IBA的濃度>NAA的濃度,最終得到的二元回歸方程顯示,一步成苗的培養(yǎng)基優(yōu)化結(jié)果為MS+6-BA 2.42 mg/L+NAA 0.27 mg/L+I"/>
趙春莉 姚思揚(yáng) 王嫚 王一飛 吳雙 湯昊 胡釗源
摘要:以軟棗獼猴桃?guī)а壳o段為外植體,利用響應(yīng)面法對(duì)其組培一步成苗試驗(yàn)進(jìn)行優(yōu)化。在單因素的試驗(yàn)基礎(chǔ)上,根據(jù)Box-Behnken的中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,以6-BA、NAA、IBA的濃度為試驗(yàn)因子,植株再生頻率為響應(yīng)值,進(jìn)行3因素3水平的試驗(yàn)設(shè)計(jì)。結(jié)果表明:3因素對(duì)植株再生頻率的影響力大小為6-BA的濃度>IBA的濃度>NAA的濃度,最終得到的二元回歸方程顯示,一步成苗的培養(yǎng)基優(yōu)化結(jié)果為MS+6-BA 2.42 mg/L+NAA 0.27 mg/L+IBA 0.32 mg/L。在此條件下,最佳再生頻率預(yù)測(cè)值為4.23,實(shí)際操作結(jié)果為4.13。
關(guān)鍵詞:響應(yīng)面;一步成苗;再生頻率;軟棗獼猴桃;單因素試驗(yàn);回歸分析;再生頻率
中圖分類號(hào): S663.404+.3文獻(xiàn)標(biāo)志碼: A
文章編號(hào):1002-1302(2019)19-0061-04
收稿日期:2018-07-12
基金項(xiàng)目:吉林省重點(diǎn)科技攻關(guān)項(xiàng)目(編號(hào):20140204030NY、20140101271JC);大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)訓(xùn)練計(jì)劃(編號(hào):2017496)。
作者簡(jiǎn)介:趙春莉(1973—),女,山東壽光人,博士,副教授,主要從事觀賞植物資源引種馴化及繁殖技術(shù)研究。E-mail:zcl8368@163.com。
軟棗獼猴桃(Actinidia arguta)是獼猴桃科獼猴桃屬植物,分布廣闊,產(chǎn)量高,果實(shí)甜度高,富含維生素C、蛋白、氨基酸、果膠等成分,其中維生素C含量高達(dá)430.8 mg/100 g,是蘋果、梨的80~100倍,柑橘的5~10倍[1],有極高的營養(yǎng)價(jià)值,還可加工成果脯、果汁、罐頭果醬、酒類等產(chǎn)品[2]。其根、莖、葉均可入藥,可治療消化不良、腹瀉、嘔吐和風(fēng)濕性關(guān)節(jié)痛,有抗衰防癌的功效[3]。獼猴桃適應(yīng)能力強(qiáng),種植范圍較廣,根系發(fā)達(dá),可有效保持水土,提高土壤肥力,有良好的生態(tài)價(jià)值[4]。在園林景觀應(yīng)用上,它是一種很好的纏繞木,可作庭院景觀觀賞,可應(yīng)用在花架花棚的設(shè)計(jì)中[5]。軟棗獼猴桃應(yīng)用廣泛,具有良好的食用、藥用、生態(tài)、景觀價(jià)值,具有廣闊的經(jīng)濟(jì)市場(chǎng)。
軟棗獼猴桃傳統(tǒng)的繁殖方式為播種繁殖和扦插繁殖[6-8],但種子繁殖易性狀分離,生長(zhǎng)緩慢。扦插生根率不高,過度采集枝條有損母株[9]。組織培養(yǎng)可以保留植株優(yōu)良性狀,可快速大量地繁殖出苗。目前,已有相關(guān)軟棗獼猴桃組織培養(yǎng)的報(bào)道[9-12]。傳統(tǒng)的組織培養(yǎng)試驗(yàn)是在每個(gè)階段篩選出合適的培養(yǎng)基和培養(yǎng)環(huán)境,轉(zhuǎn)接過程可能會(huì)造成污染,工作量大,周期長(zhǎng)。一步成苗指在一個(gè)培養(yǎng)基內(nèi)完成誘導(dǎo)、增殖、生根階段,可節(jié)省成本,節(jié)省時(shí)間。目前,一步成苗技術(shù)還不夠成熟,軟棗獼猴桃的一步成苗研究未見報(bào)道。響應(yīng)面分析法普遍應(yīng)用于優(yōu)化試驗(yàn)中,可精確地反映各因素間的關(guān)系,預(yù)測(cè)出最佳優(yōu)化條件。本試驗(yàn)以軟棗獼猴桃?guī)а壳o段為外植體,研究單因素6-BA、IBA、NAA濃度對(duì)其一步成苗的影響,用響應(yīng)面法優(yōu)化軟棗獼猴桃一步成苗培養(yǎng)基,以期為今后相關(guān)研究提供理論實(shí)踐基礎(chǔ)。
1 材料與方法
1.1 試驗(yàn)材料
試驗(yàn)材料為長(zhǎng)白山野生軟棗獼猴桃?guī)а壳o段,于2017年5月采自吉林長(zhǎng)白山地區(qū),后用低溫保溫箱將外植體帶回吉林農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院實(shí)驗(yàn)室進(jìn)行研究。
1.2 試驗(yàn)方法
1.2.1 外植體的滅菌處理
將外植體用洗潔精洗凈灰塵,再用流水沖洗1 h。放在超凈工作臺(tái)的濾紙上吸干水分,放入滅菌后的燒杯中。加75%乙醇消毒30 s,用蒸餾水清洗4次,加0.1%三氯甲烷消毒6 min,用蒸餾水沖洗5次。消毒期間不斷振蕩,使試劑與材料充分接觸。
1.2.2 單因素試驗(yàn) [HJ1.4mm]
為探究每種生長(zhǎng)激素的不同濃度對(duì)外植體產(chǎn)生的影響,以MS為基本培養(yǎng)基,將6-BA、IBA、NAA分別設(shè)置5種濃度:6-BA(1.0、2.0、3.0、4.0、5.0 mg/L);NAA(0.05、0.10、0.20、0.40、0.80 mg/L);IBA(0.05、0.10、0.20、0.40、0.80 mg/L)。將外植體分別接種到培養(yǎng)基內(nèi),每個(gè)處理接15個(gè)莖段,培養(yǎng)周期為50 d。
[CM(26]1.2.3 軟棗獼猴桃一步成苗培養(yǎng)基的優(yōu)化
在單因素試驗(yàn)的基礎(chǔ)上,用響應(yīng)面分析法,根據(jù)Box-Behnken的中心組合試驗(yàn)設(shè)計(jì)原理,以6-BA、NAA、IBA濃度為試驗(yàn)因子,植株再生頻率為響應(yīng)值,進(jìn)行3因素3水平的試驗(yàn)設(shè)計(jì),結(jié)果見表1,每個(gè)水平處理10個(gè)莖段,培養(yǎng)周期為50 d。
1.2.4 培養(yǎng)條件
基礎(chǔ)培養(yǎng)基為MS培養(yǎng)基,加入蔗糖 30 g/L、瓊脂粉8 g/L,pH值5.8~6.0。培養(yǎng)環(huán)境為:溫度(25±2) ℃,光照度2 000 lx,每天光照14 h。
1.2.5 數(shù)據(jù)分析
采用Design-Expert 8.0.6軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析。
誘導(dǎo)率=出不定芽的外植體/接種的外植體數(shù)×100%;植株再生頻率=再生植株總數(shù)/接種的外植體數(shù)。
2 結(jié)果與分析
2.1 單因素試驗(yàn)結(jié)果
2.1.1 不同6-BA濃度對(duì)外植體的影響
6-BA是一種常用的細(xì)胞分裂素,對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)分化有良好的促進(jìn)作用。外植體接種15 d左右,有嫩綠色芽點(diǎn)產(chǎn)生,逐漸長(zhǎng)大成為不定芽,30 d后部分不定芽會(huì)增殖出多個(gè)不定芽,當(dāng)6-BA濃度為10、2.0、3.0 mg/L時(shí),誘導(dǎo)率和增殖效果較好。當(dāng)6-BA濃度為 4.0 mg/L 時(shí),誘導(dǎo)率和再生頻率都有所下降,可見濃度過高的 6-BA對(duì)外植體生長(zhǎng)分化有抑制作用。50 d后,有部分不定芽長(zhǎng)出須根,6-BA濃度為2.0 mg/L時(shí),生根率較好,植株再生頻率最高。
2.1.2 不同NAA濃度對(duì)外植體的影響
由表3可知,低濃度的NAA對(duì)誘導(dǎo)與增殖的效果都很差,在NAA濃度大于 0.10 mg/L 時(shí),誘導(dǎo)速度慢,25 d后才有不定芽形成,形成的不定芽少。在NAA濃度為0.20,0.40 mg/L時(shí),20 d后即可誘導(dǎo)出不定芽,且30 d后增殖的不定芽較多;NAA濃度為 0.80 mg/L 時(shí),對(duì)不定芽生長(zhǎng)有抑制作用。50 d后,部分不定芽有根系生成,其中處理B3、B4的生根效果較好。最終篩選出最適宜外植體誘導(dǎo)分化的NAA最佳濃度為0.20 mg/L,最佳誘導(dǎo)率為60.00%,植株再生頻率為1.13??梢姡瑔为?dú)使用生長(zhǎng)素NAA對(duì)植株再生效果不佳。
2.1.3 不同IBA濃度對(duì)外植體的影響
由表4可見,IBA濃度為0.05 mg/L時(shí),誘導(dǎo)和增殖效果差。IBA濃度在 0.10 mg/L 以上時(shí),20 d后有不定芽形成,誘導(dǎo)率較高,不定芽較多。隨著IBA濃度升高,誘導(dǎo)率和再生頻率都升高,30 d后增殖效果較明顯,50 d后,不定芽形成根且根系健壯。IBA濃度在0.80 mg/L時(shí),再生苗的再生頻率有所下降。可見,IBA誘導(dǎo)外植體分化的最佳濃度為0.40 mg/L,再生頻率為1.27。
2.2 軟棗獼猴桃一步成苗培養(yǎng)基的優(yōu)化試驗(yàn)結(jié)果
2.2.1 回歸方程分析
以6-BA濃度(X1)、NAA濃度(X2)、IBA濃度(X3)為自因素,以植株再生頻率(Y)為響應(yīng)值,根據(jù)試驗(yàn)結(jié)果(表5)得到回歸方程為:
Y=4.10+0.44X1-0.25X2+0.29X3-0.13X1X2-0.15X1X3+0.42X2X3-0.53X21-0.80X22-0.87X23,R2=0.964 0。該回歸模型的P值=0.000 3<0.01,有極顯著性;失擬項(xiàng)F值=0.177 6>0.05,無顯著性。說明該方程模型擬合度較好,試驗(yàn)誤差較小。表6顯示,X1、X12、X22、X32回歸系數(shù)極顯著(P<0.01),X2、X3、X2X3回歸系數(shù)顯著(P<0.05)。說明因素6-BA濃度對(duì)植物再生頻率有極顯著影響,IBA濃度與NAA濃度對(duì)其有顯著影響,且NAA濃度與IBA濃度的交互作用對(duì)植株再生頻率有顯著性影響。6-BA濃度與NAA濃度、IBA濃度的交互作用對(duì)結(jié)果影響不顯著。
2.2.2 響應(yīng)面分析
通過Design-Expert 8.0.6軟件繪制因素間交互作用的等高線圖和響應(yīng)面圖,結(jié)果見圖1至圖3,通過等高線、響應(yīng)面形狀來分析因素之間的交互作用以及對(duì)再生頻率的影響。其中,6-BA濃度對(duì)植株再生頻率的影響最大,其次是IBA濃度,對(duì)植株再生頻率影響最小的是NAA濃度。由此可以看出,存在最高點(diǎn),所以最佳再生頻率出現(xiàn)在所選因素水平的范圍之內(nèi)。6-BA濃度與NAA濃度、IBA濃度的響應(yīng)面坡度較為平緩,對(duì)再生頻率的影響不顯著。NAA濃度與IBA濃度的響應(yīng)面最高點(diǎn)位于中間,邊緣形狀較陡,呈明顯凸字形,故NAA濃度與IBA濃度的交互作用對(duì)再生頻率有極顯著影響。
2.2.3 模擬方程的驗(yàn)證試驗(yàn)
通過二次回歸方程的分析可得出軟棗獼猴桃一步成苗的最優(yōu)條件為:6-BA濃度 2.42 mg/L,NAA濃度0.27 mg/L,IBA濃度0.32 mg/L,最佳再生頻率預(yù)測(cè)值為4.23。對(duì)該模型進(jìn)行3次驗(yàn)證試驗(yàn),每次處理10個(gè)莖段,得出的3次結(jié)果為4.3、3.9、4.2,平均結(jié)果為 4.13,與預(yù)測(cè)值十分接近,說明方程與真實(shí)試驗(yàn)擬合度較好,該優(yōu)化方案有實(shí)際意義和可行度。
3 討論與結(jié)論
關(guān)于軟棗獼猴桃的組培研究,通常要經(jīng)過誘導(dǎo)、增殖、生根的階段,要統(tǒng)計(jì)誘導(dǎo)率、增殖率、生根率,每個(gè)階段都須要篩選出最佳培養(yǎng)基,一般每個(gè)階段需要20~30 d[13],成苗至少需要80 d。一步成苗所有階段在1個(gè)培養(yǎng)基內(nèi)進(jìn)行,并能產(chǎn)生完整植株,大大節(jié)省了成本、時(shí)間、人力,是一種新型的組培方法。試驗(yàn)選擇了6-BA、IBA、NAA 3種植物激素,其中細(xì)胞分裂素6-BA對(duì)外植體的誘導(dǎo)、分化、增殖有很好的促進(jìn)作用,生長(zhǎng)素IBA、NAA對(duì)植物生長(zhǎng)、生根都有很好的效果。單因素試驗(yàn)中6-BA對(duì)不定芽誘導(dǎo)的效果要好于IBA和NAA,有研究[14]篩選出最適合軟棗獼猴桃誘導(dǎo)的6-BA濃度是 1.5 mg/L,誘導(dǎo)率最高85.91%。本試驗(yàn)發(fā)現(xiàn)2.0 mg/L? 6-BA誘導(dǎo)效果更好,可達(dá)86.67%。
一步成苗最重要的參數(shù)是植株再生頻率,統(tǒng)計(jì)的是再生的帶有根系的完整植株,不同于傳統(tǒng)組培方法統(tǒng)計(jì)的增殖系數(shù)。接種30 d后,大部分植株基部有增殖的叢生芽產(chǎn)生,也有在莖段上增殖的現(xiàn)象,但這種幼嫩芽苗不計(jì)入試驗(yàn)結(jié)果。有研究在軟棗獼猴桃增殖階段的增殖系數(shù)最高可達(dá)5.86,高于本次試驗(yàn)的植株再生頻率,但該試驗(yàn)從接種到生根階段培養(yǎng)了80 d,本試驗(yàn)從接種到生根僅需50 d,減短了試驗(yàn)周期,簡(jiǎn)化了試驗(yàn)步驟,節(jié)省了試驗(yàn)成本,為軟棗獼猴桃組培苗的高效工廠化生產(chǎn)提供了理論技術(shù)支持[13-14]。
響應(yīng)面分析法是用多元二次回歸方程將試驗(yàn)中的多種因素進(jìn)行擬合,通過對(duì)響應(yīng)面和等高線的分析,研究各因子與響應(yīng)值的關(guān)系[15]。相對(duì)于傳統(tǒng)試驗(yàn)方法,響應(yīng)面是一種試驗(yàn)次數(shù)少、回歸方程更為精準(zhǔn)、能反映各因素間交互作用的一種高效、經(jīng)濟(jì)、實(shí)用的分析方法[16-17]。由優(yōu)化試驗(yàn)得出的結(jié)果可知,最佳優(yōu)化培養(yǎng)基為:MS+6-BA 2.42 mg/L+NAA? 0.27 mg/L+IBA 0.32 mg/L,植株再生頻率為4.23,高于單因素試驗(yàn)的最佳值1.60,說明該優(yōu)化方案有可行性和實(shí)際意義。
參考文獻(xiàn):
[1]王 菲,許金光,劉長(zhǎng)江. 軟棗獼猴桃中的功能保健成分及其在食品加工中的應(yīng)用[J]. 食品工業(yè)科技,2010,31(8):421-423.
[2]王占勤,米建海,紀(jì)虎娃,等. 野生軟棗獼猴桃果實(shí)品質(zhì)初步研究[J]. 山西林業(yè)科技,2011,40(3):26-27.
[3]王曉東,段全猛. 軟棗獼猴桃的利用與栽培[J]. 特種經(jīng)濟(jì)動(dòng)植物,2006(2):33-34.
[4]王艷芳,張立民. 軟棗獼猴桃實(shí)用價(jià)值及發(fā)展前景[J]. 新農(nóng)業(yè),2016(3):34-36.
[5]牛曉林. 長(zhǎng)白山軟棗獼猴桃組織培養(yǎng)和快繁技術(shù)研究[D]. 南京:南京林業(yè)大學(xué),2012.
[6]王春華. 軟棗獼猴桃苗木繁殖技術(shù)[J]. 煙臺(tái)果樹,2017(1):41-42.
[7]龍 茹,秘樹青,王子華,等. 外源激素對(duì)軟棗獼猴桃硬枝扦插生根的影響[J]. 河北科技師范學(xué)院學(xué)報(bào),2010,24(2):12-15.
[8]王曉春. 軟棗獼猴桃播種與嫁接育苗方法[J]. 特種經(jīng)濟(jì)動(dòng)植物,2010,13(3):41-42.
[9]郭志欣,顧地周,閆中雪,等. 軟棗獼猴桃優(yōu)良品系“2008-07”組織培養(yǎng)繁殖技術(shù)研究[J]. 西北農(nóng)林科技大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2014,42(11):93-98.
[10]劉小剛,焦 晉,趙 宇,等. 野生軟棗獼猴桃組織培養(yǎng)及褐變處理[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報(bào),2013,29(19):113-119.
[11]田新華,盧慧穎,吳 捷. 軟棗獼猴桃組織培養(yǎng)的研究[J]. 林業(yè)科技,2008,33(6):56-58.
[12]王廣富. 軟棗獼猴桃花藥培養(yǎng)及再生體系建立[D]. 中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院,2017.
[13]樸一龍,樸日子. 野生軟棗獼猴桃離體培養(yǎng)體系的建立及優(yōu)化[J]. 北方園藝,2011(15):157-160.
[14]劉延吉,郝桂杰,姜巖巖,等. 不同品種野生軟棗獼猴桃最佳組培方法的研究[J]. 北方園藝,2012(17):124-126.
[15]張艷萍,趙 瑋,羅萬銀,等. 利用響應(yīng)面法優(yōu)化野生白刺(Nitraria sibirica)莖段增殖培養(yǎng)基[J]. 中國沙漠,2015,35(6):1579-1583.
[16]楊秀榮,王雪蓮,王 敏,等. 利用響應(yīng)面分析方法優(yōu)化生防細(xì)菌B579增殖培養(yǎng)基[J]. 微生物學(xué)雜志,2010,30(3):35-39.
[17]付 勇,嚴(yán)善春,李小平. 響應(yīng)面法優(yōu)化黃粉蟲幼蟲油脂提取工藝[J]. 林業(yè)科學(xué),2010,46(8):125-129.