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UHPLC-Oribtrap/HRMS技術(shù)分析干姜中非揮發(fā)性化學(xué)成分在炮制前后的變化

2020-05-29 09:57陳琛耿劍亮匡海學(xué)王秋紅
關(guān)鍵詞:干姜酚類炮制

陳琛,耿劍亮,匡海學(xué),王秋紅

(1.廣東藥科大學(xué)中藥學(xué)院,廣東 廣州 510006;2.黑龍江中醫(yī)藥大學(xué)黑龍江省中藥及天然藥物藥效物質(zhì)基礎(chǔ)研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/教育部北藥基礎(chǔ)與應(yīng)用研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,黑龍江 哈爾濱 150040)

干姜為姜科(Zingiberaceae)植物姜ZingiberoficinaleRosc.的干燥根莖,是中醫(yī)臨床常用溫里藥,具有溫中散寒、回陽通脈、溫肺化飲的功效。干姜經(jīng)過砂燙炮制后成為炮姜,具有溫中散寒、溫經(jīng)止血的功效。其辛燥之性較干姜弱,溫里之力不如干姜迅猛,但作用緩和持久,長于溫中止痛、止瀉和溫經(jīng)止血[1-2]。現(xiàn)代研究表明干姜具有抗炎鎮(zhèn)痛、抗菌止瀉、抗缺氧、抗腫瘤、心肌保護(hù)等藥理作用[3-7]。炮姜則具有止血止痛、抗炎、抗?jié)兊茸饔肹8]。

干姜中非揮發(fā)性化學(xué)成分含量較高,在煎煮過程中相對穩(wěn)定,對于研究干姜的有效成分、藥材質(zhì)量控制以及炮制原理具有重要意義,主要包括姜辣素類、二芳基庚烷類、黃酮類及植物多糖等。目前國內(nèi)外學(xué)者對姜科植物化學(xué)成分開展了多方面研究[9-13]?;瘜W(xué)成分的改變是中藥炮制前后功效變化的基礎(chǔ)。炮姜的性味歸經(jīng)及功效與干姜均有明顯不同,說明其成分也發(fā)生了質(zhì)和量的變化,目前對于干姜炮制過程化學(xué)成分變化的研究相對較少。本研究基于超高效液相色譜-靜電場軌道阱高分辨質(zhì)譜聯(lián)用(UHPLC-Oribtrap/HRMS)技術(shù),在鑒定干姜非揮發(fā)性成分的基礎(chǔ)上,發(fā)現(xiàn)炮制前后變化的特征化學(xué)成分,并對其進(jìn)行抗炎相關(guān)的藥理活性評價(jià),以期為揭示干姜及炮姜藥效作用機(jī)制,完善炮制工藝及提高飲片質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)提供科學(xué)依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 藥材與試劑

干姜購買于廣州金屬倉藥材集散中心,由廣東藥科大學(xué)李書淵教授鑒定為姜科(Zingiberaceae)植物姜ZingiberoficinaleRosc.的干燥根莖);炮姜根據(jù)2015版《中國藥典》四部通則0213炮制而成;乙腈、甲醇(質(zhì)譜純,美國Thermo Fisher公司);甲酸(質(zhì)譜純,德國默克公司)。

1.2 儀器與材料

Thermo Orbitrap Fusion靜電場軌道阱高分辨質(zhì)譜儀(美國Thermo Fisher公司);Dionex Ultimate 3000超高效液相色譜儀(美國Thermo Fisher公司);Waters ACQUITY UPLC BEH C18色譜柱(2.1 mm×100 mm,1.7 μm,美國Waters公司);湘儀H1750R臺式高速冷凍離心機(jī)(湖南湘儀公司);電子分析天平(德國Mettler Toledo公司);CVE-3000型離心濃縮裝置(上海愛朗儀器公司);Milli-Q Integral 5超純水系統(tǒng)(美國Millipore公司)。RAW264.7細(xì)胞,來源于中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)細(xì)胞中心。DMEM高糖細(xì)胞培養(yǎng)基(美國Hyclone公司),胎牛血清(上海雙洳生物科技有限公司),脂多糖(南京大治生物科技有限公司),二甲基亞砜(上海阿拉丁試劑有限公司),24孔細(xì)胞培養(yǎng)板、96孔細(xì)胞培養(yǎng)板(廣州潔特生物有限公司),0.25%胰酶細(xì)胞消化液(美國Gibco公司)。

1.3 樣品前處理方法

樣本配制方法:干姜和炮姜研碎后過0.45 mm篩網(wǎng),得干姜與炮姜粉末。稱取干姜、炮姜粉末各200 mg置于10 mL試管中,加入2 mL體積分?jǐn)?shù)為80%的甲醇水溶液,超聲30 min。取適量1 mL上清液于1.5 mL EP管中,12 000 r/min離心10 min,吸取上清液揮干,殘?jiān)?00 μL體積分?jǐn)?shù)為50%的甲醇復(fù)溶,12 000 r/min離心10 min,吸取上清液60 μL,轉(zhuǎn)移到含有內(nèi)插管的進(jìn)樣小瓶中待測。所有測試樣本各取20 μL,混勻后作為質(zhì)控樣本(QC)。

1.4 液相色譜分析條件

采用Waters ACQUITY UPLC BEH C18色譜柱(2.1 mm×100 mm,1.7 μm),以乙腈為流動相A、以0.1%甲酸水溶液為流動相B,梯度洗脫:0~2 min,10%~20%A;2~15 min,20%~85%A;15~15.1 min,85%~100%A;15.1~19 min,100%A;19~19.1 min,100%~10%A;19.1~21 min,10%A。流速0.4 mL/min,柱溫30 ℃,進(jìn)樣量2 μL。

1.5 質(zhì)譜分析條件

熱噴霧離子源(HESI),正離子掃描模式,噴霧電壓:3.20 kV,離子傳輸管溫度:300 ℃,蒸發(fā)溫度:320 ℃,鞘氣:30 L/min,輔助氣:10 L/min。負(fù)離子掃描模式,噴霧電壓:2.80 kV,離子傳輸管溫度:300 ℃,蒸發(fā)溫度:320 ℃,鞘氣:20 L/min,輔助氣:6 L/min。掃描方式:Full MS/ddMS2,一級質(zhì)譜掃描范圍:120~1 200m/z,分辨率:120 000,碎裂能量:15、25和35,動態(tài)扣除時(shí)間:6 s。

1.6 數(shù)據(jù)處理

Orbitrap Fusion Tune軟件、Xcalibur 4.1軟件(美國Thermo Fisher公司)用于質(zhì)譜控制和數(shù)據(jù)采集,Compound Discoverer 3.0軟件(美國Thermo Fisher公司)用于色譜峰提取,MS Frontier 8.0軟件(美國Thermo Fisher公司)用于化合物二級碎片結(jié)構(gòu)的推測與鑒定,Simca-P 14(瑞典Umetrics公司)軟件用于多元統(tǒng)計(jì)分析。

1.7 活性測試

將細(xì)胞以0.25%胰酶(含0.02%EDTA)消化,離心收集,用含血清的DMEM培養(yǎng)基調(diào)整細(xì)胞密度為2×106mL-1,均勻接種至96孔板,每孔100 μL,培養(yǎng)24 h取出96孔板,吸去原來的培養(yǎng)基,加入以無血清DMEM配制的含藥培養(yǎng)基(溶劑對照組:每孔加入200 μL含0.1%DMSO的無血清DMEM培養(yǎng)基;模型組:每孔加入198 μL含0.1%DMSO的無血清DMEM培養(yǎng)基;給藥樣品組:每孔加198 μL含不同濃度藥物的培養(yǎng)基),同時(shí)設(shè)3個復(fù)孔,加藥后將96孔板放入CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)1 h后取出,除空白對照組、溶劑對照組外,其余每孔加入2 μL的100 μg/mL的LPS(終濃度為1 μg/mL)后放入CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱培養(yǎng)22 h。

NO的Griess檢測步驟:培養(yǎng)22 h后,取100 μL細(xì)胞培養(yǎng)液上清液加到新的96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,加入50 μL Griess A試劑(1%對氨基苯磺酰胺的5%H3PO4水溶液),混勻,反應(yīng)2 min。加入50 μL Griess B試劑(0.1%N-1-萘基乙二胺)避光反應(yīng)10 min。在540 nm處測每孔的光吸收值(OD540)。IC50的計(jì)算軟件為Graphad Prism 7.0,計(jì)算方法采用線性回歸分析。

抑制率計(jì)算公式:抑制率=(模型組NO平均含量-樣品組NO平均含量)/(模型組NO平均含量-DMSO組NO平均含量)×100%。

2 結(jié)果

2.1 基于UHPLC-Oribtrap/HRMS的干姜特征化學(xué)成分鑒定

在優(yōu)化提取方式及質(zhì)譜測試參數(shù)后,采集得到干姜在正/負(fù)離子掃描模式下的總離子流色譜圖如圖1所示,根據(jù)文獻(xiàn)調(diào)研、數(shù)據(jù)庫檢索、碎裂方式解析及標(biāo)準(zhǔn)品比對等方法共鑒定出74個化合物,其中姜辣素類45個,二苯基庚烷類28個,黃酮類1個,如表1所示。選擇具有代表性結(jié)構(gòu)特征的成分對其二級質(zhì)譜碎裂方式進(jìn)行分析,如圖2所示。在正離子HCD碎裂模式下,利用高分辨(MS,R=120 000;MS2,R=30 000)的DDA數(shù)據(jù)采集模式對姜辣素類成分碎裂規(guī)律進(jìn)行分析,姜酚類及姜烯酚類化合物通過C3-C4斷裂生成m/z=179.09(C10H11O3)的特征碎片;C5-C6斷裂并脫水生成m/z=177.09(C10H13O2)的特征碎片;C1-C2斷裂生成m/z=137.06(C8H9O2)或m/z=151.07(C9H11O2)的特征碎片。二苯基庚烷類化合物通過相同的斷裂方式生成相應(yīng)特征碎片離子。結(jié)合精確分子質(zhì)量推測分子式和不飽和度(姜酚及姜烯酚類Ω=5或6;二苯基庚烷類Ω≥9)能夠?qū)@類特征性成分進(jìn)行鑒定。

表1 干姜中鑒定的特征化合物信息

(續(xù)表一)

(續(xù)表二)

(續(xù)表三)

(續(xù)表四)

2.2 干姜炮制前后差異成分的篩選與鑒定

最終提取出398個色譜峰。通過Simca-P軟件將數(shù)據(jù)結(jié)果進(jìn)行無監(jiān)督的主成分分析(PCA),得到干姜、炮姜和QC樣本的PCA得分圖(圖3),QC樣本聚集度高說明在實(shí)驗(yàn)過程中儀器穩(wěn)定性良好、數(shù)據(jù)可靠。干姜組和炮姜組分別位于第三和第四象限內(nèi),表明2組樣本之間在化學(xué)成分種類和含量方面存在明顯差異。

表2 干姜炮制前后化合物變化的特征性成分

2.3 干姜炮制前后差異成分的活性評價(jià)

結(jié)果顯示(表3),姜烯酚類化合物(1~4)對NO的分泌的抑制作用強(qiáng)于姜酚類(5~6)及姜酮類化合物(7~8),且化合物1~2的IC50值小于10 μmol/L,說明這2個化合物均有良好的體外抗炎活性。

表3 化合物體外抗炎(NO)的IC50的測定(μmol·L-1)

3 討論

本研究利用UHPLC-Orbitrap/HRMS技術(shù),對干姜炮制前后非揮發(fā)性差異化學(xué)成分進(jìn)行分析。從干姜中鑒定了72個化合物,包括姜辣素類45個,二苯基庚烷類26個,黃酮類1個。干姜中揮發(fā)性成分沸點(diǎn)較低,在炮制過程中會受熱流失,使炮姜辛散之性減弱。本研究采用代謝組學(xué)多變量分析方法描繪干姜炮制前后非揮發(fā)性成分的變化趨勢。結(jié)果顯示11個化合物在炮制后相對含量有顯著差異,炮制后干姜中姜烯酚類化合物相對含量升高趨勢明顯。姜烯酚類物質(zhì)是干姜中主要辣味成分之一。鮮姜中姜烯酚類成分含量相對較低,我們推測在炮制加熱的過程中,由于姜酚類化合物C3位羰基和C5位羥基化學(xué)性質(zhì)不穩(wěn)定,能夠發(fā)生脫水反應(yīng)進(jìn)而生成姜稀酚類物質(zhì)。此外有報(bào)道干姜貯存過程中姜烯酚類成分含量也會有所提高,這是由于干姜為根部入藥,植物根系中普遍存在共生菌類,所以除了受熱分解外在貯存過程中微生物也可能參與干姜化學(xué)成分的代謝轉(zhuǎn)化。這說明姜烯酚類成分的含量對于干姜和炮姜的藥效具有重要作用。藥理研究表明干姜中姜辣素類成分能夠有效緩解結(jié)腸炎、胃潰瘍等消化系統(tǒng)疾病的病理癥狀[14-15]。炮姜臨床上主要用于腹痛、腹瀉和多種出血疾病的治療。炎癥是引起組織毛細(xì)血管破裂出血的重要病理因素。根據(jù)干姜炮制前后差異化合物分析結(jié)果,本研究利用LPS誘導(dǎo)小鼠巨噬細(xì)胞系RAW264.7細(xì)胞模型,以抑制炎性細(xì)胞因子NO的分泌為評價(jià)指標(biāo),對干姜炮制前后8個含量較高的姜烯酚類和姜酮類差異成分的抗炎活性進(jìn)行了評價(jià),結(jié)果顯示姜烯酚類化合物具有良好的抗炎活性。這提示干姜炮制后姜烯酚類成分含量提高是炮姜發(fā)揮抗炎止血藥效作用的物質(zhì)基礎(chǔ)。

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