朱春權(quán) 韋翠珍 曹小闖 朱練峰 孔亞麗 金千瑜 張均華*
(1中國水稻研究所/水稻生物學(xué)國家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,杭州310006;2 淮河水資源保護(hù)科學(xué)研究所,安徽蚌埠233001;第一作者:zhuchunquan@caas.cn;*通訊作者: zhangjunhua@caas.cn)
全球約有39.5 億hm2酸性土壤,占潛在可耕地面積的40%~50%[1]。我國酸性土壤廣泛分布在東南部熱帶、亞熱帶地區(qū),面積多達(dá)218 萬km2,約占全國陸地面積的22.7%[2]。中國南方水稻田多為酸性土壤。土壤酸化導(dǎo)致土壤板結(jié),質(zhì)地粘重,土壤結(jié)構(gòu)遭到破壞,通氣性變差,養(yǎng)分失調(diào),肥力變差,從而限制作物的養(yǎng)分吸收,降低作物產(chǎn)量[3]。
溫室氣體已經(jīng)對(duì)環(huán)境造成明顯的負(fù)面影響[4],其中氮氧化物(Nitrogen Oxide,NOx)是溫室氣體的重要組成成分[5-6],它包含如氧化亞氮(N2O)、一氧化氮(NO)和二氧化氮(NO2)等在內(nèi)的多種化合物。土壤是生態(tài)系統(tǒng)NO 產(chǎn)生的重要來源[7]。其中土壤微生物在土壤NO 等溫室氣體釋放過程中發(fā)揮著重要作用,包括硝化反應(yīng)和反硝化作用在內(nèi)的微生物活動(dòng)均可產(chǎn)生溫室氣體NO 和N2O[8],并且進(jìn)一步酸化土壤,從而影響植物的生長。
南方酸化土壤作為我國亞熱帶地區(qū)的主要土壤資源,其對(duì)溫室氣體NO 和N2O 的釋放需要重點(diǎn)研究。前人對(duì)安徽郎溪的耕地酸化土壤進(jìn)行了3 種不同氮源(尿素、硫酸銨和碳酸氫銨)的施加試驗(yàn)后發(fā)現(xiàn),3 種化學(xué)氮肥均能顯著刺激土壤的硝化反應(yīng),從而進(jìn)一步降低土壤的pH 值[9]。對(duì)湖南祁陽長期定位試驗(yàn)站的酸化土壤進(jìn)行分析后發(fā)現(xiàn),與不施加任何肥料的酸化土壤相比,長期施加氮磷鉀肥以及有機(jī)肥料的土壤N2O 的釋放顯著增加[10]。由此可見,雖然酸化土壤擁有較低的pH 值,但其仍然存在硝化和反硝化作用,并且施加肥料后,其硝化和反硝化作用進(jìn)一步增強(qiáng),從而擴(kuò)大氮氧化物的釋放以及刺激土壤進(jìn)一步酸化。雖然前人的研究關(guān)注到了微生物在氮氧化物釋放中的作用,但是僅限在施肥后微生物豐度和群落的變化,并未直接關(guān)注微生物變化后對(duì)土壤溫室氣體釋放的影響。因此,本試驗(yàn)選擇了浙江富陽酸化水稻土,單獨(dú)施加硫酸銨和同時(shí)施加硫酸銨以及葡萄糖,進(jìn)行短期和長期培養(yǎng)后觀察氮氧化物的釋放以及微生物豐度的變化,以進(jìn)一步確認(rèn)微生物本身對(duì)酸化水稻土硝化和反硝化的作用。
供試土壤樣品采集于浙江富陽常耕水稻土(0~20 cm)深度。土樣經(jīng)風(fēng)干、磨細(xì)過2 mm 孔徑篩后備用,具體土壤性質(zhì)見表1。
設(shè)置不施氮(CK)與施N 250 mg/kg 2 個(gè)氮施用水平,250 mg/kg 氮施用水平又分為單獨(dú)施加硫酸銨(N)和同時(shí)添加硫酸銨及100 mg/kg 葡萄糖(N+C)2 個(gè)處理組,各處理均設(shè)3 個(gè)重復(fù)。處理過程如下:稱取50 g風(fēng)干土壤置于250 mL 的廣口瓶中,通過滴加超純水使其含水量達(dá)到田間持水量的40%,用無菌透氣封口膜封閉瓶口。在25℃黑暗條件下預(yù)培養(yǎng)1 周。然后配置相應(yīng)的硫酸銨和葡萄糖溶液,滴加到預(yù)培養(yǎng)的土壤中,施用的量分別為250 mg/kg N 和100 mg/kg C,并且土壤的最終含水量維持在田間持水量的60%。用無菌透氣封口膜封閉瓶口,25℃黑暗條件下培養(yǎng)。每隔1 周補(bǔ)充水分,使其保持恒定的含水量。在培養(yǎng)的第2 d 和120 d 測(cè)定NO 和N2O 釋放后進(jìn)行破壞性取樣,用鮮土提取土壤DNA 以及測(cè)定土壤無機(jī)氮(NH4+和NO3-)含量,然后將土壤樣品風(fēng)干、過篩待用。
表1 土壤基本理化性質(zhì)
表2 本試驗(yàn)中使用的引物序列
1.3.1 NO 及N2O
土壤NO 和N2O 釋放速率的測(cè)定采用靜態(tài)箱法[4],其基本過程如下:裝有土壤樣品的廣口瓶用橡膠塞密閉1 h,橡膠塞同時(shí)帶有上進(jìn)氣管和出氣管,管口用氣墊進(jìn)行封閉。1 h 后用10 mL 注射器抽取密閉氣體,用氣相色譜儀(Agilent 7890,California,USA)測(cè)定 N2O 含量。與此同時(shí),打開瓶蓋放氣后再次封閉瓶口,1 h 后用氮氧化物測(cè)定儀直接測(cè)定NO 含量,測(cè)定時(shí)同時(shí)打開出氣管與進(jìn)氣管,出氣管與氮氧化物分析儀相連,記錄NO 的數(shù)值,測(cè)定時(shí)間一般為NO 的數(shù)值上升后下降至測(cè)定前數(shù)值為止。
N2O 和NO 的測(cè)定結(jié)果均換算為nmol/kg/h。
1.3.2 土壤理化性質(zhì)
土壤 pH 值 采用復(fù)合電極法測(cè)定(V 土∶m 水=1∶2.5)。土壤 NH4+和 NO3-用 2 mol/L 的 KCl 以 1∶10 浸提后,采用連續(xù)流動(dòng)分析儀(San++System,Netherlands)測(cè)定。
1.3.3 土壤微生物豐度
土壤總DNA 的提取使用提取試劑盒 FastDNA?SPIN Ki(tMP Biomedicals,Santa Ana,CA),提取步驟按其說明書進(jìn)行。提取后的DNA 用nanodrop 測(cè)定濃度,然后分別稀釋成10 ng/μL 待用。
本試驗(yàn)選取了細(xì)菌的16S rRNA 基因[11]、氨氧化細(xì)菌和氨氧化古菌的氨單加氧酶(amoA)基因[12]、反硝化細(xì)菌的亞硝酸還原酶基因(nirK 和nirS)[13-14]以及一氧化二氮還原酶基因(nosZ)[14]進(jìn)行定量分析。試驗(yàn)體系為5 μL SYBR Green(Takara Bio, Inc., 日本),0.2 μL 正向引物,0.2 μL 反向引物,1 μL DNA 模板和 3.6 μL 滅菌水,總計(jì)10 μL。配制好的體系,在熒光定量PCR 儀(Light Cycler 480 II, Roche, Switzerland)上進(jìn)行擴(kuò)增。同時(shí)用連接相應(yīng)基因片段的PMD-18T 質(zhì)粒進(jìn)行梯度稀釋后做標(biāo)準(zhǔn)曲線[15]。相關(guān)基因的引物以及反應(yīng)條件見表2。
每個(gè)試驗(yàn)重復(fù)3 次,用SPSS 軟件進(jìn)行單因素方差分析,平均值用Tukey 法進(jìn)行多重比較。相關(guān)性分析采用pearson 雙尾檢驗(yàn)分析法。
添加硫酸銨后水稻土pH 值顯著下降(0 d),其原因在于硫酸銨屬于酸性肥料。短期培養(yǎng)(2 d)后pH 值進(jìn)一步下降,并且施加硫酸銨和同時(shí)施加硫酸銨與葡萄糖的2 個(gè)處理組間pH 值變化無顯著差異(圖1)。長期培養(yǎng)(120 d)進(jìn)一步降低了土壤pH 值,并且同時(shí)施加硫酸銨與葡萄糖處理組的pH 值顯著小于單獨(dú)施加硫酸銨的處理(圖1)。
添加硫酸銨、硫酸銨與葡萄糖后,短期培養(yǎng)和長期培養(yǎng)下,土壤NH4+-N 含量和NO3--N 含量均顯著增加;隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長,土壤NH4+-N 含量顯著降低,土壤NO3--N 含量顯著增加,并且同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖處理組的NH4+-N 降低程度和NO3--N 含量增加程度均顯著大于單數(shù)施加硫酸銨處理組(圖2)。說明外加碳源可以顯著促進(jìn)土壤中氮肥的轉(zhuǎn)化。
表3 相關(guān)性分析
圖1 處理2 d 和120 d 后土壤pH 值變化
圖 2 處理 2 d 和 120 d 后土壤(A)NH4+和(B)NO3-含量的變化
圖 3 處理 2 d 和 120 d 后土壤(A)NO 和(B)N2O 釋放
短期培養(yǎng)和長期培養(yǎng)下,外源施加硫酸銨后均顯著促進(jìn)土壤NO 和N2O 的釋放,并且外源添加葡萄糖后進(jìn)一步提高了NO 和N2O 的釋放速率(圖3)。說明外加碳源顯著促進(jìn)施氮土壤中溫室氣體的產(chǎn)生。
從圖4A 可見,外源添加硫酸銨短時(shí)間內(nèi)(2 d)就顯著增加土壤中細(xì)菌(16s rRNA)的豐度,并且隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(120 d),土壤細(xì)菌的豐度進(jìn)一步增加;外源添加葡萄糖后,進(jìn)一步增加了土壤中的細(xì)菌豐度。
圖 4 處理 2 d 和 120 d 后土壤(A)總菌、(B)厭氧氨氧化細(xì)菌、(C)氨氧化細(xì)菌和反硝化細(xì)菌、(D)nirK 基因、(E)nirS 基因和(F)nosZ基因豐度變化豐度的變化
氨氧化古菌(bacteria - amoA)和氨氧化細(xì)菌(bacteria - amoA)均催化銨態(tài)氮向硝態(tài)氮的轉(zhuǎn)化,并在此過程中產(chǎn)生NO 和N2O。研究結(jié)果顯示,添加硫酸銨后短時(shí)間培養(yǎng)(2 d)就顯著提高土壤中氨氧化古菌和氨氧化細(xì)菌的豐度,并且在長期培養(yǎng)(120 d)后進(jìn)一步提高了兩種菌的豐度(圖4 B 和圖4 C)。短期培養(yǎng)(2 d)時(shí),同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖的處理氨氧化細(xì)菌豐度大于單獨(dú)施加硫酸銨處理組;長期培養(yǎng)(120 d)時(shí),同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖處理組的氨氧化古菌豐度大于單獨(dú)施加硫酸銨處理組,說明添加葡萄糖后,氨氧化細(xì)菌和氨氧化古菌分別在短期培養(yǎng)和長期培養(yǎng)時(shí)發(fā)揮作用,從而導(dǎo)致不同量的NO 和N2O 釋放。
土壤中反硝化細(xì)菌促進(jìn)NO3-向NO 的轉(zhuǎn)變(nirK,nirS)并最終轉(zhuǎn)化為N(nosZ)。研究結(jié)果顯示,添加硫酸銨后短時(shí)間培養(yǎng)(2 d)就顯著提高土壤中nirK 和nirS基因的豐度,并且在長期培養(yǎng)(120 d)后進(jìn)一步提高了nirK 和nirS 基因的豐度(圖4 D 和圖4 E)。短期培養(yǎng)(2 d)時(shí),同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖處理組的nirK 和nirS 基因豐度大于單獨(dú)施加硫酸銨處理組,長期培養(yǎng)(120 d)時(shí),同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖處理組的nirK 基因豐度大于單獨(dú)施加硫酸銨處理組。添加硫酸銨和同時(shí)添加硫酸銨和葡萄糖雖然在短期培養(yǎng)時(shí)增加了nosZ基因的豐度,但是在第120 d 時(shí)nosZ 基因豐度沒有進(jìn)一步增加,甚至出現(xiàn)顯著下降(圖4F),從而阻止了NO向N 的轉(zhuǎn)化,最終導(dǎo)致了NO 的積累。
相關(guān)性分析發(fā)現(xiàn),溫室氣體NO 和N2O 的釋放與氨氧化細(xì)菌(bacteria-amoA)、氨氧化古菌(arch-amoA)和反硝化細(xì)菌中的nirK 和nirS 基因豐度呈極顯著正相關(guān)。總菌16S rRNA 基因豐度的變化與氨氧化細(xì)菌、氨氧化古菌和反硝化細(xì)菌豐度變化呈極顯著正相關(guān)。
前人研究表明,土壤中NO 的釋放與土壤基質(zhì)中的無機(jī)氮(NH4+和NO3-)含量和凈硝化速率密切相關(guān),如VELDKAMP 等在對(duì)23 種農(nóng)田生態(tài)系統(tǒng)的研究中發(fā)現(xiàn),NO 釋放的量和土壤無機(jī)氮含量之間存在顯著的正相關(guān)。STARK 等[16]在對(duì)9 種溫帶森林和牧場(chǎng)的土壤進(jìn)行研究后也得出類似的結(jié)論。與前人的研究一致,本試驗(yàn)在添加外源硫酸銨后,試驗(yàn)土壤的溫室氣體NO 和N2O 釋放速率均顯著上升,遠(yuǎn)高于對(duì)照組(圖3)。土壤的無機(jī)氮是土壤中硝化細(xì)菌以及反硝化細(xì)菌代謝活動(dòng)的底物,而土壤生物源NO 的產(chǎn)生正是這兩類細(xì)菌活動(dòng)的結(jié)果[17]。因此,外源施加氮可顯著增加溫室氣體NO 或N2O 的產(chǎn)生。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,單獨(dú)施加硫酸銨和同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖處理組的NH4+離子含量,均隨培養(yǎng)時(shí)間的延長而減少,同時(shí),NO3-離子含量隨培養(yǎng)時(shí)間的延長均相應(yīng)上升(圖2),說明其中微生物的硝化或反硝化作用對(duì)土壤的氮源進(jìn)行了轉(zhuǎn)化,并在轉(zhuǎn)化過程中產(chǎn)生了溫室氣體。
在土壤微生物對(duì)土壤銨態(tài)氮進(jìn)行利用的過程中,土壤的pH 值會(huì)發(fā)生顯著變化。本研究結(jié)果顯示,2 個(gè)處理的pH 值均隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長而顯著下降(圖1)。單獨(dú)施加硫酸銨以及同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖的處理pH 值在第2 d 即顯著下降。原因在于硫酸銨是一種酸性肥料,由于其本身的酸性作用,導(dǎo)致土壤的pH值下降,但是后期土壤pH 值進(jìn)一步下降的原因則是其中硝化或反硝化作用導(dǎo)致NH4+離子氧化,在土壤中留下 H+。
土壤的pH 值是影響土壤硝化和反硝化作用的決定因素之一[18-20]。微生物的硝化反應(yīng)主要發(fā)生在通氣良好并且pH 值大于4.0 的土壤中。REMDE 等研究發(fā)現(xiàn),在堿性土壤(pH 值7.8)中,NO 主要是由硝化反應(yīng)產(chǎn)生的,在酸性土壤(pH 值 4.7)中,NO 主要是由反硝化作用產(chǎn)生的。過高或者過低的土壤pH 值都會(huì)影響土壤的硝化反應(yīng),從而減少NO 等溫室氣體的釋放[12]。JIANG 等[19]研究也發(fā)現(xiàn),pH 值還是決定水稻土硝化過程中起主導(dǎo)作用的菌類的決定因素之一,即在酸性水稻土中,土壤的硝化反應(yīng)主要由氨氧化古菌主導(dǎo),而在堿性水稻土中,土壤的硝化反應(yīng)主要由氨氧化細(xì)菌主導(dǎo)。本次試驗(yàn)采用的土壤來自于酸化水稻土,暗示氨氧化古菌可能在原始酸化水稻土通過硝化反應(yīng)產(chǎn)生溫室氣體過程中發(fā)揮重要作用。
土壤NO 和N2O 的產(chǎn)生主要通過土壤微生物對(duì)其中氮素的轉(zhuǎn)化產(chǎn)生,其中硝化和反硝化細(xì)菌是NO 和N2O 的主要產(chǎn)生者[21]。土壤中硝化細(xì)菌將NH4+氧化成NO3-離子,反硝化細(xì)菌把NO3-最終還原成N2,在硝化和反硝化過程中產(chǎn)生NO 和N2O。土壤微生物的硝化作用包括自養(yǎng)硝化作用和異養(yǎng)硝化作用[22]。在通氣良好的土壤中,自養(yǎng)硝化作用是NO 氣體釋放的主要來源[7,23];而在低pH 即酸性環(huán)境中,異養(yǎng)硝化作用在NO 產(chǎn)生中發(fā)揮重要作用。同時(shí),在通氣較差的土壤中,反硝化作用將發(fā)揮主要作用,將NO3-或NO2-還原為N2或中間產(chǎn)物NO 和N2O[24]。本試驗(yàn)的相關(guān)性分析表明,NO 和N2O的釋放均與氨氧化細(xì)菌、氨氧化古菌以及反硝化細(xì)菌的中的nirK 和nirS 基因豐度呈顯著正相關(guān),說明本試驗(yàn)外源添加氮源后的溫室氣體釋放主要是由于硝化及反硝化作用產(chǎn)生的。
前人的研究表明,加入葡萄糖后能增加土壤N2O排放,這可能在于葡萄糖的加入為土壤微生物還原NO3-提供了碳源[25]。本試驗(yàn)研究結(jié)果與前人一致,即同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖處理的溫室氣體釋放在短期培養(yǎng)和長期培養(yǎng)后均顯著大于單獨(dú)施加硫酸銨處理組(圖3),說明外加碳源顯著增加酸化水稻土溫室氣體的釋放。在短期培養(yǎng)時(shí),溫室氣體的釋放和氨氧化古菌、反硝化細(xì)菌中的nirK 和nirS 基因的豐度變化一致,說明短期培養(yǎng)時(shí)外加碳源提高土壤溫室氣體釋放主要通過氨氧化古菌和反硝化作用進(jìn)行。在長期培養(yǎng)后,隨著微生物豐度的變化,溫室氣體釋放的趨勢(shì)主要與氨氧化細(xì)菌和反硝化細(xì)菌中的nirS 基因的豐度一致,同時(shí)nosZ 基因的豐度顯著下降,抑制了NO 轉(zhuǎn)化成N2,說明長期培養(yǎng)時(shí)添加碳源提高的溫室氣體主要是通過提高氨氧化細(xì)菌和反硝化作用進(jìn)行的。
相關(guān)性分析表明,本試驗(yàn)中氨氧化細(xì)菌和氨氧化古菌的基因豐度變化與反硝化細(xì)菌中nirK 和nirS 基因的豐度存在極顯著相關(guān),說明外源施加氮源后,隨著硝化作用的進(jìn)行,進(jìn)一步帶動(dòng)反硝化作用,從而最終產(chǎn)生溫室氣體。
單獨(dú)施加硫酸銨和同時(shí)施加硫酸銨和葡萄糖均可通過提高硝化和反硝化細(xì)菌的豐度來增加溫室氣體NO 和N2O 的排放,并且在短期培養(yǎng)和長期培養(yǎng)過程中,外加碳源主要通過調(diào)控不同的細(xì)菌種類產(chǎn)生溫室氣體。本研究結(jié)果為解釋酸化水稻土溫室氣體排放機(jī)制提供了理論支持,為進(jìn)一步研究全球溫室化過程提供了理論基礎(chǔ),比如解釋秸稈(可作為外源碳源)還田過程中稻田溫室氣體釋放的機(jī)制等。