趙云霞 牛 波
近年來乳腺癌的發(fā)病率呈逐年上升趨勢,發(fā)病率排在女性惡性腫瘤的首位[1-2]。其最主要的治療手段依然是外科手術和化療[3]。但是,腫瘤細胞耐藥的出現(xiàn)嚴重影響了乳腺癌治療效果[4]。因此,探究乳腺癌發(fā)生發(fā)展的分子機制,尋找新的生物治療靶點依然是目前亟待解決的重大課題[5]。
長鏈非編碼RNAs(Long non-coding RNAs,lncRNAs)是指轉錄長度大于200個核苷酸并且不翻譯成蛋白質的功能性RNA分子。lncRNA與人類健康和疾病密切相關[6-8]。大量研究表明lncRNA在腫瘤發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮重要功能,lncRNA與乳腺癌發(fā)生、發(fā)展密切相關[9-10]。目前已鑒定出HOTAIR、FBXL19-AS1、H19等乳腺癌相關lncRNA[11-12]。成神經細胞瘤相關轉錄本1(Neuroblastoma associated transcript 1,NBAT1)是一種腫瘤抑制基因,其表達缺失與成神經細胞瘤增殖能力密切相關[13]。近期發(fā)現(xiàn),NBAT1也在骨肉瘤、腦膠質瘤、肺癌細胞的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮著重要的作用[14-16]。但是,關于lncRNA NBAT1在乳腺腫瘤中的作用機制尚不十分清楚,本研究將重點探討其在乳腺癌發(fā)生發(fā)展中的作用。
人正常乳腺上皮細胞系MCF-10A,人乳腺癌細胞系MDA-MB-231、MDA-MB-453、MCF-7購自中國科學院細胞庫;mimics miR-3664-5p和ASO-miR-3664-5p及其對照購自上海吉瑪制藥技術有限公司;過表達質粒載體(pcDNA3-NBAT1)和對照質粒載體(pcDNA3-NC)購自天津賽爾生物技術有限公司;MCF-10A專用DMEM/F12培養(yǎng)基購自武漢普諾賽生命科技有限公司;DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清均購自美國Gibco公司;RT及PCR引物均由金唯智公司合成,miR-3664-5p的RT引物序列為5′-GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTGCACTGGATACGACACTCATG-3′;U6的RT引物序列為5′-GTCGTATCCAGTGCAGGGTCCGAGGTATTCGCACTGGATACGACAAAA TATGGAAC-3′;NBAT1上游序列為5′-CTCCACCCATTTGTAAGC-3′,下游序列為5′-AATACCCATGAGTCCATAC-3′;GAPDH的上游序列為5′-TGACTTCAACAGCGACACCCA-3′,下游序列為5′-CACCCTGTTGCTGTAGCCAAA-3′;miR-3664-5p的上游序列為5′-TGCGGAACTCTGTCTTCACTCATG-3′,U6上游序列為5′-TGCGGGTGCTCGCTTCGGCAGC-3′,miR-3664-5p和U6的下游均為5′-CCAGTGCAGGGTCCGAGGT-3′。
細胞系MCF-10A置于含5%馬血清,10 μg/mL胰島素,20 ng/mL表皮生長因子,100 ng/mL霍亂毒素,0.5 μg/mL氫化可的松的DMEM/F12專用培養(yǎng)基中,人乳腺癌細胞系MDA-MB-231、MDA-MB-453、MCF-7均置于含10%FBS的DMEM培養(yǎng)基中,37℃、5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中常規(guī)培養(yǎng)。選擇對數(shù)生長期、生長狀態(tài)良好,表達lncRNA NBAT1最低的MCF-7細胞用于后續(xù)轉染實驗。當MCF-7細胞融合至70%~80%時,pc-NC組和pc-NBAT1組分別轉染pcDNA3-NC載體和pcDNA3-NBAT1載體, pc-NC+mimics NC組、pc-NBAT1+mimics NC組及pc-NBAT1+mimics miR-3664-5p組分別轉染pcDNA3-NC+mimics NC、pcDNA3-NBAT1+mimics NC及pcDNA3-NBAT1+mimics miR-3664-5p,轉染均按照脂質體Lipo8000TM說明書進行。
收集MCF-10A、MDA-MB-231、MDA-MB-453、MCF-7常規(guī)培養(yǎng)細胞,及MCF-7細胞pc-NC組和pc-NBAT1組轉染后48 h細胞,采用Trizol法提取細胞總RNA,經NanoDrop分析儀檢測,OD260/OD280為1.8~2.0。根據(jù)逆轉錄試劑盒說明書將總RNA逆轉錄為cDNA。NBAT1的定量檢測以GAPDH為內參,miR-3664-5p的定量檢測以U6為內參,均采用2-ΔΔCt法計算目的基因相對表達量。
收集MCF-7細胞pc-NC組、pc-NBAT1組轉染后48 h細胞,用RIPA裂解細胞,提取細胞中的總蛋白,采用BCA法測定蛋白濃度。取各組蛋白樣品30 μg進行SDS-PAGE電泳,用PVDF轉膜,加入Caspase 9以及GAPDH一抗(1∶1 000)孵育過夜,加入HRP標記的二抗室溫孵育2 h,TBST洗滌后,在ECL發(fā)光液下顯影,用Bio-rad凝膠成像系統(tǒng)曝光并對圖像進行分析。
采用美國Promega公司的pmirGLO雙熒光素酶報告基因檢測系統(tǒng),分別化學合成lncRNA NBAT1、Caspase 9的3′UTR區(qū)與miR-3664-5p的結合位點序列片段,并插入 pmirGLO luciferase表達載體中,獲得野生型載體pmirGLO/NBAT1和pmirGLO/Caspase 9-UTR,同樣的方法合成突變序列,獲得突變型載體pmirGLO/NBAT1-m和pmirGLO/Caspase 9-mUTR,將pmirGLO/NBAT1和pmirGLO/Caspase 9-UTR野生型載體、pmirGLO/NBAT1-m和pmirGLO/Caspase 9-mUTR突變型載體、mimics miR-3664-5p模擬物或者反義核酸ASO-miR-3664-5p及陰性對照組分別與Lipo8000TM 脂質體混合后轉染293T細胞,轉染48 h后,收集細胞。按照雙熒光素酶報告基因試劑盒說明書,并以海腎熒光值作為內參。計算螢火蟲熒光值與海腎熒光值的比值,評估報告基因在細胞中的相對活力。
MCF-7細胞接種至96孔板中,每孔細胞數(shù)為5×103個。pc-NC組、pc-NBAT1組或pc-NC+mimics NC組、pc-NBAT1+mimics NC組及pc-NBAT1+mimics miR-3664-5p組轉染24 h、48 h、72 h、96 h、118 h后,每孔中同時加入90 μL新鮮的含10%胎牛血清的培養(yǎng)液和10 μL的CCK-8溶液,然后置于37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中反應4 h。用免疫酶標儀測定各孔在450 nm 處的吸光度OD值,以各組平均值反映細胞增殖能力。
pc-NC組、pc-NBAT1組或pc-NC+mimics NC組、pc-NBAT1+mimics NC組及pc-NBAT1+mimics miR-3664-5p組轉染24 h后,200個細胞/孔接種于12孔板,置于37℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),每隔2天換液1次。15天后,棄去培養(yǎng)基,甲醇固定20 min后,每孔加入400 μL的1%結晶紫染色液,室溫染色10 min,水漂洗5 min,觀察實驗結果。
通過在線軟件Starbase分析TCGA數(shù)據(jù)庫發(fā)現(xiàn)lncRNA NBAT1在1 104例乳腺癌組織中的表達量顯著低于其在113例正常乳腺組織中的表達量(P<0.001)(圖1A)。lncRNA NBAT1在正常對照細胞株MCF-10A細胞中表達量最高,在MDA-MB-231和MDA-MB-453細胞中其表達量比MCF-10A低(P<0.001),在MCF-7細胞中其表達量最低(P<0.001)(圖1B)。
運用Targetscan數(shù)據(jù)庫進行了生物信息學分析,預測miR-3664-5p和lncRNA NBAT1及Caspase 9的結合位點(圖2A、2B)。并使用pmirGLO雙熒光素酶報告系統(tǒng)進行了進一步驗證,檢測結果顯示,mimics miR-3664-5p能夠抑制熒光素酶表達(P<0.001),ASO-miR-3664-5p能夠促進熒光素酶表達(P<0.001),但是當miR-3664-5p結合位點突變后,抑制和促進作用均消失(圖2C、2D),進一步證明lncRNA NBAT1可以吸附miR-3664-5p,同時Caspase 9是miR-3664-5p的靶基因。
lncRNA NBAT1過表達載體pcDNA3-NBAT1和對照載體pcDNA3-NC分別轉染乳腺癌細胞株MCF-7,qPCR方法檢測pc-NBAT1組lncRNA NBAT1的表達較pc-NC組增高(P<0.001);qPCR檢測pc-NBAT1組miR-3664-5的表達較pc-NC組降低(P<0.001);Western blot檢測pc-NBAT1組Caspase 9蛋白的表達較pc-NC組增高(P<0.001)(圖3)。
CCK-8和克隆形成檢測過表達lncRNA NBAT1后細胞的增殖能力降低;如果同時將lncRNA NBAT1過表達載體和mimics miR-3664-5p轉染MCF-7細胞,觀察發(fā)現(xiàn)miR-3664-5p過表達能夠緩解過表達lncRNA NBAT1對細胞增殖的抑制效應(圖4)。
圖1 lncRNA NBAT1在組織和細胞系中的相對表達量Figure 1 The expression of lncRNA NBAT1 in breast tissues and breast cell linesNote:A.The expression of lncRNA NBAT1 in breast cancer and normal tissues;B.The expression of lncRNA NBAT1 in breast cancer cell lines and normal cell line.*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001,when compared with the MCF-10A group(n=3).
圖2 lncRNA NBAT1、miR-3664-5p、Caspase 9三者的靶定關系的預測及驗證Figure 2 The predicted binding sites of miR-3664-5p in lncRNA NBAT1 and Caspase 9 by the dual-luciferase reporter systemNote:A.The predicted binding sites of miR-3664-5p in lncRNA NBAT1 and lncRNA NBAT1 mutant sequences;B.The predicted binding sites of miR-3664-5p in Caspase 9-UTR and Caspase 9-mUTR sequences;C.Dual-luciferase reporter analysis for the miR-3664-5p binding to lncRNA NBAT1;D.Dual-luciferase reporter analysis to confirm that the Caspase 9 was a target-gene of miR-3664-5p.***P<0.001,when compared with the mimics NC group(n=3).
圖3 MCF-7細胞過表達NBAT1后對miR-3664-5和caspase9表達的影響Figure 3 The effect of lncRNA NBAT1 on the expression of miR-3664-5 and Caspase 9Note:A.qPCR analysis for the relative expression of lncRNA NBAT1 in MCF-7 cells transfected with pcDNA3-NBAT1 and pcDNA3-NC plasmids;B.qPCR analysis for the relative expression of miR-3664-5p in MCF-7 cells transfected with pcDNA3-NBAT1 and pcDNA3-NC plasmids;C.Western blot analysis for the relative protein expression of Caspase 9 in MCF-7 cells transfected with pcDNA3-NBAT1 and pcDNA3-NC plasmids.***P<0.001,when compared with the pc-NC group(n=3).
圖4 CCK8和克隆形成實驗檢測lncRNA NBAT1對MCF-7細胞的增殖能力影響Figure 4 The effects of lncRNA NBAT1 on proliferation of MCF-7 cells by CCK-8 and colony formating assaysNote:A.The effect of lncRNA NBAT1 on proliferation of MCF-7 cells by CCK8 assay;B.The effect of lncRNA NBAT1 on proliferation of MCF-7 cells by colony formating assay;C.CCK-8 assay for the rescue effect of miR-3664-5p on the proliferation of MCF-7 with lncRNA NBAT1 overexpression;D.Colony formation assay for the rescue effect of miR-3664-5p on the proliferation of MCF-7 with lncRNA NBAT1′s overexpression.***P<0.001,when compared with the pc-NC group(n=3).
lncRNA是一類長度大于200個核苷酸的內源性非編碼單鏈RNA,lncRNA可以通過染色質重塑、轉錄調控以及轉錄后調控等方式參與機體的表觀遺傳調控。lncRNA參與了細胞增殖分化、神經發(fā)育、免疫穩(wěn)態(tài)、腫瘤發(fā)生等生命過程[6]。lncRNA在乳腺癌的研究有許多進展,lncRNA FBXL19-AS1在乳腺癌中高表達,通過抑制has-miR-718,促進乳腺癌細胞的增殖和侵襲[11]。lncRNA-PANDAR在乳腺癌組織及細胞系中高表達,可以抑制p16的表達,促進乳腺癌細胞的增殖[17]。lncRNA NBAT1在乳腺癌中的作用并不清楚,研究其在乳腺癌發(fā)生、發(fā)展中的作用,將有助于更加全面地了解乳腺癌發(fā)生發(fā)展的機制。
在本研究中,通過對TCGA數(shù)據(jù)庫中l(wèi)ncRNA NBAT1的表達分析比較,發(fā)現(xiàn)lncRNA NBAT1低表達于乳腺癌組織當中。lncRNA NBAT1可能在乳腺癌的發(fā)生發(fā)展過程具有一定的調控作用。為進一步探討lncRNA NBAT1在乳腺癌細胞中的生物學功能,本研究應用重組質粒在乳腺癌MCF-7細胞中特異性過表達lncRNA NBAT1,通過CCK-8和克隆形成實驗進一步證實,過表達lncRNA NBAT1對MCF-7細胞增殖能力有明顯抑制作用。lncRNA的作用機制較為復雜,其中一種重要機制即是作為分子海綿與microRNA結合進而抑制其對下游相應靶mRNA的沉默效應。通過Targetscan在線生物信息學網站的檢索表明,miR-3664-5p可能是lncRNA NBAT1的結合分子之一。綜上可推測,lncRNA NBAT1的抗乳腺癌細胞增殖作用可能是通過吸附miR-3664-5p的來實現(xiàn)的。為證實這一假說,本研究通過過表達MCF-7細胞內lncRNA NBAT1,采用RT-qPCR檢測發(fā)現(xiàn),過表達lncRNA NBAT1可明顯抑制MCF-7細胞內miR-3664-5p的表達水平。Targetscan在線預測網站分析表明Caspase 9基因是miR-3664-5p的下游抑制靶點。Caspase 9是內源性凋亡通路中關鍵蛋白酶,處在凋亡相關基因Caspase頂端[18]。Caspase 9可以激活細胞凋亡途徑中的最關鍵酶Caspase 3,從而促進細胞的凋亡。因此,它的活化對于整個內源性凋亡通路的激活尤為重要。通過進一步研究發(fā)現(xiàn),在過表達lncRNA NBAT1后MCF-7細胞內Caspase 9的表達水平也有所提高,細胞增殖受到明顯抑制。至此,本研究初步表明lncRNA NBAT1的作用機制是通過吸附miR-3664-5p發(fā)揮作用,進而釋放對Caspase 9的抑制作用而實現(xiàn)的。同時通過雙熒光素酶報告系統(tǒng)進一步驗證miR-3664-5p和Caspase 9的靶向關系。
綜上所述,lncRNA NBAT1在乳腺癌組織中表達降低,主要通過減少miR-3664-5p的吸附,進而抑制Caspase 9的表達而促進了乳腺癌細胞的增殖。lncRNA NBAT1作為與乳腺癌密切相關的新分子,有可能成為乳腺癌治療的潛在靶點。