劉敏軒,趙興然,于璐,鹿浩志,王向紅
(河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院,河北保定071000)
頭孢菌素類(lèi)抗生素是7-氨基頭孢烷酸(7-aminocephalosporanic acid,7-ACA)的衍生物[1-2],多為有機(jī)酸性物質(zhì),頭孢菌素類(lèi)抗生素的殺菌作用較強(qiáng),常被用來(lái)預(yù)防和治療動(dòng)物性疾病,并存在多種抗生素聯(lián)用的現(xiàn)象,因而在動(dòng)物源性食品中可能存在抗生素殘留問(wèn)題[3]。由于動(dòng)物源性食品營(yíng)養(yǎng)價(jià)值高,動(dòng)物產(chǎn)品消費(fèi)量巨大,動(dòng)物源性食品中抗生素殘留問(wèn)題也日益受到人們的廣泛關(guān)注[4-5]。頭孢菌素類(lèi)抗生素的濫用會(huì)造成其在畜產(chǎn)品中的殘留,人類(lèi)食用后會(huì)對(duì)人體產(chǎn)生過(guò)敏反應(yīng)、胃腸道菌群失衡和細(xì)菌耐藥性增強(qiáng)等不良影響[6-7]。因此,建立一種高效、便捷、快速的頭孢菌素類(lèi)抗生素多殘留測(cè)定方法極為迫切。
目前,頭孢菌素類(lèi)抗生素殘留的檢測(cè)方法主要有微生物分析法、免疫分析法(immunoassay,IAS)、液相色譜法(liquid chromatography,LC)、液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法(liquid chromatograph mass spectrometer,LC-MS)和電化學(xué)分析法等。微生物法[8]檢測(cè)的時(shí)間較長(zhǎng)、靈敏度低、操作人員要求高;高效液相色譜法(high perfor mance liquid chromatography,HPLC)[9-13]等儀器檢測(cè)法程序復(fù)雜、成本較高,不利于現(xiàn)場(chǎng)大批量樣品的測(cè)定;電化學(xué)分析法由于其穩(wěn)定性欠佳,還沒(méi)有普遍推廣使用[14]。眾多檢測(cè)方法中,膠體金免疫層析技術(shù)[15-16]憑借其操作簡(jiǎn)單易行、分析時(shí)間短、檢測(cè)效率高、結(jié)果可靠準(zhǔn)確、適合樣品大批量現(xiàn)場(chǎng)快速篩檢等優(yōu)勢(shì)被廣泛用于食品安全檢測(cè),應(yīng)用前景廣闊。
為了建立一種用于頭孢菌素類(lèi)抗生素殘留測(cè)定的快速檢測(cè)方法,本研究采用膠體金作為信號(hào)探針,基于免疫競(jìng)爭(zhēng)原理,以硝酸纖維素膜(NC膜)為反應(yīng)載體,以頭孢氨芐(cefalexin,CEX)包被原(CEX-OVA)為檢測(cè)線(T線),羊抗兔二抗為質(zhì)控線(C線)開(kāi)發(fā)了檢測(cè)頭孢菌素類(lèi)抗生素的膠體金免疫層析試紙條,并成功通過(guò)樣品的添加回收試驗(yàn),驗(yàn)證了其實(shí)用性。
頭孢氨芐抗血清:河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院食品分析與營(yíng)養(yǎng)實(shí)驗(yàn)室,采用謝會(huì)玲等[17]的方法制得;頭孢氨芐(cefalexin,CEX)、頭孢拉定(cefradine,RAD)、頭孢羥氨芐(cefadroxil,CFR)、頭孢哌酮(cefoperazone,CFP)、頭孢唑啉鈉(cefamezin,CZN)、頭孢唑啉(cefazolin,CFZ)、頭孢噻肟(cefotaxime sodium,CTX)、頭孢呋辛(cefuroxim,CXM):上海源葉科技有限公司(上海);氯金酸、牛血清白蛋白(bovine albumin,BSA)、卵清白蛋白(ovalbumin,OVA)、N,N-二甲基甲酰胺(N,N-dimethylformamide,DMF)、N-羥基琥珀酰亞胺(N-hydroxy succinimide,NHS):Sigma公司(美國(guó));N,N’-二環(huán)己基碳二亞胺(dicyclohexylcarbodiimide,DCC):阿拉丁化學(xué)有限公司(上海);磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)、含吐溫-20的磷酸鹽緩沖液 (phosphate buffered saline with Tween 20,PBST)、硼酸緩沖液、羊抗兔IgG:北京索萊寶有限公司(北京);NC膜:Millipore公司(美國(guó));樣品墊、結(jié)合墊、吸水紙以及PVC底板:上海金標(biāo)科技有限公司(上海);待測(cè)樣品:保定人人超市(保定);其他化學(xué)試劑均為分析純。
恒溫磁力攪拌器(JB-2型):上海一恒電子科技有限公司(上海);恒溫培養(yǎng)箱(DH5000Ⅱ):上海精密試驗(yàn)設(shè)備有限公司(上海);冷凍離心機(jī)(TDL-5):上海Anke(上海);半自動(dòng)劃膜儀XYZ3010:上海捷寧生物(上海)。
1.2.1 CEX包被原的制備
合成步驟采用Matsuura等[18]的方法。稱(chēng)取20.00 mg CEX、13.25 mg NHS、26.11 mg DCC 溶于 1.40 mL DMF中,經(jīng)渦旋混勻,于室溫25℃孵育3h。取900μL反應(yīng)液慢慢滴加到3 mL NaHCO3溶液中(濃度為0.10 mol/L,含有20.20 mg OVA),低溫振蕩反應(yīng)2 h以上,置于4℃冰箱中反應(yīng)過(guò)夜,得到包被原CEX-OVA。用紫外分光光度計(jì)法對(duì)偶聯(lián)物CEX-OVA進(jìn)行表征,在200 nm~500 nm的波長(zhǎng)范圍內(nèi)對(duì)其進(jìn)行掃描,通過(guò)組分特征峰推斷偶聯(lián)物是否制備成功。
1.2.2 膠體金的制備與表征
采用檸檬酸三鈉還原法制備膠體金[19]。將1gHAuCl4配成1%的水溶液,于4℃避光存放,使用時(shí)再配制成0.01%的溶液。在磁力攪拌下,將0.01%HAuCl4水溶液加熱至沸騰并保持3 min,迅速加入檸檬酸三鈉溶液,待其變?yōu)橥该鞯募t色且保持不變時(shí),煮沸5 min,撤去熱源,攪拌15 min。自然冷卻至室溫25℃,加雙蒸水至原體積,通過(guò)紫外掃描和透射電鏡法對(duì)制備的膠體金進(jìn)行表征。
1.2.3 金標(biāo)抗體的制備
將純化后的抗體蛋白用硼酸緩沖液進(jìn)行稀釋?zhuān)帕嚢柘?,逐滴加入?0 mL膠體金溶液(pH=9.0)中,繼續(xù)攪拌10 min,加入10%BSA至其終濃度為1%,繼續(xù)攪拌30 min后4℃靜置過(guò)夜。取出溶液于4℃低速離心除去沉淀,上清液于10 000 r/min低溫離心30 min。去上清,用儲(chǔ)存液將暗紅色沉淀重懸,重復(fù)離心1次,重懸至1 mL,4℃放置。
1.2.4 標(biāo)記CEX抗體蛋白條件的優(yōu)化
將 100 μL 不同 pH 值(4.0、5.0、6.0、7.0、8.0、9.0 和10.0)的膠體金溶液置于酶標(biāo)板中,每孔加入3 μg CEX抗體,混勻后于室溫25℃放置15 min,每孔添加20 μL 10%NaCl溶液,混勻后于525 nm波長(zhǎng)下測(cè)定OD值。
分別向1 mL的膠體金溶液中加入不同濃度的抗體(0.0、1.5、3.0、4.5、6.0、9.0、12.0、24.0、48.0 μg/mL),混勻后加入100 μL 10%NaCl溶液,反應(yīng)1 h后于525 nm波長(zhǎng)下測(cè)定OD值。
1.2.5 試紙條檢測(cè)條件的優(yōu)化
將二抗點(diǎn)樣于NC膜上,分別用不同的封閉液(1%BSA、1%明膠、1%酪蛋白、5%脫脂乳和5%甘氨酸)在37℃條件下封閉30 min,取出后用PBST沖洗3次,干燥,滴加金標(biāo)抗體進(jìn)行顯色,選擇顯色條帶清晰且無(wú)背景色的封閉液。分別采用0.5、1.0、1.5 μg的CEXOVA為包被區(qū),將金標(biāo)抗體分別按1∶1、1∶5和1∶10體積比稀釋后,取100 μL滴加到包被區(qū),選擇顯色效果較好的濃度和稀釋比例應(yīng)用于試驗(yàn)。
1.2.6 樣品前處理及添加回收驗(yàn)證
牛奶樣品取全奶6 mL于離心管,4℃,9 000 r/min離心15 min,棄掉上層脂肪,取下層;牛肉、豬肉、蝦肉樣品,稱(chēng)取均質(zhì)試樣(1.0±0.001)g,按 1 ∶1(質(zhì)量體積比)加入乙腈水溶液(8∶2,體積比),漩渦振蕩,超聲提取15 min,于室溫(20℃~25℃)、3 500 r/min離心15 min,取上清液過(guò)0.45 μm有機(jī)濾膜備用。生豬肝、熟豬肝樣品使用1∶3(質(zhì)量體積比)乙腈水溶液(8∶2,體積比),4 000 r/min離心,取上清液過(guò)0.45 μm有機(jī)濾膜備用。向樣品中添加一定濃度的標(biāo)準(zhǔn)品溶液進(jìn)行添加回收試驗(yàn)。本試驗(yàn)通過(guò)HPLC方法對(duì)試紙條的準(zhǔn)確性進(jìn)行驗(yàn)證。
抗原和膠體金的表征見(jiàn)圖1。
圖1 抗原和膠體金的表征Fig.1 Characterization of antigen and colloidal gold
圖1a為CEX、OVA和CEX-OVA的紫外掃描圖,可知CEX與載體OVA偶聯(lián)后,其偶聯(lián)產(chǎn)物CEX-OVA的吸收?qǐng)D譜分別具有CEX與OVA的特征吸收峰,O VA偶聯(lián)CEX后蛋白質(zhì)的特征峰形狀和位置發(fā)生了變化,表現(xiàn)為各自迭加的性質(zhì),初步說(shuō)明OVA分子上已經(jīng)成功偶聯(lián)CEX。
從光譜圖1b可知,制得的膠體金溶液在525 nm處有最大吸收峰,由最大吸收波長(zhǎng)λmax與膠體金顆粒的線性回歸方程 Y(λmax)=0.427 1X(顆粒直徑)+514.56[20],可初步估算出金顆粒的直徑約為24.4 nm,吸收峰峰寬為 149 nm。由式 Y(CV)=0.360 5X(峰寬)-53.549可得,直徑變異系數(shù)CV為16.6%,表明溶液中金顆粒的粒徑分布較均勻。
膠體金的透射電鏡圖1c、圖1d所示,膠體金顆粒的大小基本一致,分散較均勻,沒(méi)有多角形的顆粒存在,直徑約為24 nm,與紫外掃描結(jié)果基本一致。
膠體金標(biāo)記CEX抗體條件的確定試驗(yàn)參數(shù)優(yōu)化結(jié)果見(jiàn)圖2。
圖2 試驗(yàn)參數(shù)優(yōu)化結(jié)果Fig.2 Optimization of the experimental parameters
圖2a為不同pH值條件下金標(biāo)抗體OD值的變化,隨著體系pH值的升高,金標(biāo)抗體的OD值不斷升高,當(dāng)pH值達(dá)到9.0時(shí),金標(biāo)抗體的OD值達(dá)到最高,然后趨于穩(wěn)定并逐漸減小,說(shuō)明當(dāng)體系pH值達(dá)到9.0時(shí),金納米顆粒與抗體二者結(jié)合最為穩(wěn)定。故標(biāo)記抗體蛋白的溶液pH值選9.0。由圖2b可知,當(dāng)抗體蛋白用量小于9 μg時(shí),吸光值隨著抗體蛋白用量的增加而增大,當(dāng)抗體蛋白用量大于9 μg時(shí),吸光度值趨于平衡。表明抗體蛋白用量為9 μg時(shí)與膠體金結(jié)合最佳。
為了降低NC膜的非特異性吸附,需要用封閉液對(duì)膜上未結(jié)合的位點(diǎn)進(jìn)行封閉,結(jié)果如表1。
表1 試紙條的封閉結(jié)果Table 1 The blocking results of the strips
未進(jìn)行封閉處理、經(jīng)5%甘氨酸、經(jīng)1%BSA封閉處理的NC膜背景色較深,降低了檢測(cè)線與背景的反差,影響結(jié)果的判斷;經(jīng)1%酪蛋白封閉處理的NC膜背景色較淺,條帶顯色較清晰;而經(jīng)1%明膠和5%脫脂乳封閉處理的NC膜背景色較淺,條帶顏色鮮明,容易判斷結(jié)果。經(jīng)5%脫脂乳封閉的NC膜條帶顯色最鮮明,封閉效果最為理想,且脫脂乳廉價(jià)易得。因此本試驗(yàn)試紙條封閉液采用5%的脫脂乳。
CEX-OVA包被量和金標(biāo)抗體稀釋度與試紙條的顯色結(jié)果直接相關(guān),結(jié)果如表2。
表2 金標(biāo)抗體稀釋度和包被原CEX-OVA包被量的優(yōu)化Table 2 Optimization of the dilution fold of the gold-labeled antibodies and coated antigen CEX-OVA
當(dāng)包被0.5 μg的CEX-OVA時(shí),T線處結(jié)合的金標(biāo)抗體比較少,顯色較淺;包被量為1.5 μg時(shí),T線的顯色偏深,1.0 μg與1.5 μg的顯色效果基本相同。當(dāng)金標(biāo)抗體的稀釋度在1∶5時(shí),3個(gè)包被量的試紙條顯色情況均較好。因此選擇包被1.0 μg的包被原,金標(biāo)抗體的稀釋度為1∶5。
將二抗進(jìn)行稀釋作為C線,取金標(biāo)抗體稀釋液100 μL滴加到包被區(qū)顯色,優(yōu)化結(jié)果見(jiàn)圖3。
圖3 酶標(biāo)二抗的稀釋倍數(shù)的優(yōu)化結(jié)果Fig.3 Result of HRP antibody conjugates for different dilution fold
由圖3可知,隨著二抗稀釋倍數(shù)的加大,C線的顯色越來(lái)越淺。當(dāng)稀釋倍數(shù)為20時(shí),NC膜上C線的顯色較T線深,不利于測(cè)定結(jié)果的判斷;稀釋倍數(shù)為40時(shí),C線的顯色與T線相當(dāng),易于進(jìn)行結(jié)果的判斷;當(dāng)稀釋倍數(shù)為80、160、320時(shí),NC膜上C線的顯色明顯淺于T線,基本不可見(jiàn),影響試紙條的有效性。所以,二抗的最佳稀釋倍數(shù)為40倍。
將制備的膠體金試紙條對(duì)CEX的檢測(cè)限進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果如圖4所示。
圖4 CEX膠體金試紙條檢出限的確定Fig.4 The detection limit of colloidal gold strips for CEX
隨著CEX濃度的依次增大,T線的顏色越來(lái)越淺,當(dāng)CEX的濃度小于20 μg/L時(shí),T線顏色明顯肉眼可見(jiàn),與空白溶液不能由目測(cè)法進(jìn)行區(qū)分;當(dāng)其濃度等于或大于20 μg/L,T帶顯色較淺甚至消失,能通過(guò)目測(cè)將兩者分開(kāi),因此該試紙條對(duì)于CEX的檢出限為20 μg/L。
在最優(yōu)檢測(cè)條件下,所制試紙條對(duì)頭孢菌素類(lèi)抗生素的檢測(cè)靈敏度差異較大,用同樣的方法檢測(cè)其他7種頭孢類(lèi)抗生素,結(jié)果如圖5所示。
圖5 其他7種頭孢菌素類(lèi)抗生素的試紙條檢測(cè)結(jié)果Fig.5 Test strip test results of 7 other cephalosporin antibiotics
該試紙條對(duì)CFP、CZN、CFZ、CTX和CXM的特異性不明顯,對(duì)這幾種頭孢菌素類(lèi)抗生素?zé)o交叉反應(yīng),但對(duì)CEX、RAD、CFR的靈敏度較高,即交叉反應(yīng)率高,可進(jìn)一步研究多殘留檢測(cè)。由顯色結(jié)果可判斷7種抗生素的檢測(cè)限,如表3所示。
表3 CEX和其他7種頭孢菌素類(lèi)抗生素的檢測(cè)限Table 3 Detection limits for CEX and seven other cephalosporin antibiotics
蝦肉提取液進(jìn)行20倍稀釋?zhuān)D?、牛肉、豬肉提取液進(jìn)行40倍稀釋?zhuān)i肝、熟豬肝提取液進(jìn)行80倍稀釋后,用試紙條檢測(cè),條帶顯色清晰且無(wú)背景色,顯色效果與對(duì)照接近,即基質(zhì)影響基本消除。6種樣品的加標(biāo)提取液經(jīng)過(guò)基質(zhì)消除后,用試紙條測(cè)定,低檢出限為 20 μg/L,結(jié)果如表 4。
表4 6種樣品的CEX添加回收檢測(cè)結(jié)果Table 4 The determination results of CEX in six samples
用HPLC法與試紙條(n=3)進(jìn)行測(cè)定,結(jié)果如表5所示。
表5 樣品中不同CEX添加水平的HPLC與試紙條測(cè)定結(jié)果比較Table 5 CEX of results obtained by HPLC and strips at three spiked level
續(xù)表5 樣品中不同CEX添加水平的HPLC與試紙條測(cè)定結(jié)果比較Continue table 5 CEX of results obtained by HPLC and strips at three spiked level
所建立試紙條法與HPLC法在檢測(cè)范圍內(nèi)有很好的相關(guān)性,即試紙條法準(zhǔn)確可靠,可用于實(shí)際樣品的測(cè)定。
本文建立了快速檢測(cè)動(dòng)物源性食品中CEX殘留量的膠體金標(biāo)記免疫分析方法。通過(guò)對(duì)試紙條檢測(cè)條件優(yōu)化,對(duì)CEX檢測(cè)限為20 μg/L,經(jīng)過(guò)樣品提取液校正后其檢測(cè)限為20 μg/L,整個(gè)檢測(cè)過(guò)程僅需10 min,實(shí)現(xiàn)了對(duì)CEX的快速檢測(cè)。用HPLC法對(duì)試紙條的可靠性進(jìn)行評(píng)估,結(jié)果表明兩者一致性較好,即試紙條法的測(cè)定結(jié)果準(zhǔn)確可靠。適用于實(shí)際動(dòng)物源性食品中頭孢菌素類(lèi)抗生素樣品的現(xiàn)場(chǎng)快速篩查。成功建立可檢測(cè)頭孢類(lèi)抗生素殘留膠體金免疫層析試紙條。