吳永祥,戴毅,王雅群,江海濤,張夢婷,權(quán)泰亨,陳向陽*
1(黃山學(xué)院 生命與環(huán)境科學(xué)學(xué)院,安徽 黃山, 245041) 2(安東國立大學(xué) 食品科學(xué)與生物技術(shù)學(xué)院,慶尚北道 安東, 760749)
紅薯(IpomoeabatatasLam.)又稱甘薯、山芋、地瓜、番薯等,屬于旋花科甘薯屬一年或多年生草本植物。紅薯營養(yǎng)豐富,富含蛋白質(zhì)、膳食纖維、維生素、氨基酸及各種礦物質(zhì),被營養(yǎng)學(xué)家們稱為營養(yǎng)最均衡的天然保健食品,已經(jīng)越來越受到國內(nèi)外消費(fèi)者的青睞[1]。紅薯是一種高產(chǎn)且適應(yīng)性強(qiáng)的主要糧食作物,在世界上100多個國家均有種植,其中中國紅薯種植約占全世界總產(chǎn)的80%左右[2]。國內(nèi)對紅薯進(jìn)行了大量的深加工研究,開發(fā)出的主要產(chǎn)品有紅薯干、紅薯蛋白質(zhì)、紅薯膳食纖維、紅薯飲料、紅薯黃酒等[3-4]。紅薯干具有甜軟韌香、營養(yǎng)豐富的優(yōu)點(diǎn),并最大程度地保留了紅薯的原有風(fēng)味,深受消費(fèi)者喜愛。紅薯干在加工過程中,細(xì)胞組織遭到損傷,在氧化酶作用下細(xì)胞組織中的酚類物質(zhì)迅速氧化形成醌,醌類物質(zhì)自我聚合形成類黑色素,從而導(dǎo)致紅薯干發(fā)生褐變現(xiàn)象,使其外觀品質(zhì)和營養(yǎng)品質(zhì)下降,造成經(jīng)濟(jì)損失[5-6]。目前,有關(guān)紅薯干在加工過程中護(hù)色工藝的研究較少,采用不同護(hù)色預(yù)處理方式對紅薯干品質(zhì)產(chǎn)生的影響尚未見報(bào)道。
VC、檸檬酸、CaCl2、亞硫酸鹽等護(hù)色劑以及超聲波、熱燙等技術(shù)在控制酶促褐變中得到了廣泛應(yīng)用[7-8]。大量研究表明,含硫護(hù)色劑護(hù)色效果較好,但容易導(dǎo)致產(chǎn)品中SO2殘留,甚至殘留嚴(yán)重超標(biāo),影響產(chǎn)品的質(zhì)量與安全,并危害人體的身體健康[9]。目前,食品中SO2殘留量必須控制在較低水平,甚至已經(jīng)在很多食品中禁用。因此,本試驗(yàn)選擇不同質(zhì)量濃度的無硫護(hù)色劑,在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,采用Box-Behnken設(shè)計(jì)方法,運(yùn)用Design-Expert V8.0.6軟件對紅薯干褐變抑制率的二次回歸模型進(jìn)行分析,確定最佳的無硫復(fù)合護(hù)色劑配方,并進(jìn)一步探討復(fù)合護(hù)色劑、超聲波-熱燙、亞硫酸鈉3種不同護(hù)色處理方式對紅薯干褐變抑制率、體積皺縮比、硬度、色澤及微觀結(jié)構(gòu)等品質(zhì)指標(biāo)的影響,旨在為紅薯干加工的護(hù)色處理提供技術(shù)參考。
紅薯原料,采購于浙江省臨安市天目山鎮(zhèn)。挑選新鮮、無病蟲害和機(jī)械損傷、成熟度及大小基本一致的紅薯為試驗(yàn)材料。
VC、檸檬酸、CaCl2、亞硫酸鹽,國藥集團(tuán)化學(xué)試劑公司。
S3400N掃描電鏡,日本日立公司;SpectraMax-190全波長酶標(biāo)儀,美國Molecular Devices公司;PL203電子天平,梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;SCQ-5201C數(shù)控加熱功率可調(diào)型超聲波清洗器,上海聲彥超聲波儀器有限公司;CR-10plus色差儀,日本柯尼卡美能達(dá)公司;GY-4數(shù)顯式水果硬度計(jì),北京金科利達(dá)電子科技有限公司。
1.3.1 工藝流程
1.3.2 護(hù)色劑的護(hù)色處理方式
用清水洗去紅薯表面污泥,去皮,切成(10.0±0.5)mm厚的大小均一的紅薯?xiàng)l,并立即進(jìn)行如下的護(hù)色處理,自然瀝干后,經(jīng)榨汁、離心、過濾后,測定褐變指數(shù),并計(jì)算褐變抑制率。按照表1的設(shè)計(jì)進(jìn)行紅薯干加工前的單一護(hù)色劑優(yōu)化;在單一護(hù)色劑質(zhì)量濃度優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果的基礎(chǔ)上,采用Box-Behnken設(shè)計(jì)原理,利用3因素3水平的響應(yīng)面試驗(yàn)(表2)優(yōu)化VC、檸檬酸、CaCl23種護(hù)色劑的最佳配比。
表1 單一護(hù)色劑質(zhì)量濃度優(yōu)化設(shè)計(jì)Table 1 Optimization design for individual use of browning inhibitors at different concentrations
表2 Box-Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì)Table 2 Experimental design of Box-Behnken
1.3.3 復(fù)合護(hù)色劑、超聲波-熱燙、亞硫酸鈉的3種不同護(hù)色處理方式
參考文獻(xiàn)[5-6]及本課題組前期護(hù)色試驗(yàn)來選用不同護(hù)色處理?xiàng)l件。復(fù)合護(hù)色劑組:在響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果的基礎(chǔ)上,得到復(fù)合護(hù)色劑的最佳配比為0.77 g/100 mL VC、2.17 g/100 mL檸檬酸、0.22 g/100 mL CaCl2,將制備好的紅薯?xiàng)l60.0 g浸泡護(hù)色30 min;超聲波-熱燙組:將紅薯?xiàng)l60.0 g置于超聲處理器內(nèi),210 W、80 ℃條件下超聲6 min,用蒸餾水快速沖洗冷卻紅薯?xiàng)l至室溫;亞硫酸鈉組:將紅薯?xiàng)l60.0 g置于2 g/100 mL亞硫酸鈉溶液中浸泡護(hù)色30 min。同時設(shè)立對照組,為未護(hù)色處理的紅薯?xiàng)l。
1.3.4 褐變抑制率測定
參考文獻(xiàn)[10]略作改動:稱取10.0 g經(jīng)護(hù)色處理的紅薯?xiàng)l,冰浴條件下用100 mL 0.2 mol/L磷酸鹽緩沖液(pH 7.0)勻漿,經(jīng)3 000 r/min離心20 min,取上清液,于450 nm波長處測吸光度。以未護(hù)色處理組為對照,每樣重復(fù)3次,取平均值,并按式(1)計(jì)算褐變抑制率:
(1)
式中:I,褐變抑制率,%;AS,護(hù)色處理組吸光度;AC,未護(hù)色處理組的吸光度。
1.3.5 體積皺縮比測定
參考文獻(xiàn)[11]并修改如下:用粒徑0.105~0.201 mm的石英砂作為置換介質(zhì),分別測定新鮮紅薯?xiàng)l組體積(VC)、護(hù)色處理組紅薯干體積(VS)。每樣重復(fù)3次,取平均值,并按式(2)計(jì)算體積皺縮比:
(2)
式中:T,體積皺縮比;VS,護(hù)色處理組的體積;VC,新鮮紅薯?xiàng)l組的體積。
1.3.6 硬度測定
利用GY-4型數(shù)顯式水果硬度計(jì)測定,探頭直徑為7.9 mm,在紅薯干表面隨機(jī)選取10個點(diǎn)測量,并記錄數(shù)據(jù),計(jì)算其平均值。平行測定3次,確定紅薯干硬度(N)。
1.3.7 色澤測定
利用CR-10plus型色差儀,在紅薯干表面隨機(jī)選取10個點(diǎn)測量,并記錄L*、a*、b*值,計(jì)算其平均值。平行測定3次,確定紅薯干色澤。色差儀中的L*值表示紅薯干色澤的明暗度,L*值越大表明顏色越白,褐變程度低;反之越暗、褐變程度高[12]。
1.3.8 微觀組織結(jié)構(gòu)觀察
利用S3400N型掃描電鏡對紅薯干進(jìn)行微觀組織結(jié)構(gòu)觀察。將紅薯干凍干后,固定在樣品托上,采用離子濺射儀在觀察樣品的橫斷面上噴金,掃描電子顯微鏡(500倍)觀察并拍照。
如圖1所示,VC、檸檬酸、CaCl2的處理均能有效抑制紅薯干加工過程中的褐變,且在低質(zhì)量濃度時隨著濃度逐漸增大對褐變的抑制作用逐漸增強(qiáng)。當(dāng)VC為1 g/100 mL、檸檬酸為3 g/100 mL、CaCl2為0.2 g/100 mL時,對紅薯干的褐變抑制率均達(dá)到最大,分別為52.79%、49.84%、48.90%。VC為還原劑,能將氧化的醌類還原為酚類物質(zhì),阻止醌類物質(zhì)形成色素物質(zhì),起到護(hù)色效果[9,13]。檸檬酸可以與多酚氧化酶的金屬離子配位形成螯合物,導(dǎo)致酶活性降低,同時檸檬酸可電離3個H+,使護(hù)色液中的pH值遠(yuǎn)離多酚氧化酶的最適pH值,起到抑制褐變的作用[14-15]。CaCl2的Ca2+能與氨基酸發(fā)生沉淀作用,抑制羰氨反應(yīng),且Ca2+能與細(xì)胞壁的果膠酸作用形成果膠酸鈣,阻止液泡中組織液外滲到細(xì)胞質(zhì)中與酶類接觸,降低酶褐變程度[16]。但當(dāng)VC、檸檬酸、CaCl濃度再增加,褐變抑制效果呈現(xiàn)一定的下降趨勢。表明VC、檸檬酸、CaCl2在一定濃度范圍內(nèi)能有效抑制褐變作用,當(dāng)超過一定濃度后,紅薯干可能自身發(fā)生了非酶促褐變,褐變程度加深,抑制效果下降[17]。
圖1 VC(A)、檸檬酸(B)、CaCl2(C)對紅薯干褐變抑制率的影響Fig.1 Effect of VC (A), citric acid (B), calcium chloride (C) on browning inhibition rate of candied sweet potato注:不同大小寫字母表示差異顯著,下同。
2.2.1 回歸模型的建立
以VC、檸檬酸、CaCl2為試驗(yàn)因子,紅薯干褐變抑制率為響應(yīng)值,設(shè)計(jì)3因素3水平Box-Behnken試驗(yàn),試驗(yàn)結(jié)果見表2。由表2的數(shù)據(jù)用Design-Expert V8.0.6分析可得回歸方程為:Y=58.24+4.54A+2.04B-0.35C-1.95AB-0.71AC-0.011BC-5.44A2-3.72B2-1.63C2。
表3 響應(yīng)面試驗(yàn)結(jié)果Table 3 The results of response surface methodology
2.2.2 響應(yīng)面試驗(yàn)的方差分析
由表4可知,本試驗(yàn)所選模型差異極顯著(模型的P=0.000 2),說明回歸模型對紅薯干褐變抑制率有很好的預(yù)測性。
表4 回歸模型方差分析Table 4 Analysis of variance (ANOVA) regression model
注:*表示差異顯著(P< 0.05);**表示差異極顯著(P< 0.01)。
由表4可知,從顯著性檢驗(yàn)P值的大小可以得到各因素對紅薯干褐變抑制作用影響的順序?yàn)閂C(A)>檸檬酸(B)> CaCl2(C),其中A和B因素對紅薯干褐變抑制作用的影響極顯著,A和B因素交互作用影響顯著(P<0.05),A和C、B和C因素交互作用影響均不顯著(P>0.05),A2、B2對紅薯干褐變抑制作用影響極顯著(P<0.001),C2對紅薯干褐變抑制作用影響不顯著(P>0.05)。將表4中數(shù)據(jù)進(jìn)行響應(yīng)面曲線分析,二者呈較好的二次拋物線關(guān)系,紅薯干褐變抑制率存在最大值。
2.2.3 復(fù)合護(hù)色劑最佳配比的確定及驗(yàn)證試驗(yàn)
利用Design-Expert V 8.0.6軟件對復(fù)合護(hù)色劑的配比進(jìn)行優(yōu)化,得到紅薯干褐變度抑制率最佳條件為:VC濃度0.77 g/100 mL、檸檬酸濃度2.17 g/100 mL、 CaCl2濃度0.22 g/100 mL;在此工藝條件下,紅薯干褐變度抑制率的預(yù)測值為59.35%。采用上述條件,進(jìn)行驗(yàn)證試驗(yàn)(n=3),得到紅薯干褐變度抑制率實(shí)測值為(58.66±0.56)%,與預(yù)測值59.35%的相對誤差為1.18%,進(jìn)一步說明此模型對試驗(yàn)的擬合度較好,得到的回歸方程在本試驗(yàn)中有實(shí)際意義。
如圖2所示,復(fù)合護(hù)色劑、超聲波-熱燙、亞硫酸鈉3種不同護(hù)色處理均能有效抑制紅薯干加工過程中的褐變,褐變抑制率分別為58.66%、15.37%、20.24%。
圖2 不同護(hù)色處理對紅薯干褐變抑制率的影響Fig.2 Effect of different color protection treatments on browning inhibition rate of candied sweet potato
與超聲波-熱燙組、亞硫酸鈉組相比,復(fù)合護(hù)色劑組的紅薯干褐變抑制率最大,且存在著顯著性差異(P<0.05)。超聲波-熱燙處理是一種較為強(qiáng)烈的熱力物理作用,能在較短時間內(nèi)導(dǎo)致酶活性降低,起到抑制褐變的作用,但易造成組織軟化和部分營養(yǎng)物質(zhì)流失等問題[18-19]。亞硫酸鈉可對多酚氧化酶產(chǎn)生不可逆的抑制作用,能控制酶促褐變的速度,同時對非酶促褐變亦能產(chǎn)生抑制作用,但亞硫酸鈉的使用存在著SO2殘留問題,嚴(yán)重影響了產(chǎn)品的質(zhì)量與安全[9, 20]。
體積皺縮反映紅薯干加工前后體積的變化程度,皺縮比越接近1,表明體積外形改變越小。如圖3所示,與對照組的體積皺縮比(0.84±0.01)相比,復(fù)合護(hù)色劑組、超聲波-熱燙組、亞硫酸鈉組的體積皺縮比分別為(0.93±0.02)、(0.51±0.01)、(0.83±0.02),具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。復(fù)合護(hù)色劑處理后的紅薯干體積收縮變化小,呈現(xiàn)出飽滿的體積形態(tài)。超聲波-熱燙組的體積皺縮比差異顯著,表明超聲波-熱燙處理使紅薯組織產(chǎn)生了部分萎縮和變形,物料表觀形態(tài)體積呈縮小趨勢[21-22]。與對照組相比,亞硫酸鈉組皺縮比差異不顯著(P>0.05)。此外,超聲波-熱燙組、亞硫酸鈉組的硬度與對照組存在顯著差異,硬度值分別為(4.94±1.16)N、(3.48±0.12)N,分別高于對照組硬度值的74.25%、22.57%。與對照組相比,復(fù)合護(hù)色劑的硬度值沒有明顯差異(P>0.05)。這可能由于超聲波-熱燙、亞硫酸鈉的護(hù)色處理使產(chǎn)品內(nèi)部組織結(jié)構(gòu)萎縮和變形,增加了組織的堅(jiān)實(shí)性,呈現(xiàn)出較高的產(chǎn)品硬度[23-24]。
圖3 不同護(hù)色處理對紅薯干體積皺縮比和硬度的影響Fig.3 Effect of different color protection treatments on shrinkage rates and hardness of candied sweet potato
L*值表示紅薯干色澤的明暗度,L*值越大表明顏色越白,褐變程度低。如表5所示,復(fù)合護(hù)色劑、超聲波-熱燙、亞硫酸鈉處理后的紅薯干L*值存在著顯著差異(P<0.05),均明顯高于對照組的L*值,其中復(fù)合護(hù)色劑組的L*值最大。3組的a*值之間存在顯著差異(P<0.05),顯著低于對照組;3組的b*值之間亦存在顯著差異(P<0.05),顯著高于對照組。結(jié)果表明,3種不同護(hù)色處理對紅薯干的色澤存在著不同程度的影響,且其與對紅薯干褐變抑制作用的影響呈現(xiàn)出較好的一致性。
表5 不同護(hù)色處理對紅薯干色澤的影響Table 5 Effect of different color protection treatments on color parameters of candied sweet potato
注:同列不同字母表示在統(tǒng)計(jì)學(xué)上具有顯著差異(P<0.05)。
如圖4所示,與新鮮紅薯組相比,紅薯干在加工過程中細(xì)胞結(jié)構(gòu)形態(tài)發(fā)生了顯著改變,細(xì)胞壁發(fā)生了一定程度的皺縮。與對照組相比,復(fù)合護(hù)色劑、亞硫酸鈉處理的紅薯干細(xì)胞形態(tài)相對飽滿且規(guī)則,細(xì)胞結(jié)構(gòu)形態(tài)發(fā)生改變或破壞相對較少。相對于復(fù)合護(hù)色劑組,超聲波-熱燙處理后,紅薯干細(xì)胞微觀結(jié)構(gòu)形態(tài)引起了較大程度的改變和破壞,細(xì)胞輪廓結(jié)構(gòu)呈雜亂不規(guī)則狀,細(xì)胞壁出現(xiàn)嚴(yán)重皺縮,卷曲現(xiàn)象更明顯。3組護(hù)色處理微觀結(jié)構(gòu)電鏡掃描觀察呈現(xiàn)的結(jié)果與前期研究的體積皺縮比、硬度具有一定的吻合度,從微觀結(jié)構(gòu)上對不同護(hù)色處理后紅薯干品質(zhì)指標(biāo)差異產(chǎn)生原因進(jìn)行了進(jìn)一步的解釋和驗(yàn)證。
a~e分別為新鮮組、對照組、復(fù)合護(hù)色劑組、超聲波-熱燙組、亞硫酸鈉組。圖4 不同護(hù)色處理對紅薯干微觀組織結(jié)構(gòu)的影響(×500)Fig.4 Effect of different color protection treatments on microstructure of candied sweet potato (×500)
在單因素試驗(yàn)設(shè)計(jì)的基礎(chǔ)上,對紅薯干無硫護(hù)色劑進(jìn)行了3因素3水平的Box-Behnken響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì),確定了復(fù)合護(hù)色劑最佳配比為0.77 g/100 mL VC、2.17 g/100 mL檸檬酸、0.22 g/100 mL CaCl2。在此條件下預(yù)測紅薯干褐變抑制率為59.35%, 而經(jīng)驗(yàn)證試驗(yàn)得到的實(shí)際值為58.66%,預(yù)測值與實(shí)際值的吻合率為98.84%,說明回歸模型與實(shí)際情況擬合良好。通過對比試驗(yàn)可知,復(fù)合護(hù)色劑對紅薯干的褐變抑制作用、體積皺縮比、硬度、色澤及微觀組織結(jié)構(gòu)等指標(biāo)的影響均顯著優(yōu)于超聲波-熱燙、亞硫酸鈉處理組,得到的紅薯干品質(zhì)最佳,更符合工業(yè)化生產(chǎn)需求。本研究結(jié)果為紅薯干加工的護(hù)色處理提供了技術(shù)參考。