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大麥多酚抗氧化及抑菌活性的研究

2020-10-22 06:47胡新穎陶玉欣李興國(guó)劉盼盼陳俊亮
農(nóng)產(chǎn)品加工 2020年18期
關(guān)鍵詞:食源性大麥清除率

胡新穎,陶玉欣,李興國(guó),劉盼盼,陳俊亮,費(fèi) 鵬

(河南科技大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,河南 洛陽 471023)

多酚普遍存在于植物當(dāng)中,由于其具有抗氧化、預(yù)防癌癥、抑菌等方面的生理功效,備受研究者關(guān)注[1]。由于酚羥基在有氧的條件易氧化成醌,降低了環(huán)境中氧的含量,并能夠清除人體中的自由基,所以大多數(shù)植物的多酚類化合物都具有抗氧化活性,這也是多酚類物質(zhì)具有延緩衰老、降低高血壓、降低高血脂、預(yù)防癌癥和抑菌抗炎功能的原因[2-3]。目前,茶多酚[4]、黑木耳多酚[5]、洋蔥多酚[6]、蓮子多酚[7]、菱莖多酚[8]等植物多酚的抗氧化、抑菌活性的研究也已被報(bào)道。

大麥?zhǔn)鞘澜绲谒拇蠊阮愖魑铮錉I(yíng)養(yǎng)成分豐富,除了碳水化合物、蛋白質(zhì)、膳食纖維等,還含有維生素、核黃素和胚芽維。雖然大麥中營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)豐富,但是隨著人們對(duì)大麥功能性的重視,如何繼續(xù)開發(fā)大麥的功能性成為目前需要解決的問題。大麥中多酚類化合物含量豐富,因此有足夠的證據(jù)表明大麥多酚具有較好的抗氧化活性和抑菌能力[10]。

試驗(yàn)以大麥為原料,從中提取多酚類物質(zhì),通過考查大麥多酚對(duì)羥基自由基(·OH)、超氧陰離子(·) 和1,1 - 二苯基- 2 - 三硝基苯肼(DPPH)的清除能力,評(píng)估其抗氧化能力;通過測(cè)得大麥多酚對(duì)金黃色葡萄球菌、單增李斯特菌、鼠傷寒沙門氏菌、大腸桿菌和克羅諾桿菌的抑菌圈直徑、MIC值和MBC 值,評(píng)估其抑菌能力,以期擴(kuò)展大麥多酚的功能性。

1 材料和方法

1.1 試驗(yàn)材料

大麥,購(gòu)自洛陽大張超市;硫酸亞鐵、維C、無水乙醇、水楊酸、雙氧水、DPPH、氫氧化鈉、磷酸氫二鉀,均為分析純,洛陽昊華化學(xué)試劑有限公司提供;溶菌肉湯培養(yǎng)基(LB) 和胰酪胨大豆瓊脂培養(yǎng)基(TSA),青島海博生物有限公司提供。

供試菌株:大腸桿菌(Escherichia coliO157∶H7)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureusATCC 13565)、沙門氏菌(Salmonella typhimuriumATCC 14028)、克羅諾桿菌(CronobacterATCC 29544) 和單增李斯特氏菌(Listeria monocytogenesCMCC 54004),東北農(nóng)業(yè)大學(xué)提供。

1.2 試驗(yàn)儀器

牛津杯,上海橋星貿(mào)易有限公司產(chǎn)品;UV-1100 型分光光度儀,上海美譜達(dá)儀器有限公司產(chǎn)品;HH-S2 型水浴鍋,金壇市醫(yī)療儀器廠產(chǎn)品;CP213 型電子天平,上海奧豪斯儀器有限公司產(chǎn)品;YM30B 型滅菌鍋,上海三申醫(yī)療器械有限公司產(chǎn)品;KDC-16H 型離心機(jī),科大創(chuàng)新股份有限公司產(chǎn)品;Bcn 1360 型無菌工作臺(tái),上海佳勝儀器制造有限公司產(chǎn)品。

1.3 方法

1.3.1 大麥多酚的提取

將大麥碾碎成粉,過80 目篩網(wǎng),在溫度78 ℃,pH 值4.7,料液比1∶30 條件下浸泡提取95 min,抽濾2 次,濾液合并后旋轉(zhuǎn)蒸發(fā),40 ℃下真空濃縮得到大麥多酚濃縮液,最后使用冷凍干燥機(jī)干燥成粉末。

1.3.2 抗氧化活性的測(cè)定

將大麥多酚粉末配制成質(zhì)量濃度依次是0.1,0.2,0.3,0.4,0.5 mg/mL 的樣品,分別測(cè)定其對(duì)·OH,·和DPPH·的清除能力,并以維C 做陽性對(duì)照。

(1) 大麥多酚對(duì)·OH 的清除率。根據(jù)吳琳珊[11]的方法,在試管中依次添加9 mmol/L 的FeSO4溶液1 mL,9 mmol/L 的醇溶水楊酸2 mL,去離子水2 mL及8.8 mmol/L 的H2O22 mL,振蕩后暗處放30 min,于波長(zhǎng)510 nm 處檢驗(yàn)吸光度即A0,此時(shí)以不加H2O2的體系作為空白溶液。取系列試管,依次加入FeSO4溶液1 mL,乙醇-水楊酸2 mL,樣品2 mL 及H2O22 mL,在上述同樣的條件下反應(yīng)后測(cè)定吸光度記為A1,同上不加H2O2但加樣品測(cè)得的吸光度為A2。A1,A2測(cè)定時(shí)拿蒸餾水作參比。結(jié)果測(cè)3 次取平均。按下式計(jì)算·OH 的清除率:

(3) 大麥多酚對(duì)DPPH·的清除率。采用DPPH·比色法測(cè)定大麥多酚對(duì)DPPH·的清除能力[13]。配制0.2 mmol/L 乙醇溶解的DPPH·備用。向樣品管按順序移入2 mL 的樣品和醇溶DPPH·;在對(duì)照管中依次加入2 mL 的樣品溶液和無水乙醇;向空白管按順序移入2 mL 的醇溶DPPH·和無水乙醇。將3 個(gè)管分別振蕩,在暗處放置30 min,于波長(zhǎng)517 nm 處檢驗(yàn)吸光度,依次記為A1,A2,A0。同時(shí)用維C 作陽性對(duì)照。結(jié)果測(cè)3 次取平均。按照下式計(jì)算DPPH·的清除率:

1.3.3 大麥多酚抑菌活性的測(cè)定

(1) 抑菌圈直徑的測(cè)定。調(diào)整菌液濃度為107CFU/mL,取100 μL 涂布在TSA 平板上,將牛津杯水平插入TSA 平板中,每個(gè)平板放3 個(gè)。向每個(gè)牛津杯中加入10 mg/mL 的大麥多酚溶液200 μL,于37 ℃下培養(yǎng)24 h,測(cè)定抑菌圈的直徑,重復(fù)3 次,取平均值[14]。

(2) MIC 和MBC 值的測(cè)定。將滅菌的TSA 冷卻至45 ℃后,放入24 孔板中,再加入大麥多酚使其質(zhì)量濃度依次為0.312 5,0.625 0,1.250 0,2.500 0,5.000 mg/mL,然后混勻。室溫下冷卻凝固后接種107CFU/mL的菌懸液2 μL 到每孔中央,于37 ℃條件下培養(yǎng)24 h 觀察菌類生長(zhǎng)情況,MIC 即為肉眼不見受試菌株生長(zhǎng)的大麥多酚的最小濃度。取100 μL 菌懸液在質(zhì)量濃度為0.625,1.25,2.5,5 mg/mL 的大麥多酚溶液中37 ℃培養(yǎng)24 h 后涂布在TSA 平板上,菌落無法生長(zhǎng)的大麥多酚最小濃度即為MBC 值[14]。

2 結(jié)果與分析

2.1 大麥多酚抗氧化能力的測(cè)定

2.1.1 大麥多酚對(duì)·OH 的清除能力

不同質(zhì)量濃度的大麥多酚對(duì)·OH 的清除率見圖1。

圖1 不同質(zhì)量濃度的大麥多酚對(duì)·OH 的清除率

以維C 為陽性對(duì)照,測(cè)定0.1,0.2,0.3,0.4,0.5 mg/mL 的大麥多酚對(duì)·OH 的清除能力,結(jié)果如圖1 所示。大麥多酚對(duì)·OH 的清除能力隨著其質(zhì)量濃度的增加而增加,0.5 mg/mL 的大麥多酚對(duì)·OH 的清除能力為18.78%,低于同等質(zhì)量濃度下維C 對(duì)·OH的清除能力,考慮到維C 是強(qiáng)的抗氧化劑,因此大麥多酚對(duì)·OH 的清除能力是可以接受的。

圖2 不同質(zhì)量濃度的大麥多酚對(duì)·的清除率

2.1.3 大麥多酚對(duì)DPPH·的清除能力

不同質(zhì)量濃度的大麥多酚對(duì)DPPH·的清除率見圖3。

以維C 為陽性對(duì)照,測(cè)定0.1,0.2,0.3,0.4,0.5 mg/mL 的大麥多酚對(duì)DPPH·的清除能力,結(jié)果如圖3 所示。大麥多酚對(duì)·OH 的清除能力隨著其質(zhì)量濃度的增加而增加,0.5 mg/mL 的大麥多酚對(duì)DPPH·的清除能力為82.05,略低于同等質(zhì)量濃度下維C 對(duì)DPPH·的清除能力,因此大麥多酚對(duì)DPPH·具有較好的清除能力。

2.2 大麥多酚對(duì)食源性致病菌的抑菌作用

大麥多酚對(duì)食源性致病菌的抑菌效果見表1。

圖3 不同質(zhì)量濃度的大麥多酚對(duì)DPPH·的清除率

表1 大麥多酚對(duì)食源性致病菌的抑菌效果

試驗(yàn)以DIZ,MIC 和MBC 為評(píng)價(jià)指標(biāo),測(cè)定大麥多酚對(duì)5 種食源性致病菌的抑菌效果。結(jié)果表明,大麥多酚對(duì)金黃色葡萄球菌ATCC 13565(G+)、單增李斯特菌CMCC 54004(G+)、鼠傷寒沙門氏菌ATCC 14028(G-)、大腸桿菌O157∶H7(G-) 和克羅諾桿菌ATCC 29544(G-) 這5 種受試菌株的抑菌圈直徑分別15.5±0.21,15.3±0.18,16.8±0.17,16.5±0.14,16.6±0.19 mm。大麥多酚對(duì)金黃色葡萄球菌和單增李斯特菌的MIC 是2.5 mg/mL,MBC是5.0 mg/mL;對(duì)鼠傷寒沙門氏菌、大腸桿菌和克羅諾桿菌的MIC 是1.25 mg/mL,MBC 是2.5 mg/mL。

3 結(jié)論

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