張登沈 梁貴友 劉達(dá)興 王峰 潘斯斯 張長江

摘 要 目的：探討脂聯(lián)素（APN）對體外循環(huán)（CPB）心肌胰島素抵抗（IR）模型犬心肌腺苷酸活化蛋白激酶（AMPK）表達(dá)的影響。方法：將24只犬隨機(jī)分為對照組、模型組、APN組（36 μg/kg）、AMPK抑制劑組（APN 36 μg/kg+AMPK抑制劑復(fù)合制劑C 0.5 mg/kg），每組6只。所有犬行CPB術(shù)，除對照組不給藥外，其余各組犬建立CPB心肌IR模型，并于主動脈夾閉后灌注不含藥或含相應(yīng)藥物的St.Thomas心臟停搏液。分別在CPB轉(zhuǎn)流前和心缺血60 min后再灌注15、90 min收集冠狀靜脈竇血、頸動脈血，取左心室心尖部組織，測定并計(jì)算心肌葡萄糖攝取率和胰島素抵抗指數(shù)（IRI），監(jiān)測心肌損傷指標(biāo)[肌鈣蛋白T（cTnT）濃度]和心功能指標(biāo)[左室收縮壓（LVSP）、左室內(nèi)壓最大上升速率（+dp/dtmax）]變化，檢測磷酸化AMPK（p-AMPK）水平。結(jié)果：轉(zhuǎn)流前各組犬之間上述指標(biāo)差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。與對照組比較，模型組犬再灌注15、90 min的心肌葡萄糖攝取率、LVSP、+dp/dtmax和p-AMPK水平均明顯降低（P<0.05），IRI和cTnT濃度均明顯升高（P<0.05）。與模型組比較，APN組和AMPK抑制劑組犬再灌注15、90 min的心肌葡萄糖攝取率、LVSP、+dp/dtmax和p-AMPK水平均明顯升高（P<0.05），IRI和cTnT濃度均明顯降低（P<0.05），且APN組效果強(qiáng)于AMPK抑制劑組（P<0.05）。結(jié)論：APN可促進(jìn)心肌對葡萄糖的攝取及代謝以助心功能恢復(fù)，其可能是通過增強(qiáng)AMPK活性來發(fā)揮效應(yīng)的。

關(guān)鍵詞 脂聯(lián)素；體外循環(huán)；心肌胰島素抵抗；犬；腺苷酸活化蛋白激酶

Effects of Adiponectin on the Expression of Myocardial AMPK in Myocardial Insulin Resistance Model Dogs during Cardiopulmonary Bypass

ZHANG Dengshen，LIANG Guiyou，LIU Daxing，WANG Feng，PAN Sisi，ZHANG Changjiang（Dept. of Cardiovascular Surgery， the Affiliated Hospital of Zunyi Medical University， Guizhou Zunyi 563000， China）

ABSTRACT OBJECTIVE： To investigate the effects of adiponectin （APN） on the expression of myocardial AMPK in myocardial insulin resistance （IR） model dogs during cardiopulmonary bypass （CPB）. METHODS： Totally 24 dogs were randomly divided into control group， model group， APN group （36 μg/kg）， AMPK inhibition group （APN 36 μg/kg+AMPK inhibitor compound C 0.5 mg/kg）， with 6 dogs in each group. All dogs underwent CPB； except for control group without medicine， CPB myocardial IR model were established in other groups， and perfused with St.Thomas cardiac cardioplegia lipid no medicine or containing relevant drugs after main artery block. Coronary sinus blood and carotid artery blood samples were collected before bypass and after 15， 90 min reperfusion following 60 min myocardial ischemia. Left ventricular apical tissue was taken， and the uptake rate of myocardial glucose and insulin resistance index （IRI） were determined and calculated； the changes of myocardial injury indexes （cTnT concentration） and cardiac function indexes （LVSP， +dp/dtmax） were monitored. The level of p-AMPK was detected. RESULTS： There was no statistical significance in above indexes of dogs before bypass （P>0.05）. Compared with control group， the rate of myocardial glucose uptake， the levels of LVSP， +dp/dtmax and p-AMPK in model group were decreased significantly after 15， 90 min reperfusion （P<0.05）， and the concentrations of IRI and cTnT were increased significantly （P<0.05）. Compared with model group， the rate of myocardial glucose uptake， LVSP， +dp/dtmax and p-AMPK were increased significantly in APN group and AMPK inhibitor group （P<0.05）， while the concentrations of IRI and cTnT were decreased significantly （P<0.05）； moreover， the effect of APN group was better than that of AMPK inhibitor group （P<0.05）. CONCLUSIONS： APN can promote myocardial glucose uptake and metabolism， and contribute the recovery of cardiac function， the mechanism of which may be associated with increasing the activity of AMPK.

KEYWORDS Adiponectin； Cardiopulmonary bypass； Myocardial insulin resistance； Dog； AMPK

筆者前期研究發(fā)現(xiàn)，心肌胰島素抵抗（Insulin resistance，IR）是體外循環(huán)（Cardiopulmonary bypass，CPB，又名心肺轉(zhuǎn)流術(shù)）心肌缺血再灌注損傷（MIRI）的另一個(gè)重要機(jī)制[1-3]。心肌也是胰島素的靶組織，在CPB缺血再灌注過程中，不僅存在明顯的機(jī)體IR，同時(shí)也存在嚴(yán)重的心肌IR，因心肌IR的產(chǎn)生導(dǎo)致缺血再灌注心肌代謝紊亂，這可能是心功能障礙的病理生理基礎(chǔ)[4]，因此探尋心肌IR的干預(yù)靶點(diǎn)可為臨床防治MIRI提供新的途徑。

脂聯(lián)素（Adiponectin，APN）是脂肪組織分泌的一種活性多肽因子，具有與胰島素相似的作用，其結(jié)構(gòu)類似于補(bǔ)體因子C1q，故也被稱為30 kDa的脂肪細(xì)胞補(bǔ)體相關(guān)蛋白。近年來研究發(fā)現(xiàn)，APN也可以由脂肪細(xì)胞外的其他細(xì)胞產(chǎn)生及表達(dá)，如心肌、骨骼肌細(xì)胞及肝臟[5-6]。目前大量研究提示，內(nèi)源性刺激APN生成，或外源性補(bǔ)充APN，均可產(chǎn)生多種生物學(xué)效應(yīng)，如胰島素增敏、免疫調(diào)節(jié)、抗炎、抗心肌細(xì)胞凋亡等作用，APN有望成為一種具有心肌保護(hù)作用的新型藥物[7-9]。APN可增加靶細(xì)胞對胰島素的敏感性，提高細(xì)胞對葡萄糖的利用而發(fā)揮降血糖的療效，其發(fā)揮上述藥效可能是通過激活腺苷酸活化蛋白激酶（AMP-activated protein kinase，AMPK）而實(shí)現(xiàn)[10-11]。故本研究建立了犬CPB 心肌IR模型[1-4]，予以心臟停搏液中加入APN，檢測了心肌AMPK活性變化，并通過特異性抑制AMPK活性，觀察了AMPK活性對心肌胰島素敏感性、心肌細(xì)胞葡萄糖攝取與心臟功能的影響，探討APN在CPB心肌保護(hù)作用中的可能機(jī)制。

1 材料

1.1 儀器

WEL1000型人工心肺機(jī)（天津江康醫(yī)用設(shè)備有限公司）；RY-II型呼吸機(jī)（江蘇凱泰設(shè)備有限公司）；MD3000型生物信號系統(tǒng)（北京鼠多寶生物科技有限公司）；TXT31型熱交換水箱（江蘇凱泰醫(yī)療設(shè)備有限公司）；AU2700型及5400型全自動生化分析儀（日本Olympus公司）；GC-2010型γ型放射免疫計(jì)數(shù)器（中國中供光電科大創(chuàng)新公司）。

1.2 藥品與試劑

人源重組APN（南京金瑞絲生物公司，批號：Q15848，純度：95%）；AMPK抑制劑復(fù)合制劑C（美國Selleck公司，批號：S784001，純度：99.8%）；戊巴比妥鈉對照品（美國Sigma 公司，批號：69020100，純度：99.3%）；兔源蘇氨酸（Thr）172位點(diǎn)磷酸化AMPK（p-AMPK）多克隆抗體（一抗，武漢博士德工程有限公司，批號：BM2103）；鼠源GTVsionTMⅢ抗鼠/兔通用型試劑盒（二抗，上?；蚩萍加邢薰?，批號：GK500705）；碘[I125]胰島素放射免疫分析藥盒（北方生物技術(shù)研究所，批號：121020）。

1.3 動物

24只實(shí)驗(yàn)犬，8～12月齡，♀♂不限，體質(zhì)量（10.12± 1.07） kg，體表面積（0.58±0.06） m2，由遵義醫(yī)學(xué)院動物實(shí)驗(yàn)中心提供，使用許可證號為SYXK（黔）2011-003。實(shí)驗(yàn)所涉及操作及動物處理符合動物實(shí)驗(yàn)倫理審核標(biāo)準(zhǔn)，通過遵義醫(yī)學(xué)院動物倫理委員會允許。

2 方法

2.1 建模

按課題組前期研究方法氣管插管機(jī)械通氣（潮氣量12～15 mL/kg，頻率12～16 次/min），左股靜脈切開建立輸液通道，左頸總動脈、靜脈插管建立CPB，通過心臟灌注St.Thomas心臟停搏液，阻斷主動脈60 min及開放主動脈恢復(fù)心臟血流灌注，復(fù)制CPB心肌IR模型[1-4]，術(shù)中持續(xù)監(jiān)測平均動脈壓（Map）（60～80 mmHg，1 mmHg=133.322 Pa）、肛溫、出入量，維持電解質(zhì)及酸堿平衡，左心室經(jīng)能量轉(zhuǎn)換器連接MD3000型生物信號系統(tǒng)。

2.2 分組與給藥

24只犬通過隨機(jī)數(shù)字法分為對照組、模型組、APN組和AMPK抑制劑組，每組6只。4組犬體質(zhì)量及體表面積等資料差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。所有犬行CPB術(shù)，除對照組不建IR模型和不給藥外，其余各組犬復(fù)制CPB心肌IR模型，于主動脈阻斷時(shí)即刻灌注1次St.Thomas停搏液150 mL，模型組犬直接灌注St.Thomas停搏液，APN組的St.Thomas停搏液中按犬體質(zhì)量加入36 μg/kg的APN[12]，AMPK抑制劑組的St.Thomas停搏液中按犬體質(zhì)量加入36 μg/kg的APN和0.5 mg/kg的復(fù)合制劑C[13-14]。

2.3 標(biāo)本采集

均于CPB轉(zhuǎn)流前和開放主動脈后15、90 min 這3個(gè)時(shí)間點(diǎn)，取冠狀靜脈竇血4 mL（“U”型插管采集[15]）， 3 000 r/min離心5 min，分離血清，用于檢測葡萄糖濃度和胰島素濃度；上述每個(gè)時(shí)間點(diǎn)另取頸動脈血2 mL， 3 000 r/min離心5 min，分離血清，用于檢測葡萄糖濃度；上述每個(gè)時(shí)間點(diǎn)用空心細(xì)針穿刺采集左心室心尖部心肌組織，采集的心肌予以生理鹽水沖洗2次，10%甲醛固定，72 h內(nèi)石蠟固定，4 ℃保存，用于免疫組化檢測p- AMPK水平。

2.4 心肌葡萄糖攝取率的檢測

使用全自動生化分析儀，采用氧化酶法檢測每個(gè)時(shí)間點(diǎn)冠狀靜脈竇血清和動脈血清中葡萄糖濃度，計(jì)算心肌葡萄糖攝取率[心肌葡萄糖攝取率（%）=（動脈血葡萄糖濃度-冠狀靜脈竇血葡萄糖濃度）/動脈血葡萄糖濃度×100%][16]。

2.5 胰島素抵抗指數(shù)的檢測

按碘[I125]胰島素放射免疫分析藥盒說明書操作，采用放射免疫分析法，使用自動放射免疫計(jì)數(shù)器檢測冠狀靜脈竇血清中胰島素濃度，計(jì)算胰島素抵抗指數(shù)（Insulin resistance index，IRI），IRI=FIns/（22.5e-lnFBG），式中FIns 為冠狀靜脈竇血清胰島素濃度，F(xiàn)BG為冠狀靜脈竇血清葡萄糖濃度，常數(shù)e≈2.718[17]。

2.6 心肌損傷指標(biāo)和心功能指標(biāo)的監(jiān)測

使用AU5400全自動生化分析儀采用比色法檢測每個(gè)時(shí)間點(diǎn)的冠狀靜脈竇血清中肌鈣蛋白T（cTnT）濃度，用于評價(jià)心肌損傷情況。通過犬左心室接能量轉(zhuǎn)換器連接MD3000型生物信號系統(tǒng)予左室內(nèi)壓波形自動分析，測定每個(gè)時(shí)間點(diǎn)心臟左室收縮壓（LVSP）、左室內(nèi)壓最大上升速率（+dp/dtmax），用于監(jiān)測心功能。

2.7 心肌p-AMPK水平的檢測

取心尖部心肌組織，用10%甲醛固定，72 h內(nèi)常規(guī)制作石蠟切片，石蠟切片4 ℃保存。常規(guī)脫蠟：60 ℃恒溫箱烘烤20 min，放入二甲苯Ⅰ15 min，二甲苯Ⅱ15 min。常規(guī)梯度乙醇水化，抗原6 min×2次修復(fù)，6%血清封閉60 min；滴加一抗（1 ∶ 100）50 μL，4 ℃下保存18 h；滴加二抗50 μL，37 ℃保存1 h；加入二氨基聯(lián)苯胺（DAB，1 ∶ 100）顯色，光鏡下觀察細(xì)胞核及胞漿為黃色、黃褐色為陽性顯色，在顯微鏡下控制染色時(shí)間和程度；水洗，蘇木精染色，再水洗，脫水，透明，封固，37 ℃烘烤30 min，Leica QWin V3圖像系統(tǒng)拍片，應(yīng)用IPP 6.0圖象分析系統(tǒng)分析p-AMPK蛋白的積分光密度（IOD），取平均值作統(tǒng)計(jì)，IOD值越高，說明AMPK磷酸化程度越高。

2.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法

數(shù)據(jù)以x±s表示，統(tǒng)計(jì)處理采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行。采用單因素方差分析不同時(shí)間點(diǎn)的數(shù)據(jù)并進(jìn)行比較，方差齊時(shí)，采用LSD方法檢驗(yàn)；方差不齊時(shí)，采用Games-Howell方法檢驗(yàn)。P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

3 結(jié)果

3.1 心肌葡萄糖攝取率及IRI的變化

轉(zhuǎn)流前各組犬之間心肌葡萄糖攝取率和IRI差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。在心臟再灌注后，與對照組比較，其他3組犬心肌葡萄糖攝取率明顯降低（P<0.05）、IRI明顯升高（P<0.05），其中再灌注15 min時(shí)效果更明顯。與模型組比較，APN組犬再灌注15、90 min時(shí)的心肌葡萄糖攝取率均明顯增加（P<0.05），IRI明顯降低（P<0.05），表明APN可促進(jìn)心肌葡萄糖攝取，減低心肌IR。與APN組比較，AMPK抑制劑組犬再灌注15、90 min時(shí)的心肌葡萄糖攝取率均有降低（P<0.05），IRI明顯升高（P<0.05）。各組犬心肌葡萄糖攝取率和IRI的測定結(jié)果見表1。

3.2 cTnT、LVSP、+dp/dtmax的變化

轉(zhuǎn)流前各組犬之間cTnT濃度、LVSP、+dp/dtmax差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。與對照組比較，其他3組犬再灌注15、90 min時(shí)靜脈竇血請中cTnT濃度明顯升高（P<0.05），LVSP、+dp/dtmax明顯降低（P<0.05）。與模型組比較，APN組犬再灌注15、90 min時(shí)靜脈竇血清中cTnT明顯降低（P<0.05），LVSP、+dp/dtmax明顯升高（P<0.05）。與APN組比較，AMPK抑制劑組犬再灌注后靜脈竇血清中cTnT濃度明顯升高（P<0.05），LVSP、+dp/dtmax明顯降低（P<0.05）。各組犬靜脈竇血漿中cTnT濃度、LVSP、 +dp/dtmax的測定結(jié)果見表2。

3.3 心肌p-AMPK蛋白表達(dá)水平變化

轉(zhuǎn)流前各組犬之間p-AMPK蛋白表達(dá)水平差異均無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義（P>0.05）。與對照組比較，其他3組犬再灌注15、90 min時(shí)心肌中p-AMPK蛋白表達(dá)水平明顯降低（P<0.05）。與模型組比較，APN組犬再灌注15、90 min時(shí)心肌p-AMPK蛋白表達(dá)水平均明顯升高（P<0.05）。與APN組比較，AMPK抑制劑組犬再灌注15、90 min時(shí)心肌p-AMPK蛋白表達(dá)水平明顯降低（P<0.05）。各組犬心肌p-AMPK蛋白表達(dá)水平的測定結(jié)果見表3。

4 討論

IR是細(xì)胞、組織與機(jī)體的一種病理狀態(tài)，因其靶組織對胰島素介導(dǎo)作用的抵抗而成為多種疾?。ㄈ绺哐獕骸⑻悄虿?、冠心病及肥胖等）發(fā)病的共同基礎(chǔ)。在CPB心臟手術(shù)過程中，手術(shù)創(chuàng)傷、低溫低壓、異物材料接觸等刺激因素可導(dǎo)致應(yīng)激激素和介質(zhì)大量釋放入血，機(jī)體與心肌細(xì)胞對胰島素敏感性降低，伴隨機(jī)體IR的同時(shí)，也存在嚴(yán)重的心肌IR，以心肌代謝障礙為主要表現(xiàn)，心肌對能量底物葡萄糖利用減少，而循環(huán)中血漿胰島素、葡萄糖明顯升高，其升高水平與心臟缺血時(shí)間呈正相關(guān)[1-4]。

有研究表明，AMPK是一種非常敏感的蛋白激酶，其α亞基的Thr172位點(diǎn)的AMPKα磷酸化是AMPK活化所必備的條件[18]。AMPK激酶在調(diào)節(jié)肝臟、骨骼肌、脂肪細(xì)胞等胰島素靶組織的葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白（Glut-4）表達(dá)及轉(zhuǎn)位有著重要的作用，AMPK的活化可以增加骨骼肌、肝臟及脂肪細(xì)胞膜Glut-4表達(dá)水平而促進(jìn)葡萄糖攝取及轉(zhuǎn)運(yùn)[19]。筆者在前期實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)，通過增加AMPK表達(dá)及磷酸化，可促進(jìn)心肌葡萄糖轉(zhuǎn)運(yùn)及攝取，改善心肌IR，減輕MIRI[20]。已有臨床研究表明，APN水平降低與心血管疾病密切相關(guān)，冠心病、糖尿病等患者血漿中APN水平明顯低于健康人群[21]。心肌主要通過脂肪酸β氧化與葡萄糖有氧代謝兩條途徑獲取能量，而在缺血再灌注早期，促進(jìn)心肌葡萄糖攝取及氧化可緩解損傷，因?yàn)橹舅嵫趸难鹾拿黠@高于葡萄糖代謝[22]。心肌損傷后溶酶體破裂溶解細(xì)胞膜，心肌酶滲漏至外周血，可作為心肌損害標(biāo)志物，其中cTnT敏感性及特異性均較高。由本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，心臟缺血再灌注后15 min，伴隨心肌對葡萄糖攝取的減少，冠狀靜脈竇cTnT持續(xù)升高，因?yàn)閏TnT半衰期長，累積至再灌注90 min仍未減少，與此相對應(yīng)，心臟LVSP、+dp/dtmax顯著下降，提示CPB心肌及心功能損害嚴(yán)重，通過補(bǔ)充APN，AMPK表達(dá)及磷酸化增加，心肌葡萄糖攝取率增加，緩解了心肌損傷；而特異性抑制AMPK活性，APN的上述功能也受到了抑制。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果提示，APN可增加AMPK活性，增加CPB心肌胰島素敏感性，促進(jìn)心肌對葡萄糖的攝取，減輕MIRI。

參考文獻(xiàn)

[ 1 ] LIANG GY，WU HS，LI J，et al. Role of insulin receptors in myocardial ischemia-reperfusion injury during cardiopulmonary bypass[J]. Acta Cardiol，2011，66（3）：323–331.

[ 2 ] WANG F，LIANG GY，LIU DX，et al. Effect of Si-RNA- silenced HIF-1α gene on myocardial ischemia-reperfusion-induced insulin resistance[J]. In J Clin Exp Med，2015，8（9）：15514–15520.

[ 3 ] 梁貴友，宋宣統(tǒng)，蔡慶勇，等. BQ123對體外循環(huán)缺血再灌注心肌胰島素抵抗干預(yù)作用的實(shí)驗(yàn)研究[J].中國藥房，2008，19（28）：2179–2181.

[ 4 ] LIU B，LIANG GY，XU G，at al. Intervention of rosiglitazone on myocardium Glut-4 mRNA expression during ischemia-reperfusion injury in cardiopulmonary bypass in dogs[J]. Mol Cell Biochem，2013，373（1）：279–284.

[ 5 ] FANG H，JUDD RL. Adiponectin regulation and function[J]. Compr Physiol，2018，8（3）：1031–1063.

[ 6 ] BOURSEREAU R，ABOU-SAMRA M，LECOMPTE S，et al. New targets to alleviate skeletal muscle inflammation：role of microRNAs regulated by adiponectin[J]. Sci Rep，2017.DOI：10.1038/srep43437.

[ 7 ] XU W，TIAN M，ZHOU Y. The relationship between insulin resistance，adiponectin and C-reactive protein and vascular endothelial injury in diabetic patients with coronary heart disease[J]. Exp Ther Med，2018，16（3）：2022–2026.

[ 8 ] LECOMPTE S，ABOU-SAMRA M，BOURSEREAU R，et al. Skeletal muscle secretome in duchenne muscular dystrophy：a pivotal anti-inflammatory role of adiponectin[J]. Cell Mol Life Sci，2017，74（13）：2487–2501.

[ 9 ] FANTUZZI G. Adiponectin in inflammatory and immune- mediated diseases[J]. Cytokine，2013，64（1）：1–10.

[10] SAYEED M，GAUTAM S，VERMA DP，et al. A collagen domain-derived short adiponectin peptide activates APPL1 and AMPK signaling pathways and improves glucose and fatty acid metabolisms[J]. J Biol Chem，2018，293（35）：13509–13523

[11] CHANG E，CHOI JM，PARK SE，et al. Adiponectin deletion impairs insulin signaling in insulin-sensitive but not insulin-resistant 3T3-L1 adipocytes[J]. Life Sci，2015，132（1）：93–100.

[12] 汪俊，邵名亮，曹蘅，等.脂聯(lián)素對大鼠心肌缺血再灌注損傷的保護(hù)作用[J].中華心血管病雜志，2010，38（3）：252–258.

[13] LAWRENCE H，VLAD G. AMP-activated protein kinase regulation and biological actions in the heart[J]. Circ Res，2012，111（6）：800–814.

[14] PAIVA MA. Transitory activation of AMPK at reperfusion protects the ischaemic-reperfused rat myocardium against infarction[J]. Cardiovasc Drugs Ther，2010，24（1）：25–32.

[15] 王峰，梁貴友，劉達(dá)興，等.盲視插管測定犬冠狀靜脈竇血流量的方法[J].中華實(shí)驗(yàn)外科雜志，2015，32（5）：1065.

[16] FERRANNINI E，SANTORO D，BONADONNA R，et al. Metabolic and hemodynamic effects of insulin on human hearts[J]. Am J Physiol，1993，264（2）：E308–E315.

[17] KATZ A，NAMBI SS，MATHER K，et al. Quantitative insulin sensitivity check index：a simple，accurate method for assessing insulin sensitivity in humans[J]. Clin Endocrinal Metab，2000，85（7）：2402–2410.

[18] FRYER LG，CARLING D. AMP-activated protein kinase and the metabolic syndrome[J]. Biochem Soc Trans，2005，33（2）：362–366.

[19] MISRA P，CHAKRABARTI R. The role of AMP kinase in diabetes[J]. Indian J Med Res，2007，125（3）：389–398.

[20] 張登沈，梁貴友，劉達(dá)興，等.阿卡地新對體外循環(huán)心肌缺血再灌注損傷模型犬心肌能量代謝的影響[J].中國藥房，2017，28（28）：3918–3923.

[21] MIRMIRAN P，HOSSEINI S，HOSSEINPOUR-NIAZI S，et al. Legume consumption increase adiponectin concentrations among type 2 diabetic patients：a randomized crossover clinical trial[J]. Endocrinol Diabetes Nutr，2019，66（1）：49–55.

[22] WICKS SE，VANDANMAGSAR B，HAYNIE KR，et al. Mitochondrial fat oxidation induces adaptive remodeling of muscle metabolism[J]. Proc Natl Acad Sci U S A，2015，112（25）：E3300–E3309.

（收稿日期：2018–10–12 修回日期：2019–01–14）

（編輯：鄒麗娟）