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新疆藥桑葉醇提物3種活性初步研究

2019-08-27 07:44李炳欽楊玲汪河濱陳龍阿力騰阿依
食品研究與開發(fā) 2019年16期
關鍵詞:正丁醇糖苷酶乙酸乙酯

李炳欽,楊玲,*,汪河濱,陳龍,阿力騰阿依

(1.塔里木大學生命科學學院,塔里木盆地生物資源保護利用重點實驗室,新疆 阿拉爾 843300;2.北京化工大學生命科學與技術學院,北京市生物加工過程重點實驗室,北京 100029)

新疆藥桑在植物分類學上屬???,桑屬,黑桑種(Morus nigra L.)[1]。原產(chǎn)于伊朗,十六世紀引入新疆栽培。由于新疆光熱資源豐富,環(huán)境惡劣,造成其成為及其罕見的22 倍體桑品種資源[2-3]?,F(xiàn)廣泛栽培于和田、阿克蘇和喀什地區(qū)。藥桑作為維吾爾族傳統(tǒng)藥材,具有多種功效,廣泛用于消炎、補血和鎮(zhèn)靜[4]?,F(xiàn)代藥理學研究發(fā)現(xiàn)藥桑中成分具有抗氧化、降血糖、降血脂、抗腫瘤等多種藥理活性[5-7],引起國內(nèi)外學者的廣泛關注。

藥桑葉作為藥桑產(chǎn)物,每年產(chǎn)量巨大。有研究表明[6-8],藥桑葉中營養(yǎng)物質和活性成分含量豐富,相比桑葉(Morus alba L.),藥桑葉在總多糖、總黃酮和總生物堿等含量上優(yōu)于桑葉,可利用價值較高。藥桑中總黃酮、總生物堿在抗氧化、降血糖等方面發(fā)揮著重要作用[6]。然而目前在對藥桑葉生物活性的研究不夠全面深入徹底,對藥桑葉綜合利用開發(fā)缺少理論支持。因此,本試驗通過研究藥桑葉醇提物各萃取部位生物活性,為后續(xù)以生物活性為引導進行化合物分離提供活性依據(jù),最終為綜合開發(fā)利用藥桑葉提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

藥桑葉:2016年7月采自新疆和田地區(qū),經(jīng)塔里木大學邱愛軍副教授鑒定為藥桑(Morus nigra L.)植物葉片。藥桑葉片陰干,碾碎備用。

1,1-二苯基-2-芳基肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)自由基、4-硝基苯基-ɑ-D 吡喃葡萄糖苷(4-Nitrophenyl β-D-glucopyranoside,PNPG)、α-葡萄糖苷酶(40 U/mg~80 U/mg):美國 Sigma 公司;噻唑藍(thiazoyl blue tetrazolium bromide ,MTT)溶液:賽諾普生物;DMSO 完全培養(yǎng)基:上??捣€(wěn)生物科技有限公司;胎牛血清:上海哈靈生物科技有限公司;磷酸緩沖鹽溶液(phosphate buffer saline,PBS)、RMPI-1640 培養(yǎng)基:Gibco 公司;阿卡波糖片:拜耳醫(yī)藥有限公司;維生素C:北京博鰲托大科技有限公司;石油醚、乙酸乙酯、正丁醇和95%乙醇等均為分析純。

1.2 儀器與設備

ER-5205 旋轉蒸發(fā)器:上海亞榮生化廠;S54 紫外可見分光光度計:上海棱光技術有限公司;CP224C 電子分析天平:奧豪斯儀器(上海)有限公司;Infinite M200 Pro 多功能酶標儀:北京世貿(mào)遠東科學儀器有限公司;TDL-5-A 離心機:上海安亭科學儀器廠;DZF-6050 真空干燥箱:上海博迅實業(yè)有限公司。

1.3 方法

1.3.1 生物活性成分提取

取5 kg 陰干藥桑葉,碾碎,以80%乙醇浸泡72 h,過濾,重復3 次,收集濾液,減壓濃縮得到1.1 kg 流浸膏。將流浸膏分散至5 L 蒸餾水中,依次用石油醚、乙酸乙酯、正丁醇按照體積比(1 ∶1)進行萃取,重復3次,并濃縮至干,分別得到石油醚相、乙酸乙酯相、正丁醇相和水相。

1.3.2 抗腫瘤活性

采用MTT 測試法[9-10],測定樣品對Hela 腫瘤細胞的抑制活性。

1.3.2.1 細胞培養(yǎng)

Hela 細胞株,用含10%胎牛血清RPIM-1640 培養(yǎng)基培養(yǎng),選取對數(shù)生長期細胞進行試驗。

1.3.2.2 試驗分組

試驗組:將一定量乙酸乙酯相,正丁醇相和水相樣品加入到RPIM-1640 培養(yǎng)液,配置成0.005、0.010、0.050 mg/mL 和0.100 mg/mL 4 個濃度,取一定量樣品溶液作用于HeLa 細胞,每組設4 個復孔。

陰性對照組:取等量RPIM-1640 培養(yǎng)液,作用于HeLa 細胞,設 4 個復孔。

空白對照組:取等量無菌水,作用于Hela 細胞,設4 個復孔。

1.3.2.3 MTT 法檢測

取對數(shù)生長期細胞,調整細胞濃度為1.5×104/mL,接種于96 孔板,每孔加入細胞懸液0.2 mL。培養(yǎng)16 h后,吸出培養(yǎng)液,加入樣品溶液0.2 mL。4 h 后每孔加入5 g/L MTT 溶液 10μL,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,每孔加入二甲基亞砜 100 μL,37 ℃振蕩 5 min,用酶標儀在 570 nm 波長處測定其OD 值,按下述公式計算細胞抑制率。

1.3.3 抗氧化活性

通過測定DPPH 自由基清除能力[11-12],研究各萃取相體外抗氧化活性。

1.3.3.1 DPPH 自由基溶液的配置

準確稱取DPPH 0.019 7 g,加入至250 mL 的容量瓶中,用體積分數(shù)為95%的乙醇定容,所得DPPH 溶液濃度即為0.2 mmol/L,靜止30 min 后,避光保存。

1.3.3.2 樣品液的配置

陽性組:取維生素C 適量,用體積分數(shù)為95%的乙醇配置濃度分別為 0.4、0.8、1.2、1.6、2.0 mg/mL 的樣品溶液。

試驗組:取石油醚相,乙酸乙酯相,正丁醇相,水相適量,用 95%的乙醇配置濃度分別為 0.4、0.8、1.2、1.6、2.0 mg/mL 的樣品溶液。

1.3.3.3 測定方法

取樣品溶液和DPPH 自由基溶液各2.0 mL 加入到試管內(nèi),混勻后,在恒溫(28 ℃)條件下避光反應30 min,空白對照為體積分數(shù)為95%的乙醇,在517 nm處測定吸光度。每個樣品做3 次平行樣。DPPH 自由基清除率計算公式如下:

式中A1為樣品溶液與DPPH 溶液反應后的吸光度值;A2為樣品溶液與無水乙醇代替DPPH 溶液反應后的吸光度值;A0為無水乙醇與DPPH 反應后的吸光度值。

1.3.4 降血糖活性

通過測定體外α-葡萄糖苷酶抑制,評價各萃取相的降血糖活性。參照王賀等的測定方法[13-14],測定以對硝基苯-α-D 吡喃葡萄糖苷(PNPG)為底物的α-葡萄糖苷酶活性。

1.3.4.1 溶液的配制

底物溶液配制:準確稱取PNPG 0.038 7g,用PBS緩沖液溶解并定容至100 mL,得2.5 mmol/L 的底物溶液。

α-葡萄糖苷酶溶液配制:準確量取0.1 mL α-葡萄糖苷酶溶液加至PBS 中,配制成0.72 U/mL 的溶液,避光保存。

樣品溶液配制:取適量樣品溶于一定量的PBS,配制成 0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL 的樣品溶液。

阿卡波糖溶液配制:取適量阿卡波糖片劑溶于PBS,配制成 0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL 溶液。

1.3.4.2 反應體系

取 80 μL 的磷酸緩沖液,加入 16 μL 的待測樣品,再加入16 μL 的α-葡萄糖苷酶,搖勻后置于37 ℃的恒溫水浴鍋中,反應20 min,然后再加入16 μL 的底物,反應終止后加入 100 μL 的 Na2CO3終止液(c=1 mol/L)。在400 nm 處測定在酶作用下的釋放出的對硝基苯的吸光度值,計算抑制率。酶抑制試驗重復3 次。具體反應見表1,計算公式如下:

式中:AⅠ為空白組吸光度值;AⅡ為試驗組吸光度值;AⅢ為背景組吸光度值。

表1 α-葡萄糖苷酶活性抑制體系Table 1 α-glucosidase activity inhibition system μL

2 結果與分析

2.1 抗腫瘤活性

各萃取相對Hela 細胞的抑制率見表2。

表2 各萃取相對Hela 細胞的抑制率Table 2 Inhibition of each part against Hela tumor cells

由表2數(shù)據(jù)可知,乙酸乙酯相和正丁醇相在樣品濃度為0.005 mg/mL 時表現(xiàn)出對Hela 腫瘤細胞有一定的抑制作用。隨著樣品濃度增加,抑制效果也更加明顯。當濃度達到0.010 mg/mL 時,乙酸乙酯相抑制率達到93.75%,正丁醇相抑制率達到89.41%,抑制效果顯著。當乙酸乙酯相的濃度達到0.050 mg/mL 時,抑制率達到96.54%,這與空白對照組的抑制率接近。說明乙酸乙酯相中存在具有抑制Hela 腫瘤細胞增殖的優(yōu)良化合物,從而說明乙酸乙酯相具有較高的開發(fā)利用價值。

水相數(shù)據(jù)表明,在濃度達到0.005 mg/mL 時,存在微弱抑制效果,但是當濃度達到0.010 mg/mL 時,抑制作用減弱,當達到0.050 mg/mL 時,抑制率達到-15.56%,說明水相中可能存在促進Hela 腫瘤細胞增殖的化學物質,這與王珊珊等[15]的研究發(fā)現(xiàn)有些藥物可在一定程度上促進腫瘤細胞增殖這一現(xiàn)象存在一定程度上吻合。

此外,由于石油醚相在RPIM-1640 培養(yǎng)液中溶解性較差,未對其進行抗Hela 腫瘤細胞的活性試驗

2.2 抗氧化活性

各相對DPPH 自由基的清除能力見圖1。

圖1 各相對DPPH 自由基的清除能力Fig.1 Scavenging effects of each part on DPPH

由圖1可知,對各萃取相清除DPPH 自由基能力進行比較,乙酸乙酯相清除DPPH 自由基能力較強。在質量濃度0.4 mg/mL~2.0 mg/mL 范圍內(nèi),各相對DPPH自由基的清除能力隨濃度增加而增強。乙酸乙酯相和正丁醇相在低濃度時表現(xiàn)出良好的DPPH 自由基清除能力,然后隨濃度增加清除率趨于平緩。石油醚相和水相對DPPH 自由基的清除能力相當。石油醚相和水相在0.4 mg/mL 時DPPH 自由基清除能力表現(xiàn)不明顯,但隨著濃度增加,清除自由基能力也增強,當二者濃度超過1.6 mg/mL 時,對DPPH 自由基的清除率趨于平緩。本試驗的陽性對照組VC表現(xiàn)出強抗氧化能力,對DPPH 自由基的清除率在試驗濃度范圍內(nèi)超過93%,為試驗提供良好的對比,從而能夠判斷乙酸乙酯相較其他萃取相具有較強的抗氧化能力。

2.3 降血糖活性

各萃取相對α-葡萄糖苷酶的抑制作用見圖2。

圖2 各萃取相對α-葡萄糖苷酶的抑制作用Fig.2 Inhibition of α-glucosidase by each part

由圖2數(shù)據(jù)可知,藥桑葉乙醇提取物各萃取相對α-葡萄糖苷酶的抑制活性成劑量依賴性。抑制活性表現(xiàn)為同等濃度下,乙酸乙酯相體外抑制活性最強,正丁醇相優(yōu)于石油醚相和水相。石油醚相和水相對α-葡萄糖苷酶體外抑制活性接近。對所測各萃取相數(shù)據(jù)進行線性擬合,得阿卡波糖、乙酸乙酯相和正丁醇相對α-葡萄糖苷酶的半抑制濃度,見表3。石油醚相和水相在試驗濃度范圍內(nèi)對酶的抑制活性低于50%,對其二者的半抑制濃度不作分析。

表3 對α-葡萄糖苷酶的半抑制濃度Table 3 Half inhibiting concentration on α-glucosidase

3 結論

通過對藥桑葉乙醇提取物各萃取相進行3 種活性試驗,初步發(fā)現(xiàn),乙酸乙酯相在3 種活性試驗中均表現(xiàn)出較好的活性。說明乙酸乙酯相中具有潛在體外生物活性良好、含量相對較高的活性化學物質。

抗腫瘤試驗的結果表明乙酸乙酯相中具有細胞毒性較好的化學物質。楊燕[16]通過對桑葉的研究發(fā)現(xiàn)桑葉乙酸乙酯相具有抗腫瘤活性,桑和藥桑同屬??粕伲释茰y二者葉中可能存在類似抗腫瘤結構物質。同時,值得注意的是水相中可能存在促進Hela 腫瘤細胞增殖的物質。

藥桑葉乙酸乙酯相和正丁醇相抗氧化活性較強,說明二者當中存在一些還原性較強的化學物質。張貴會等[17-19]對藥桑葉中存在的黃酮類物質進行研究,并從中分離出若干黃酮及其苷類化合物,并對其抗氧化活性進行研究發(fā)現(xiàn)抗氧化活性良好。因此推測,藥桑葉乙酸乙酯相和正丁醇可能相富含大量黃酮類化合物,此外,有研究發(fā)現(xiàn)[16,20],桑葉中含有茋類等一些具有抗氧化活性的化合物。桑葉(Morus alba L.)和藥桑同屬??粕伲M而推測藥桑葉中亦可能含有茋類化合物。

根據(jù)試驗結果,選定乙酸乙酯相進行化合物分離純化鑒定,并進行后續(xù)活性試驗,以期挖掘具有生物活性良好,具有開發(fā)潛力的前體化合物。

綜上所述,藥桑作為我國唯一的黑桑種資源[21],在維吾爾族傳統(tǒng)醫(yī)藥中發(fā)揮巨大作用。藥桑桑葉產(chǎn)量大,可開發(fā)利用價值高。在上述生物活性研究基礎上,對藥桑葉進一步深入研究,進而為綜合開發(fā)利用藥桑葉資源提了供理論依據(jù)和試驗基礎。

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