李丹陽，李宇輝，高云云，閆藝，王俊鋼*，盧士玲*

1(石河子大學(xué) 食品學(xué)院，新疆 石河子，832000) 2(新疆農(nóng)墾科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所，新疆 石河子，832000) 3(新疆農(nóng)墾科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，新疆 石河子，832000)

新疆風(fēng)干肉是新疆游牧民族的特色肉制品之一，其中以塔城風(fēng)干肉最為有名。風(fēng)干肉又分為風(fēng)干牛肉、風(fēng)干馬肉、風(fēng)干羊肉[1]。新疆風(fēng)干肉的制作主要在秋冬季節(jié)，以牛肉、馬肉或羊肉為原料，進(jìn)行切塊、短時(shí)腌制，再經(jīng)風(fēng)干后熟制作而成，屬于干腌發(fā)酵肉制品。風(fēng)干肉風(fēng)味獨(dú)特，其揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)主要來源于脂肪氧化、香辛料添加及氨基酸Strecker降解[2]。氨基酸的Strecker降解主要是使肉中蛋白質(zhì)經(jīng)過降解形成多肽、小肽、氨基酸和胺，蛋白質(zhì)降解主要是由于肉中內(nèi)源性的酶以及產(chǎn)蛋白酶微生物的催化[3]。

產(chǎn)蛋白酶乳酸菌所產(chǎn)的蛋白酶可以在肉制品發(fā)酵過程中對蛋白質(zhì)進(jìn)行降解，是肉制品風(fēng)味形成的基礎(chǔ)。TODOROV等[4]研究表明，乳酸菌通過引起pH降低來影響蛋白質(zhì)降解，從而導(dǎo)致肌肉蛋白酶的活性增加。更重要的是，乳酸菌所產(chǎn)的蛋白酶吸收了由肌肉蛋白水解產(chǎn)生的肽，并將這些肽在細(xì)胞內(nèi)分裂成氨基酸，轉(zhuǎn)化為芳香成分。乳酸菌蛋白水解系統(tǒng)按其功能可分為3個(gè)部分：首先，細(xì)胞外蛋白酶作用于底物蛋白并將肉蛋白分解為肽；第二，肽酶水解肽；最終，分解產(chǎn)物穿過細(xì)胞質(zhì)膜[5]肽是肉味物質(zhì)的前體[6]。乳酸菌蛋白酶在發(fā)酵過程中促進(jìn)了游離氨基酸和短肽濃度的增加[7-8]，對發(fā)酵肉的成熟具有積極作用[9]，而其代謝產(chǎn)物則促進(jìn)了風(fēng)味的形成[10]。周才瓊等[11]對酸肉發(fā)酵過程中揮發(fā)性風(fēng)味物質(zhì)形成的研究得出結(jié)論，通過微生物生長繁殖分泌胞外酶，導(dǎo)致脂肪及蛋白質(zhì)降解，產(chǎn)生與發(fā)酵風(fēng)味形成有關(guān)的醛、酮、醇、酸等物質(zhì)，并發(fā)生酯化反應(yīng)，形成了酸肉的特有風(fēng)味。ESSID等[12]從突尼斯傳統(tǒng)咸肉中分離出具有良好抗菌性和耐酸性的乳酸菌，并且所分離的乳酸菌都具有良好的水解酪蛋白的能力。林偉濤等[13]從中式發(fā)酵香腸中分離篩選出具有當(dāng)?shù)靥厣淖匀话l(fā)酵香腸風(fēng)味乳酸菌，它們都具有很好的產(chǎn)酸和產(chǎn)酶特性。SUN等[14]從哈爾濱干香腸中分離出1株乳酸菌產(chǎn)蛋白酶可以水解肌原纖維和肌漿蛋白，所產(chǎn)蛋白酶在pH 6和40 ℃下具有活性。有關(guān)新疆風(fēng)干肉中分離乳酸菌的研究主要集中在乳酸脫氫酶、亞硝酸還原酶和酯酶的特性方面[1]，對新疆傳統(tǒng)風(fēng)干肉中產(chǎn)蛋白酶乳酸菌對其品質(zhì)影響的機(jī)制尚不明確。

本實(shí)驗(yàn)以新疆風(fēng)干肉中高產(chǎn)蛋白酶乳酸菌為研究對象，系統(tǒng)研究了菌株產(chǎn)酶特性和蛋白酶性質(zhì)，以期為風(fēng)干肉的工業(yè)化生產(chǎn)提供理論數(shù)據(jù)。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)原料、培養(yǎng)基與試劑

1.1.1 實(shí)驗(yàn)原料

風(fēng)干牛肉和風(fēng)干馬肉樣品：購于新疆塔城、額敏、富蘊(yùn)、托里地區(qū)。

1.1.2 培養(yǎng)基

MRS肉湯、MRS固體培養(yǎng)基：青島海博生物技術(shù)有限公司；MRS脫脂乳固體培養(yǎng)基：在MRS固體培養(yǎng)基中加入體積分?jǐn)?shù)為1%的脫脂乳。

1.1.3 試劑

福林試劑、無水Na2CO3、三氯乙酸、NaOH、濃HCl、H3PO4、乳酸、乳酸鈉、冰乙酸、干酪素、L-酪氨酸、無水乙醇、EDTA等，均為國產(chǎn)分析純；細(xì)菌DNA提取試劑盒，天根生化科技(北京)有限公司；2×TaqMaster Mix (Dye Plus)，南京諾唯贊生物科技有限公司；瓊脂糖西班牙，Biowest公司。

1.2 儀器與設(shè)備

22331型高速冷凍離心機(jī)，德國Eppendorf AG公司；HP1020凝膠成像系統(tǒng)，美國BIO-RAD伯樂公司；T100型PCR儀，美國BIO-RAD伯樂公司；CX23LEDRFS1C生物顯微鏡，奧林巴斯(廣州)工業(yè)有限公司；LDZX-30KBS立式壓力蒸汽滅菌器，上海申安醫(yī)療器械廠；EONC酶標(biāo)儀，美國伯騰儀器有限公司；水平電泳槽(小型)，美國Bio-Rad公司；核酸測定儀，美國賽默飛世爾科技公司；UB-7型pH計(jì)，美國賽多利斯丹佛公司。

1.3 實(shí)驗(yàn)方法

1.3.1 乳酸菌的篩選分離、純化與鑒定

參考林偉濤等[13]的方法并作適當(dāng)修改。在無菌條件下取10 g風(fēng)干肉樣品充分剪碎，放入滅菌后的90 mL生理鹽水中，37 ℃、120 r/min培養(yǎng)24 h。吸取1mL菌液用生理鹽水進(jìn)行10倍梯度稀釋，每次稀釋均需用旋渦振蕩器儀充分混勻并更換無菌槍頭。分別吸取10-5～10-7梯度的稀釋液200 μL稀釋液均勻涂布于MRS培養(yǎng)基中，每個(gè)梯度做3個(gè)平行，于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)48 h。挑取不同形態(tài)的菌落進(jìn)行劃線培養(yǎng)，重復(fù)劃線多次，直至用顯微鏡觀察至純種，記錄其菌落、細(xì)胞形態(tài)。挑選純化好的菌株進(jìn)行革蘭氏染色以及H2O2實(shí)驗(yàn)，選擇革蘭氏染色呈陽性，H2O2實(shí)驗(yàn)呈陰性的乳酸菌用體積分?jǐn)?shù)50%甘油/菌液(體積比為1∶1)于-80 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>

1.3.2 乳酸菌菌株生物學(xué)鑒定

1.3.2.1 乳酸菌DNA的提取

使用細(xì)菌基因組 DNA 提取試劑盒，北京天根生化科技限公司。按照說明書操作步驟提取樣品中乳酸菌DNA。

1.3.2.2 16S rDNA測序鑒定

采用通用引物27f(5’-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3’)和1492r:(5’CTACGGCTACCTTGTTACGA-3’)，預(yù)變性95 ℃ 5 min；變性94 ℃ 30 s，退火50 ℃ 30 s，延伸72 ℃ 4 min共35個(gè)循環(huán)；最后72 ℃延伸10 min[15]。PCR產(chǎn)物經(jīng) 1.0%瓊脂糖凝膠電泳檢測后，送往上海生工生物科技有限公司進(jìn)行測序，測序結(jié)果提交至 GenBank 數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行序列同源性比對(BLAST)，并用 MAGE 7.0 軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。

1.3.3 產(chǎn)蛋白酶乳酸菌的篩選

1.3.3.1 產(chǎn)蛋白酶乳酸菌的初篩

將保藏好的菌株以4.0%的接種量接入MRS液體培養(yǎng)基，于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后，在MRS固體培養(yǎng)基上進(jìn)行多次劃線至單菌落，挑單菌落到MRS液體培養(yǎng)基中于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。參考SUN等[14]方法并作適當(dāng)修改，采用牛津杯法初篩產(chǎn)蛋白酶高的菌株，配制好脫脂乳MRS固體培養(yǎng)基進(jìn)行倒板，將滅好菌的牛津杯放在培養(yǎng)基上，吸取已活化好的乳酸菌10 μL加入牛津杯中，37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h后觀察并測量透明圈的直徑。

1.3.3.2 產(chǎn)蛋白酶乳酸菌的復(fù)篩

參照張曉燕[16]的方法初篩，得到22株產(chǎn)透明圈大的菌株進(jìn)行蛋白酶活力的測定。

1.3.3.3 粗酶液的提取

參照FARHIDIAN等[17]的方法分離粗蛋白酶，進(jìn)行少量修改。菌液添加到干凈的離心管中，然后在4 ℃下以 10 000 r/min 離心10 min。所獲得的上清液是粗制的細(xì)胞外蛋白酶提取物，保存在4 ℃ 下直至后續(xù)使用(12 h內(nèi)使用)。

1.3.3.4 蛋白酶活力的測定[16]

按照國標(biāo)GB/T23527—2009規(guī)定的福林酚顯色法(Folin)測酶活力。蛋白酶活性定義：在pH 7.0和40 ℃下，每分鐘水解酪蛋白產(chǎn)生1 μg酪氨酸，定義為1個(gè)蛋白酶活力單位。同一個(gè)樣品測3次，取平均值。

酶液適當(dāng)稀釋，取4支試管編號(hào)，1號(hào)為空白對照，分別加入1 mL酶液，立即加入0.4 mol/L TCA溶液2 mL，使酶失活。另3支試管中加入pH 7.0、質(zhì)量濃度為20 g/L的酪蛋白溶液1 mL，充分振蕩后，置于40 ℃恒溫水浴中保溫反應(yīng)10 min后，取出加入0.4 mol/L TCA溶液2 mL，終止反應(yīng)。同時(shí)在1號(hào)試管中加入20 g/L酪蛋白溶液1 mL，混勻后放入水浴中繼續(xù)保溫20 min，取出冷凍離心除去反應(yīng)沉淀，取離心后濾液1 mL移入干凈的4支新試管中，再加入0.4 mol/L Na2CO3溶液5 mL和稀釋度為1∶2的Folin試劑1 mL，充分搖勻，保溫顯色20 min后，迅速冷卻測定吸光值(OD680nm)。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線，得到酪氨酸相當(dāng)量。按公式(1)計(jì)算：

(1)

式中:K,標(biāo)準(zhǔn)曲線斜率的倒數(shù)；4,4 mL反應(yīng)液取出 1 mL測定(即 4倍)；n,酶液稀釋的倍數(shù)；10,反應(yīng)10 min。

1.3.4 乳酸菌生物學(xué)特性分析

1.3.4.1 菌株最適生長溫度

參照桑鵬等[18]的方法并做適當(dāng)修改。按4.0%的接種量接于MRS液體培養(yǎng)基中，置于不同的溫度(25、30、37、40、50、55、60 ℃)下?lián)u床培養(yǎng) 24 h，然后在波長600 nm 處測定各個(gè)溫度下菌株生長的吸光度值，以確定菌株的最適生長溫度。

1.3.4.2 pH對乳酸菌生長的影響

參考張大為等[19]的方法并作適當(dāng)修改。用冰乙酸將MRS液體培養(yǎng)基的pH值分別調(diào)節(jié)為1.5、2.0、2.5、3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5，以pH為6.0的自然培養(yǎng)作為對照，每個(gè)梯度3個(gè)平行。向液體培養(yǎng)基中接種分離純化的乳酸菌，放于 37 ℃的培養(yǎng)箱培養(yǎng) 24 h，測定600 nm處的吸光值。

1.3.4.3 乳酸菌耐鹽能力的評(píng)價(jià)

參考張大為等[19]的方法并作適當(dāng)修改。向質(zhì)量濃度為10、20、30、40、50、 60和70 g/L的 MRS 液體培養(yǎng)基中接種分離純化的乳酸菌，各留1支做空白試驗(yàn)，放于37 ℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)24 h，在波長為600 nm處測量吸光值。

1.3.5 蛋白酶酶學(xué)性質(zhì)的研究

1.3.5.1 溫度對酶活力的影響[14]

以10 000 r/min，4 ℃，10 min提取粗酶液，分別在0～60 ℃條件下測定酶活力。

1.3.5.2 pH對酶活力的影響[14]

以10 000 r/min，4 ℃，10 min提取粗酶液，用不同緩沖液調(diào)整粗酶液的pH為0～11，在最適溫度下測定酶活力。

1.3.5.3 金屬離子和抑制劑對蛋白酶活性的影響

參照SUN等[14]的方法并作適當(dāng)修改。金屬離子和抑制劑對蛋白酶活性的影響的實(shí)驗(yàn)進(jìn)行3次平行，3次重復(fù)。將濃度為1和10 mmol/L不同的金屬離子(Na+、K+、Mg2+、Ca2+、Mn2+、Zn2+、Cu2+、Fe2+和Fe3+)和抑制劑EDTA溶解在 pH值為6.8的0.02 mol/L磷酸鹽緩沖液中的20 g/L酪蛋白溶液中，以測定其對蛋白酶活性的影響。隨后，將粗酶液與每種離子的氯化物鹽溶液(1 mL)或蛋白酶抑制劑在37 ℃孵育30 min，然后對蛋白酶的活力進(jìn)行測定。以沒有添加任何金屬離子或抑制劑的蛋白酶活性定義為 100%,作為對照。

1.4 數(shù)據(jù)與處理

使用Origin 2017作圖，利用SPSS 25.0進(jìn)行差異性分析；實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)均進(jìn)行3次平行3次重復(fù)，以平均值±標(biāo)準(zhǔn)偏差表示，利用 MEGA 7.0軟件構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。數(shù)據(jù)分析過程中，當(dāng)P<0.05，具有顯著性差異。

2 結(jié)果與分析

2.1 乳酸菌的分離與鑒定

從樣品中共分離得到161株純培養(yǎng)物，經(jīng)過革蘭氏染色和過氧化氫酶生理生化實(shí)驗(yàn)，初步鑒定149株乳酸菌。通過16S rDNA基因檢測分析，確定149株乳酸菌。其中優(yōu)勢菌種為糞腸球菌39株約占26%，乳酸乳球菌28株約占19%，格氏乳球菌22株約占15%，植物乳桿菌18株約占12%，其余分別為戊糖片球菌10株、耐久腸球菌9株、腸系膜明串珠菌8株、路德維希腸桿菌6株、發(fā)酵乳桿菌5株、副干酪乳桿菌3株、羅伊氏乳桿菌1株。

2.2 產(chǎn)蛋白酶乳酸菌的篩選

根據(jù)制作酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的方法，得出酪氨酸標(biāo)準(zhǔn)曲線線性回歸方程為y=0.005 2x-0.004 1，線性相關(guān)系數(shù)R2=0.999 2，表明線性關(guān)系良好。

在所篩選的乳桿菌中初篩出22株在脫脂乳MRS瓊脂培養(yǎng)基中有明顯透明圈的菌株，如圖1所示。用福林酚法對初篩的22株菌株產(chǎn)蛋白酶活性進(jìn)行定量，實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示出5株產(chǎn)蛋白酶較高的菌株分別是乳酸乳球菌A-6、A-18，格氏乳球菌B-2，耐久腸球菌G-11，戊糖片球菌C-1。菌株產(chǎn)蛋白酶活力見表1。

a-空白;b-脫脂乳瓊脂培養(yǎng)基;c-脫脂乳MRS培養(yǎng)基圖1 乳酸菌水解脫脂乳產(chǎn)生透明圈的情況Fig.1 The transparent circles produced by the hydrolysisof skim milk by lactic acid bacteria

表1 菌株產(chǎn)蛋白酶的酶活力Table 1 Activity of protease produced by the strain

菌株酶活力/(U·mL-1)菌株酶活力/(U·mL-1)乳酸乳球菌A-2415.33±0.98de格氏乳球菌E-1212.68±1.21bc乳酸乳球菌A-169.89±0.12a糞腸球菌F-817.26±0.22e糞腸球菌F-612.33±1.01bc糞腸球菌F-1319.98±0.39fg屎腸球菌F-718.96±0.43f耐久腸球菌G-1127.79±0.49h植物乳桿菌J-1310.22±0.78b耐久腸球菌K-318.43±0.74f植物乳桿菌J-313.42±0.13c耐久腸球菌K-713.66±0.59c植物乳桿菌C-1818.26±0.56f戊糖片球菌C-130.77±0.43i乳酸乳球菌A-628.34±0.45hi戊糖片球菌A-31-115.43±0.42de乳酸乳球菌A-1832.46±0.70j乳酸乳球菌E-720.21±0.41g格氏乳球菌B-228.97±0.32hi乳酸乳球菌E-1518.99±0.59f格氏乳球菌E-814.35±0.61d格氏乳球菌E-1815.34±0.67de

注: 同一欄中不同字母表示有顯著性差異(P<0.05)

2.3 菌株生物學(xué)特性分析

2.3.1 菌株的最適生長溫度

圖2為溫度對菌株的影響。從圖2可知，5株菌在25～40 ℃，隨著溫度的上升生長量也迅速上升(P<0.05)，乳酸菌在40 ℃，MRS液體培養(yǎng)基中，600 nm下的吸光值達(dá)到最大，說明5株菌的最適生長溫度都為40 ℃左右。在40 ℃以后，菌株的生長量隨著溫度的升高逐漸下降，到45 ℃之后5株菌幾乎都停止生長(P>0.05)。在整個(gè)考察范圍內(nèi)菌株A-18具有較好的生長活性。

圖2 溫度對菌株生長的影響Fig.2 Effect of temperature on strain growth

2.3.2 pH對菌株生長的影響

乳酸菌的大量繁殖使得肉中pH降低[20]，因此確定菌株的耐酸性十分重要。將5株菌株接種于不同pH的培養(yǎng)基中，培養(yǎng)24 h。從圖3可以看出，5株菌中G-11的耐酸能力較弱，其余4株菌A-6、A-18、B-2、C-1都具有較好的耐酸能力，在pH值為3.0～3.5的范圍內(nèi)仍能生長，在pH值為1.5～2.5時(shí)菌株基本不生長。羅強(qiáng)等[21]在乳酸菌耐酸能力實(shí)驗(yàn)中對乳酸菌在pH 2.0條件下生長情況進(jìn)行研究，發(fā)現(xiàn)pH 2.0時(shí)菌株存活率在70%，這可能是不同乳酸菌對酸的耐受性是不一致的。翟磊等[24]在乳酸菌耐酸能力實(shí)驗(yàn)中得出在pH低于2.0時(shí)菌株基本不生長，在pH值為3.0～3.5的范圍內(nèi)仍能生長。這與本實(shí)驗(yàn)研究結(jié)果相似。通過分析比較得到5株菌在整個(gè)pH值考察范圍內(nèi)，菌株A-18和菌株C-1的耐酸能力較強(qiáng)(P<0.05)。

圖3 不同pH值對菌株生長的影響Fig.3 Influence of different pH values on strain growth

2.3.3 菌株耐鹽能力

鹽脅迫引起的滲透壓變化會(huì)引起乳酸菌細(xì)胞結(jié)構(gòu)損傷，導(dǎo)致細(xì)胞生理代謝活動(dòng)紊亂甚至死亡，因此，乳酸菌在鹽脅迫條件下生存、生長和代謝的能力在食品發(fā)酵過程中是非常重要的[23]。將5株菌分別接種于不同鹽濃度的MRS液體培養(yǎng)基中，37 ℃培養(yǎng)24 h考察各菌株對不同鹽濃度的耐受性,如圖4所示。

圖4 不同鹽濃度對菌株生長的影響Fig.4 Effects of different salt concentrations on strain growth

5株菌隨著鹽質(zhì)量濃度和發(fā)酵液滲透壓的增加，生長逐步受到抑制，在鹽質(zhì)量濃度為10～30 g/L的范圍內(nèi)時(shí)，5株菌均生長良好，在30～40 g/L的范圍內(nèi)時(shí)，菌株生長受到了抑制。鹽質(zhì)量濃度在40 g/L以上時(shí)菌株停止生長(P<0.05)。張大為等[19]在乳酸菌耐鹽能力實(shí)驗(yàn)中得出鹽質(zhì)量濃度在10～3 g/L之間，菌株均生長良好，鹽質(zhì)量濃度達(dá)到30～4 g/L時(shí)，菌體能夠生長，但生長受到抑制。在整個(gè)鹽濃度考察范圍內(nèi)，5株菌中，菌株C-1和菌株B-2的耐鹽能力較優(yōu)(P<0.05)。

2.4 菌株蛋白酶的酶學(xué)性質(zhì)

2.4.1 溫度對酶活力的影響

從圖5所示，在4～10 ℃低溫條件下，5株菌的蛋白酶活性均受到抑制，但是在低溫范圍內(nèi)，蛋白酶仍具備一定的活性，但活性較低。在10～40 ℃的溫度范圍內(nèi)，隨著溫度的升高，5株菌的酶活力都呈明顯上升趨勢(P<0.05)，40 ℃時(shí)酶的活力達(dá)到最高，如圖5所示。在40～60 ℃范圍內(nèi)，隨著溫度的升高，蛋白酶的活力逐漸下降。說明40 ℃為蛋白酶的反應(yīng)活力最強(qiáng)。

圖5 溫度對蛋白酶活性的影響Fig.5 Effect of temperature on the activity of protease

2.4.2 蛋白酶的最適反應(yīng)pH

培養(yǎng)基的初始pH會(huì)影響各種生長因子在細(xì)胞膜上的轉(zhuǎn)運(yùn)過程，這可能會(huì)對微生物蛋白酶的生產(chǎn)過程產(chǎn)生不利影響。如果微生物處于直接或間接影響微生物蛋白酶活性的最佳pH，則代謝效率將很高[24],如圖6所示。

圖6 pH對蛋白酶活性的影響Fig.6 Effect of pH on protease activity of strain

在pH值為1～6的范圍內(nèi)，5株菌株的蛋白酶活力隨著pH的上升均呈上升趨勢(P<0.05)，在pH值為6時(shí)蛋白酶活性最強(qiáng)。在pH值為6以上時(shí)，蛋白酶活力逐漸下降。說明這5株菌株蛋白酶最適反應(yīng)pH值均為6，5株菌產(chǎn)生的蛋白酶為酸性蛋白酶。

pH是影響蛋白酶活性的重要指標(biāo)之一[25]。蛋白酶活性在pH 范圍內(nèi)的穩(wěn)定性對于發(fā)酵肉制品的質(zhì)量至關(guān)重要，并且嫩度和風(fēng)味前體也可以得到改善[26]。

2.4.3 金屬離子和抑制劑對蛋白酶活性的影響

肉品加工過程中會(huì)使用含Na+、K+、Mg2+的鹽，會(huì)影響乳酸菌的蛋白酶活性。金屬離子可能是蛋白酶活性位點(diǎn)的一部分，并直接參與催化過程[28]。在離子濃度為1 mmol/L的條件下研究了各種金屬離子對5株菌株蛋白酶相對活性的影響，如表2所示。在10 mmol/L的條件下研究了各種金屬離子對5株菌株蛋白酶相對活性的影響，如表3所示。以沒有添加金屬離子的蛋白酶用作對照(100%)。

表2 1 mmol/L金屬離子和抑制劑對5株菌株蛋白酶活性的影響Table 2 Effect of 1 mmol/L metal ions and inhibitors on protease activity of five strains

注: 同一欄中不同字母表示有顯著性差異(P<0.05)(下同)

表3 10 mmol/L金屬離子和抑制劑對5株菌株蛋白酶活性的影響Table 3 Effect of 10 mmol/L metal ions and inhibitors on protease activity of five strains

Na+和 K+在1和10 mmol/L 濃度下誘導(dǎo)5株菌株蛋白酶活性略有增加(P>0.05)。Mn2+、Cu2+和Fe3+對蛋白酶的活性有抑制作用。與對照相比，5株菌株在Cu2+為1和10 mmol/L的條件下蛋白酶的相對活性抑制明顯(P<0.05)。這可能是由于這些離子與5株菌的蛋白酶側(cè)鏈基團(tuán)之間的牢固結(jié)合，從而降低了蛋白酶與其底物之間的結(jié)合[29]。SUN等[14]研究表明Cu2+確實(shí)會(huì)顯著降低蛋白酶的活性。EDTA在濃度為1和10 mmol/L時(shí)，對蛋白酶活性降低顯著(P<0.05)，這與YU等[30]報(bào)道類似。

3 結(jié)論

本研究從新疆哈薩克族風(fēng)干肉中分離出149株乳酸菌，通過表型鑒定及脫脂乳MRS瓊脂培養(yǎng)基初篩出22株在脫脂乳MRS瓊脂培養(yǎng)基中有明顯透明圈的菌株，用福林酚法對初篩的22株菌株產(chǎn)蛋白酶活性進(jìn)行定量，實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示出5株產(chǎn)蛋白酶活力較高的菌株，5株菌株為：乳酸乳球菌A-6、A-18、格氏乳球菌B-2、耐久腸球菌G-11、戊糖片球菌C-1。

菌株生物學(xué)特性分析研究結(jié)果顯示，所有菌株的最適生長溫度為40 ℃，5株菌中菌株A-18具有較高的生長活性。菌株耐酸特性分析表示5株菌中株菌中G-11的耐酸能力較弱，其余4株菌A-6、A-18、B-2、C-1都具有較好的耐酸能力在pH值為3～3.5的條件下均能生長，整個(gè)pH考察范圍內(nèi)菌株A-18和菌株C-1的耐酸能力較強(qiáng)。菌株耐鹽特性分析表示在鹽濃度為10～30 g/L的范圍內(nèi)時(shí)，5株菌均生長良好，具有一定的耐鹽能力，在整個(gè)鹽濃度考察范圍內(nèi)，5株菌中，菌株C-1和菌株B-2的耐鹽能力較優(yōu)。

對蛋白酶酶學(xué)特性分析表示菌株產(chǎn)生的蛋白酶在40 ℃的反應(yīng)活力最強(qiáng)并且5株菌所產(chǎn)的蛋白酶均為酸性蛋白酶。Na+和K+在1和10 mmol/L濃度下誘導(dǎo)蛋白酶活性略有增加(P>0.05)。Mn2+、Zn2+、Cu2+和Fe3+對蛋白酶的活性有抑制作用。相比較之下Cu2+的存在對蛋白酶抑制作用明顯(P>0.05)。

根據(jù)研究結(jié)果乳酸乳球菌A-18、戊糖片球菌C-11產(chǎn)蛋白酶含量較高，具有較好的耐酸耐鹽特性，可作為潛在益生菌用于后續(xù)發(fā)酵肉制品品質(zhì)控制的研究。