劉婷巖 郝龍飛* 王續(xù)富 閆海霞 白淑蘭
(1. 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院,呼和浩特 010019;2. 呼和浩特市環(huán)境監(jiān)測(cè)中心站,呼和浩特 010030)
土壤氮有效性是氣候變化反饋機(jī)制的重要因子,同時(shí)也是影響植物生長(zhǎng)和物種多樣性的關(guān)鍵因素[1]。由于人類活動(dòng)產(chǎn)生的活性氮不斷增加,并以干、濕沉降的方式進(jìn)入地球表面,導(dǎo)致了一系列的生態(tài)問題,當(dāng)前中國(guó)已成為全球氮沉降最高的國(guó)家之一[2]。已有研究認(rèn)為,氮沉降已成為影響中國(guó)陸地生態(tài)系統(tǒng)平衡的主要驅(qū)動(dòng)因子,進(jìn)而影響森林生態(tài)系統(tǒng)土壤微生物多樣性及生態(tài)功能[3~4]。以往研究發(fā)現(xiàn),菌根共生關(guān)系受到氮沉降的影響,土壤氮限制地區(qū)的外源氮輸入會(huì)促進(jìn)菌根的生長(zhǎng),但隨著氮輸入量的增加,對(duì)菌根共生體的影響存在差異,差異程度取決于生態(tài)系統(tǒng)中氮沉降量及時(shí)間、土壤初始氮水平和菌根類型等因素[5]。
土壤酶作為生態(tài)系統(tǒng)的生物催化劑,且對(duì)外界環(huán)境變化非常敏感,其中β-1,4 葡萄糖苷酶(BG)、β-1,4-N-乙酰-氨基葡糖氨糖苷酶(NAG)、亮氨酸氨基肽酶(LAP)、酸性磷酸酶(ACP)和堿性磷酸酶(ALP)分別在土壤的碳、氮、磷養(yǎng)分循環(huán)利用中起著重要作用[6]。氮沉降作為外源氮進(jìn)入生態(tài)系統(tǒng),顯著影響土壤酶在生態(tài)系統(tǒng)養(yǎng)分循環(huán)過程中的作用[7]。以往關(guān)于氮輸入對(duì)土壤酶的影響有促進(jìn)[8]、抑制[9]和無(wú)影響[10]等不同結(jié)論,原因?yàn)橥寥烂冈诓煌h(huán)境中對(duì)氮沉降的響應(yīng)存在差異。土壤酶主要來源于土壤微生物和植物根系,以往關(guān)于氮沉降對(duì)菌根真菌和土壤酶兩者的單一研究已有大量的報(bào)道[11];且研究也發(fā)現(xiàn),菌根共生體顯著影響土壤酶的活性[12]。然而,菌根共生體形成后,其根際土壤酶活性對(duì)氮沉降的響應(yīng)研究較為缺乏。
本研究以北方地區(qū)菌根依賴型樹種長(zhǎng)白落葉松(Larix olgensis)苗木為材料,通過對(duì)比分析氮沉降對(duì)菌根苗和非菌根苗根系形態(tài)變化,結(jié)合氮沉降處理下土壤酶活性的變化規(guī)律,探討氮沉降對(duì)生態(tài)系統(tǒng)植物根系和菌根真菌共生關(guān)系中根系構(gòu)型和酶活性特征的影響,為全球變化背景下森林生態(tài)系統(tǒng)穩(wěn)定性研究提供理論參考。
研究所用外生菌根真菌為:褐環(huán)粘蓋牛肝菌(Suillus luteus)、厚環(huán)粘蓋牛肝菌(Suillus grevillei)、黃褐口蘑(Tricholoma fulvum)、淺灰小牛肝菌(Bo?letinus grisellus)、乳牛肝菌(Suillus bovinus)、球根白絲膜菌(Leucocortinarius bulbiger)、淺黃根須腹菌(Rhizopogon luteolus)和彩色豆馬勃(Pisolithus tinctorius)。
長(zhǎng)白落葉松種子用2%的KMnO4溶液消毒30 min,然后用無(wú)菌水沖洗4~5 次;在25℃恒溫光照培養(yǎng)箱中催芽,待種子萌發(fā)后播入裝有經(jīng)高溫、高壓滅菌基質(zhì)(蛭石與土體積比為1∶2)的花盆中(d=15 cm),并放入人工氣候室培育(溫度25℃,最大濕度60%,最大光照強(qiáng)度10 000 Lux)培養(yǎng)2 月后待用。
1.2.1菌劑制備
菌劑采用MMN 培養(yǎng)液與蛭石配置成固體培養(yǎng)基,高溫高壓滅菌1 h,待冷卻后分別接種上述8種外生菌根真菌的平板菌種,再置于25℃培養(yǎng)室內(nèi)培養(yǎng),45 d后即可長(zhǎng)滿瓶,以備用。
1.2.2接種處理
研究采用盆栽試驗(yàn),設(shè)置2 個(gè)接種處理,分別為接種處理(以下簡(jiǎn)稱+M,將8種菌劑等量混合后對(duì)幼苗進(jìn)行接種)和未接種處理(以下簡(jiǎn)稱-M)。接種方法為:在育苗盆底部放入適量滅菌基質(zhì),然后選取長(zhǎng)勢(shì)良好的菌劑等量混勻平鋪于滅菌基質(zhì)上,再選培養(yǎng)2 個(gè)月生長(zhǎng)良好的幼苗栽入其中,盡量使幼苗根系與菌劑充分接觸,每盆接種量20.0 g,每盆栽植5 株幼苗,覆滅菌基質(zhì),每盆質(zhì)量控制1.0 kg;對(duì)照處理加入經(jīng)滅菌的20.0 g 等量混合的固體菌劑,同樣方法進(jìn)行幼苗栽植,澆透水后,將不同處理育苗盆隨機(jī)排布,置于內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué)實(shí)驗(yàn)苗圃溫室大棚內(nèi)培養(yǎng)。
1.2.3模擬氮沉降處理試驗(yàn)
幼苗接種培養(yǎng)2 個(gè)月后,測(cè)定+M 處理苗木菌根侵染率達(dá)38.57%(-M 處理苗木菌根侵染率為0%),開始模擬氮沉降處理試驗(yàn)。根據(jù)試驗(yàn)區(qū)氮沉降背景值34.3 kg·N·hm-1·yr-1[8],設(shè)置4 個(gè)氮濃度處理:不施氮(0N,0 kg·N·hm-1·yr-1)、低氮(LN,15 kg·N·hm-1·yr-1)、中氮(MN,30 kg·N·hm-1·a-1)和高氮(HN,60 kg·N·hm-1·a-1)處理。用自來水溶解的NH4Cl 和NaNO3(NO3-:NH4+為1∶1)作為氮添加溶液,隔5 d 定量澆水150 mL/盆、隔10 d 定量施入氮添加溶液100 mL/盆,共施氮10次。接種和氮沉降處理各設(shè)置15個(gè)重復(fù)。采用噴灑方法將氮施入育苗盆中,既可以模擬降雨過程脈沖式將氮帶入土壤中,同時(shí)更為均勻。
最后一次模擬氮沉降試驗(yàn)結(jié)束15 d 后,從各處理中隨機(jī)選取長(zhǎng)勢(shì)較一致的長(zhǎng)白落葉松幼苗5株,用去離子水清洗根系附著雜物后進(jìn)行根系形態(tài)結(jié)構(gòu)的測(cè)定。用Epson 數(shù)字化掃描儀Expres?sion10000XL 進(jìn)行根系形態(tài)掃描,并使用Win RHI?ZO 根系圖像分析軟件對(duì)各處理根系形態(tài)結(jié)構(gòu)進(jìn)行定量分析,測(cè)定直徑0~0.5 mm根系的總根長(zhǎng)、總表面積、總體積、根尖數(shù)等形態(tài)指標(biāo)。
土壤酶活性的測(cè)定包括β-1,4-葡萄糖苷酶(BG)、β-1,4-N-乙酰-氨基葡糖氨糖苷酶(NAG)、亮氨酸氨基肽酶(LAP)、酸性磷酸酶(ACP)、堿性磷酸酶(ALP),具體測(cè)定參考Sinsabaugh 等的方法[13]。BG、NAG、ACP 的測(cè)定,根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)確稱取0.25 g 新鮮土壤,加入不同的4 mL 醋酸緩沖液配制的不同反應(yīng)底物溶液,20℃培養(yǎng)4 h。培養(yǎng)結(jié)束后,提取上清液2.5 mL 于試管中,加入NaOH 終止反應(yīng)和顯色,在410 nm 處測(cè)定吸光度。ALP 酶和LAP 測(cè)定方法與上述酶測(cè)定相似,分別準(zhǔn)確稱取0.25和0.35 g新鮮土樣,并分別采用碳酸鹽緩沖液和Tris-羥甲基-氨基甲烷緩沖液配制相應(yīng)底物溶液,LAP 反應(yīng)4 h 后不加NaOH,直接測(cè)定吸光度,以對(duì)硝基苯酚的濃度表征酶活性。
利用SPSS 23.0(SPSS for Windows,Chicago,USA)采用雙因素方差分析和LSD 多重比較法對(duì)接種菌根真菌和氮沉降處理下苗木根系形態(tài)和土壤酶差異顯著性進(jìn)行檢驗(yàn)。采用Sigmaplot10.0(Systat Software Inc.,San Jose,CA,USA)進(jìn)行繪圖。
對(duì)1 年生長(zhǎng)白落葉松苗木根系形態(tài)進(jìn)行雙因素方差分析,接種菌根真菌、氮沉降及二者交互作用對(duì)苗木直徑0~0.5 mm根系的總根長(zhǎng)、總表面積、總體積、根尖數(shù)的影響均達(dá)到極顯著水平(P<0.01)(見表1)。在+M 和-M 處理中,長(zhǎng)白落葉松苗木直徑0~0.5 mm根系形態(tài)指標(biāo)均隨氮沉降量遞增呈下降的趨勢(shì)。0N 處理苗木直徑0~0.5 mm 根系形態(tài)指標(biāo)均顯著高于MN 和HN。在0N、MN處理下,-M處理的總根長(zhǎng)、總表面積、總體積、根尖數(shù)均顯著高于+M 處理。-M 處理下,LN 處理的直徑0~0.5 mm 根系總根長(zhǎng)和根尖數(shù)較0N 處理分別降低了18.9%(P<0.05)和53.3%(P<0.05)。而HN 處理下,+M 處理根系的根尖數(shù)較-M 處理降低了32.1%(P<0.05)(見表1)。
對(duì)1 年生長(zhǎng)白落葉松苗木根際土壤酶活性進(jìn)行雙因素方差分析,接種菌根真菌顯著影響苗木根際BG、LAP、ALP 和NAG 活性(P<0.01),但對(duì)ACP 活性無(wú)顯著影響。氮沉降對(duì)苗木根際土壤酶活性的影響均達(dá)到了極顯著水平(P<0.01)。接種菌根真菌和氮沉降處理對(duì)ACP 無(wú)交互作用,而對(duì)BG、LAP、ALP和NAG活性的影響達(dá)到極顯著和顯著水平(見表2)。隨氮沉降量遞增,長(zhǎng)白落葉松苗木根際土壤中BG、LAP、ACP和ALP活性均呈先增加后下降的趨勢(shì),而NAG 活性呈下降的趨勢(shì)。+M處理苗木根際土BG 活性顯著高于-M 處理。0N 條件下,+M 與-M 相比根際土壤NAG 活性提高了74.7%(P<0.05);LN 條件下,+M 處理苗 木根際土壤LAP 活性較-M 處理提高了83.2% (P<0.05);MN 條件下,+M 處理根際土壤ACP 活性較-M 處理提高了17.6%(P<0.05);但+M 處理根際土壤ALP 活 性 較-M 處 理 降 低 了32.2%(P<0.05)(見表2)。
表1 氮沉降和接種菌根真菌對(duì)長(zhǎng)白落葉松苗木直徑0~0.5 mm根系形態(tài)的影響Table 1 Root morphology with diameter of 0-0.5 mm of L. olgensis seedlings under nitrogen deposition and inoculated with ectomycorrhizal fungi treatments
表2 氮沉降和接種菌根真菌對(duì)長(zhǎng)白落葉松幼苗根際土壤酶活性的影響Table 2 Rhizosphere soil enzyme activities of L. olgensis seedlings under nitrogen deposition and inoculated with ecto‐mycorrhizal fungi treatments(nmol·g-1·h-1)
兩種接菌處理下,長(zhǎng)白落葉松苗木直徑0~0.5 mm 根系的形態(tài)指標(biāo)與根際土壤BG 活性呈負(fù)相關(guān)關(guān)系(P<0.05);除根尖數(shù)與根際土壤NAG 活性間無(wú)顯著相關(guān)性外,其他根系形態(tài)指標(biāo)與NAG 活性均呈正相關(guān)關(guān)系(P<0.05);-M 處理下根際土壤LAP 活性與總根長(zhǎng)、總表面積和根系總體積呈顯著正相關(guān)(P<0.05)。接種菌根真菌和氮沉降交互作用的影響下,根系形態(tài)指標(biāo)與根際土壤BG 活性呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01);除根尖數(shù)與根際土壤ACP 活性顯著負(fù)相關(guān)性外(P<0.05),其他根系形態(tài)指標(biāo)與ACP 活性無(wú)相關(guān)性;除根尖數(shù)與根際土壤ALP 活性無(wú)顯著相關(guān)外,其他根系形態(tài)指標(biāo)與ALP活性均呈正相關(guān)(P<0.05)(表3)。
表3 接種菌根真菌處理下長(zhǎng)白落葉松苗木直徑0~0.5 mm根系形態(tài)與根際土壤酶活性相關(guān)性分析Table 3 Pearson’s correlation test between root morphology with diameter of 0-0.5 mm and rhizosphere soil enzyme activities of L.olgensis seedlings under inoculated with ectomycorrhizal fungi treatments
外生菌根真菌侵染植物根系,形成菌根共生體,增大根系吸收面積,促進(jìn)了植物對(duì)水分和養(yǎng)分的吸收,尤其對(duì)外生菌根依賴型樹種,共生關(guān)系形成后,提高植物對(duì)環(huán)境脅迫的適應(yīng)性[14]。根系形態(tài)構(gòu)型中根系長(zhǎng)度、表面積、體積、根尖數(shù)是衡量植物根系分布范圍和養(yǎng)分吸收能力的重要指標(biāo)。本研究中,接種菌根真菌、氮沉降及二者交互作用對(duì)苗木直徑0~0.5 mm根系形態(tài)的影響均達(dá)到極顯著水平(P<0.01),且不同接種處理下長(zhǎng)白落葉松苗木根系指標(biāo)均隨氮沉降量遞增呈下降的趨勢(shì),且-M 處理高于+M 處理(見表1)。與以往關(guān)于施用氮肥對(duì)落葉松人工林1 級(jí)根外生菌根侵染及形態(tài)的影響研究結(jié)果一致[15],原因可能為植物對(duì)環(huán)境變化具有較強(qiáng)的適應(yīng)性和可塑性,一定的氮沉降處理消除了土壤氮限制,植物通過調(diào)節(jié)細(xì)根的生長(zhǎng)形成最優(yōu)的資源獲取策略[16]。在相同氮沉降處理下,-M處理的總根長(zhǎng)、總表面積、總體積、根尖數(shù)均高于+M 處理(見表1)。與以往研究關(guān)于外生菌根真菌提高油松根系構(gòu)型的形態(tài)指標(biāo)的研究結(jié)果存在差異[14],其原因可能為菌根共生體中棒狀和二叉狀結(jié)構(gòu)提高了吸收根直徑[17],導(dǎo)致接種處理下直徑0~0.5 mm 根系中吸收根的根尖數(shù)減少;也可能植物菌根形成后,一部分碳水化合物分配給菌根真菌,自身根系形態(tài)構(gòu)型指標(biāo)降低,該觀點(diǎn)也符合植物生長(zhǎng)策略[16]。
土壤酶活性與土壤養(yǎng)分循環(huán)密切相關(guān),且高氮輸入對(duì)森林生態(tài)系統(tǒng)平衡產(chǎn)生顯著影響[18]。本研究發(fā)現(xiàn),氮沉降對(duì)苗木根際土壤酶活性的影響均達(dá)到了極顯著水平;而接種菌根真菌及其交互作用顯著影響苗木根際土壤BG、LAP、ALP和NAG活性,而對(duì)ACP 活性無(wú)顯著影響。同時(shí),隨氮沉降量遞增,長(zhǎng)白落葉松菌根和非菌根苗根際土壤酶(BG、LAP、ACP 和ALP)活性均呈先增加后下降的趨勢(shì),而NAG 活性呈下降的趨勢(shì)(見表2)。與以往關(guān)于氮沉降對(duì)廣東鼎湖山林地土壤酶活性的影響結(jié)果一致[19],原因可能為低氮水平緩解了土壤氮限制,促進(jìn)根系和微生物活性,進(jìn)而增加了土壤酶活性;而高氮處理可能導(dǎo)致嚴(yán)重的土壤酸化[20~21],影響土壤微生物活性,進(jìn)而導(dǎo)致高氮處理下土壤酶活性受到限制。本研究也發(fā)現(xiàn),隨氮沉降量增加,+M 處理根際土壤酶活性變化量高于-M處理(見表2),表明氮沉降對(duì)菌根苗根際土壤酶活性的影響高于非菌根苗。原因可能為HN處理下,根系較容易獲得養(yǎng)分,對(duì)菌根真菌的依賴性降低,削弱根系和菌根真菌的共生關(guān)系[22]。氮沉降處理下,+M 和-M 處理長(zhǎng)白落葉松苗木直徑0~0.5 mm根系形態(tài)與根際土壤BG 活性呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05),表明氮沉降下根系形態(tài)指標(biāo)降低而土壤BG活性增加。原因?yàn)橥寥繠G 主要來源于土壤微生物[23],氮添加會(huì)增加土壤中氮含量、纖維素和半纖維素的濃度,降低木質(zhì)素和糖類濃度,所以氮添加會(huì)促進(jìn)纖維素降解酶(BG)活性[24]。根據(jù)資源配置理論,氮沉降增加土壤無(wú)機(jī)氮的濃度,土壤微生物可能會(huì)減少氮獲取酶的產(chǎn)生,以往的研究大多使用資源分配理論來解釋氮獲取酶對(duì)氮添加的響應(yīng),與本研究結(jié)果根際土壤NAG 活性變化規(guī)律結(jié)果一致。研究也發(fā)現(xiàn),當(dāng)營(yíng)養(yǎng)限制發(fā)生變化時(shí)(如從N 限制到P 限制),根系和微生物可能會(huì)調(diào)整相關(guān)酶的產(chǎn)生,以保證植物和微生物平衡養(yǎng)分需求與周圍環(huán)境供應(yīng)之間的動(dòng)態(tài)平衡[25]。
(1)除土壤酸性磷酸酶外,接種菌根真菌、氮沉降及二者交互作用顯著影響苗木直徑0~0.5 mm根系的形態(tài)及根際土壤酶活性。
(2)苗木形成菌根后可以減弱氮沉降對(duì)苗木根系構(gòu)型的影響,尤其在低氮濃度下,菌根苗對(duì)根際土壤酶的活化程度顯著高于非菌根苗。
(3)高氮濃度顯著抑制菌根苗和非菌根苗吸收根根系形態(tài)構(gòu)型。
(4)隨著氮濃度的增加,長(zhǎng)白落葉松菌根苗顯著提高根際土壤相關(guān)酶(BG和NAG)的活性。