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人參多糖3種給藥途徑大鼠體內(nèi)藥動學(xué)特征比較

2018-09-17 08:33房紹英侯重文邵華榮程艷玲
食品與藥品 2018年4期
關(guān)鍵詞:藥動學(xué)肌注肌肉注射

房紹英,馬 河,侯重文,邵華榮,程艷玲

(山東省藥學(xué)科學(xué)院,山東 濟南 250101)

人參(Ginseng radix et rhizoma)為五加科多年生草本植物人參(Panax ginsengC. A. Mey.)的根,是我國傳統(tǒng)名貴中藥。人參多糖為人參的主要活性成分之一,具有免疫調(diào)節(jié)[1]、降血糖[2]、抗氧化[3]等多方面藥理作用。近年對人參多糖的研究熱點主要涉及分離純化、功能活性評價和作用機制探討[4-7],藥動學(xué)特征則未見報道。目前國內(nèi)僅有肌肉注射的人參多糖注射液上市,其他給藥途徑劑型有待開發(fā)。本課題組前期采用生曬參提取獲得人參多糖,經(jīng)指紋圖譜鑒定其組成包括半乳糖醛酸、葡萄糖(S)、半乳糖、阿拉伯糖及鼠李糖;多糖重均分子量為2705,分子量分散系數(shù)1.69。本試驗研究人參多糖靜脈注射、肌肉注射及口服3種給藥途徑在SD大鼠體內(nèi)的藥動學(xué)特征,計算肌注途徑和口服途徑的生物利用度,為后期人參多糖的臨床應(yīng)用開發(fā)提供參考依據(jù)。

1 儀器與材料

1.1 儀器

LC-20AT高效液相色譜儀(日本島津公司);AUW-120D型電子分析天平(日本島津公司);MS3型漩渦混懸器(德國IKA公司);Thermo Sorvall 21R高速微量冷凍離心機(美國賽默飛世爾科技公司);Milli-Q Advantage A10超純水儀(德國默克公司);ACS-JJ-Tiger電子計價秤(瑞士梅特勒-托利多公司)。

1.2 藥品與試劑

人參多糖(山東省藥學(xué)科學(xué)院,批號:20160501,含量:94.27 %);二水合磷酸二氫鈉(國藥集團,批號:20160106);高氯酸(天津鑫源化工,批號:20150905,含量:70.0 %~72.0 %);肝素鈉注射液(山東魯抗辰欣藥業(yè)公司,批號:1609286421);水為超純水。

1.3 實驗動物及飼養(yǎng)環(huán)境

SPF級SD大鼠18只,雌雄各半,體重范圍230~260 g。由濟南朋悅實驗動物繁育有限公司提供,實驗動物生產(chǎn)許可證號:SCXK(魯)2014 0007。飼養(yǎng)條件:SD大鼠于SPF級環(huán)境飼養(yǎng),每籠5只。室溫19~26 ℃,濕度40 %~70 %,日溫差≤4 ℃,換氣次數(shù)8~10次/h,晝夜明暗交替時間12 h/12 h,實驗動物使用許可證號:SYXK(魯)2014 0008。

2 方法

2.1 動物給藥與樣品采集

18只SD大鼠按體重隨機分成3組,每組6只,雌雄各半。禁食約12 h后,分別靜脈注射、肌肉注射、口服給予600 mg/kg人參多糖(以半乳糖醛酸計)。各組藥前采血,靜脈注射組于藥后0.083,0.25,0.5,1,2,4,6,8 h,肌肉注射組于藥后0.25,0.5,1,2,4,6,8 h,口服組于灌胃給藥后0.5,1,2,4,6,8 h采血約0.5 ml,置于肝素鈉抗凝的離心管中經(jīng)4 ℃,12 000 r/min離心10 min,制備血漿,-20 ℃冷凍保存待測。

2.2 生物樣本測試

色譜柱:TSK-GEL G3000PWXL(7.8 mm×300 mm,5 μm),流動相:0.05 mol/L NaH2PO4,流速:0.6 ml/min,柱溫:35 ℃,檢測器:RID-20AT示差折光檢測器,檢測池溫度:40 ℃,進樣體積:20 μl。樣本處理:取血漿樣品100 μl置于1.5 ml離心管中,加入2 mol/L高氯酸溶液50 μl,渦旋2 min后11 000 r/min離心10 min,取上清,進樣檢測。

2.3 統(tǒng)計學(xué)處理

根據(jù)各組別人參多糖血藥濃度-時間數(shù)據(jù),利用DAS3.2.6藥動學(xué)程序計算半衰期(t1/2)、達峰時間(Tmax)、表觀分布容積(Vd)、清除率(CL)、達峰濃度(Cmax)、平均滯留時間(MRT)、藥時曲線下面積(AUC0-t、AUC0-∞)等,并利用SPSS16.0對主要藥動學(xué)參數(shù)進行統(tǒng)計學(xué)分析。與靜脈注射AUC0-t比較,計算肌肉注射和口服給藥途徑的絕對生物利用度。

3 結(jié)果

3.1 樣本測試方法考察

大鼠空白血漿色譜圖及實際測試血漿樣本色譜圖見圖1。由表1可見,在該分析條件下空白SD大鼠血漿中的內(nèi)源性物質(zhì)不干擾人參多糖的測定。人參多糖的保留時間約11.8 min。

圖1 大鼠空白血漿色譜圖(A)及大鼠靜脈注射給予人參多糖注射液后血漿樣本色譜圖(B)

表1 靜注組、肌注組人參多糖藥動學(xué)參數(shù)

該方法在25~800 mg/L范圍內(nèi)線性良好(Y=211.850X-4193.44,r2=0.9929),定量下限為25 mg/L(5平行樣本分析,RSD為3.84 %,RE為14.75 %)。在高、中、低3個濃度下,回收率分別為78.35 %±7.85 %,84.25 %±5.23 %,80.86 %±5.4 %,RSD小于10.02 %。在高、中、低3個濃度下考察3批次精密度與準確度,人參多糖在每一濃度水平的批內(nèi)精密度(RSD)小于3.95 %,相對誤差(RE)為-13.39 %~5.00 %;批間精密度(RSD)小于8.24 %,相對誤差(RE)為-11.62 %~-2.30 %。在低、高2個濃度下,人參多糖血漿樣本3次凍融穩(wěn)定性RE分別為102.12 %±6.76 %,90 %±5.31 %,RSD小于6.62 %;-2 0 ℃凍存7 d穩(wěn)定性R E分別為9 8.4 6 %±9.67 %,105.46 %±4.92 %,RSD小于9.82 %。

3.2 人參多糖藥動學(xué)研究結(jié)果

靜注組、肌注組SD大鼠分別靜脈注射、肌肉注射600 mg/kg人參多糖后,繪制平均血藥濃度-時間曲線圖(見圖2);人參多糖主要藥動學(xué)參數(shù)見表1??诜MSD大鼠灌胃給予600 mg/kg人參多糖后,血藥濃度均低于檢測限,未被檢出。靜注組與肌注組相比,t1/2z差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);Vd、MRT和CL均低于肌注組(P<0.01);同時Cmax和AUC0-8h均明顯高于肌注組(P<0.01)。根據(jù)肌注組及靜注組AUC0-8h平均值計算肌肉注射方式的絕對生物利用度為27.46 %。

圖2 靜注組(A)及肌注組(B)SD大鼠分別給予600 mg/kg人參多糖注射液后平均血藥濃度-時間曲線(n=6)

4 討論

藥動學(xué)研究的前提是建立靈敏可靠的藥物分析方法。多糖類藥物結(jié)構(gòu)的特殊性及生物體內(nèi)大量內(nèi)源性相似多糖的干擾,使該類藥物的分析方法不同于傳統(tǒng)的化學(xué)藥品,檢測難度大、需解決的問題多。目前用于多糖類藥物的血藥濃度檢測方法主要有以下幾種:同位素標記示蹤法[8]、生物檢定法[9]、色譜法[10]、熒光標記[11]等。多糖類藥物無紫外吸收基團和熒光發(fā)射基團,質(zhì)譜法也不適用于多糖的檢測。本研究采用分子排阻色譜法聯(lián)合示差折光檢測器,建立了有效可靠的分析方法,該方法樣本處理簡單,重復(fù)性良好,準確率高,為后續(xù)人參多糖藥動學(xué)研究提供良好支持,但此分析方法仍有其應(yīng)用的局限性,由于示差折光檢測器檢測靈敏度低,此方法的檢測限尚不能滿足口服途徑人參多糖在大鼠體內(nèi)的藥動學(xué)研究。

分子排阻色譜法的分離原理為凝膠色譜柱的分子篩機制,血漿樣本存在大量內(nèi)源性多糖,因此色譜分離容易存在內(nèi)源性干擾,樣本處理方法是影響色譜分離效果的重要因素。本試驗分析方法建立時,對人參多糖血漿樣本的處理方法進行了反復(fù)摸索,嘗試了不同濃度硫酸銨、乙酸鋅和高氯酸等多種蛋白質(zhì)沉淀方法,最終選擇2 mol/L高氯酸溶液渦旋沉淀去除蛋白質(zhì),此方法人參多糖回收率在78 %以上,且色譜峰無內(nèi)源性干擾。

本試驗初期參考人參多糖注射液臨床使用劑量,根據(jù)體表面積折算為大鼠給藥劑量,但給藥后血藥濃度均無法檢出,故提高多倍劑量并參考毒理試驗劑量,最終擬定給藥劑量為600 mg/kg。該劑量下,靜脈注射組峰濃度可達4000 mg/L以上,而口服組峰濃度低于25 mg/L,不足靜注組的0.625 %,其原因可能由于人參多糖原型難吸收或在消化道內(nèi)被降解,使藥物濃度低于本方法的檢測限而無法檢出。比較肌肉注射組和靜脈注射組藥動學(xué)參數(shù),t1/2無明顯差異,靜注途徑Vd、MRT和CL低于肌注組,Cmax和AUC0-8h均明顯高于肌注組。結(jié)果顯示,肌肉注射人參多糖在體內(nèi)分布更廣,存留時間更長,但肌肉注射的生物利用度較低,吸收進入體循環(huán)的藥物相對量僅為27.46 %,且本課題組相關(guān)藥效學(xué)試驗發(fā)現(xiàn),人參多糖肌肉注射途徑存在明顯肌肉刺激性。本研究提示人參多糖開發(fā)為靜脈注射劑型具有優(yōu)越性。

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