (Anp32a): structural insights into Anp32 family of proteins [J]. Protein Sci, 2007, 16(7): 1 308
4 Deng KQ, Wang A, Ji YX, et al. Suppressor of IKKε is an essential negative regulator of pathological cardiac hypertrophy [J]. Nat Commun, 2016, 7: 11 432
5 Gao J, Li Y, Wang T, et al. Analyzing gene expression profiles with preliminary validations in cardiac hypertrophy induced by pressure-overload [J]. Can J Physiol Pharmacol, 2018
6 Matilla A, Radrizzani M. The Anp32 family of proteins containing leucine-rich repeats [J].Cerebellum, 2005, 4(1): 7
7 Heineke J, Molkentin JD. Regulation of cardiac hypertrophy by intracellular signalling pathways [J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2006, 7(8): 589
8 Manning BD, Toker A. AKT/PKB signaling: navigating the network [J]. Cell, 2017, 169(3): 381
9 Skurk C, Izumiya Y, Maatz H, et al. The FOXO3a transcription factor regulates cardiac myocyte size downstream of AKT signaling [J]. J Biol Chem, 2005, 280(21): 20 814
10 de Chiara C, Menon RP, Pastore A. Structural bases for recognition of Anp32/LANP proteins [J]. FEBS J, 2008, 275(10): 2 548
11 Costanzo RV, Vilá-Ortíz GJ, Perandones C, et al. Anp32e/Cpd1 regulates protein phosphatase 2A activity at synapses during synaptogenesis [J]. Eur J Neurosci, 2006, 23(2): 309