李 靜, 楊邵嵐, 黃 琳, 管政兵, 蔡宇杰, 廖祥儒*
(1.江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無錫 214122;2.江南大學(xué) 工業(yè)生物技術(shù)教育部重點實驗室,江蘇 無錫 214122)
瓊脂是從紅藻加工中獲得的多糖,由具有雜合結(jié)構(gòu)的半乳聚糖家族構(gòu)成,組分為瓊脂糖和瓊脂膠[1]。瓊脂糖是接近中性的多糖,是由1,3糖苷鍵連接的β-D-半乳糖(G)和由1,4糖苷鍵連接的3,6-內(nèi)醚-α-L-半乳糖(LA)殘基重復(fù)交替連接成的線性多糖分子,因其具有穩(wěn)定性和凝膠特性而受到廣泛應(yīng)用,例如作為食品添加劑、生物能源的原料、微生物生長培養(yǎng)基、糖果以及瓊脂果凍[2]。瓊脂膠的半乳聚糖主鏈上常有硫酸酯基團等其他基團,并結(jié)合著鈣、鎂等無機元素[3]。
瓊脂糖酶由瓊脂分解細(xì)菌產(chǎn)生,幫助瓊脂解聚,將其降解成低聚合度的寡糖中間體,再繼續(xù)通過反應(yīng)進行能量轉(zhuǎn)化[4-5]。瓊脂糖酶是生物研究領(lǐng)域的基本工具,可以從瓊脂糖凝膠中回收脫氧核糖核酸(DNA)條帶[6],更是制備寡糖和降解紅藻細(xì)胞壁的重要工具酶,用于提取具有抗氧化等活性的生物質(zhì)[7-8]。基于裂解模式,瓊脂糖酶分為α-瓊脂糖酶和β-瓊脂糖酶。目前研究的瓊脂糖酶多來源于海洋微生 物, 包 括 弧 菌 屬 (Vibrio)[9]、 交 替 單 胞 菌 屬(Alteromonas)[10]、假單胞菌屬(Pseudomonas)[11]、不動桿 菌 屬(Acinetobacter)和 鏈 霉 菌 屬(Streptomyces)等[12]。而這些菌株所產(chǎn)瓊脂糖酶活性低,降解瓊脂或瓊脂糖的能力普遍不高,如韓堯躍等[13]2015年分離的產(chǎn)瓊脂糖酶弧菌Ag-1,其發(fā)酵上清液酶活為7 U/mL;而張靜雅等[14]獲得的海洋弧菌HN897,酶活僅為0.41 U/mL;2018年,劉婷威等[15]對獲得的菌株Agarivorans albus RZW1-1進行發(fā)酵優(yōu)化,得到最高酶活為23.02 U/mL。由于現(xiàn)有瓊脂糖酶存在活性、穩(wěn)定性和生產(chǎn)率低等缺點,使得這些酶在工業(yè)生產(chǎn)中很少使用。迄今只有Sigma-Aldrich有限公司的β-瓊脂糖酶應(yīng)用于生產(chǎn),1 kU費用為1 854.4元,價格十分昂貴,所以目前僅用于科研[16]。
太歲作為一種大型混菌復(fù)合體,常以纖維素、幾丁素、甲殼質(zhì)為營養(yǎng)[17-18]。作者從太歲中篩選得到了多株產(chǎn)瓊脂糖酶的菌株,開展了菌種鑒定及初步優(yōu)化發(fā)酵條件的實驗,為非海洋來源瓊脂糖酶的開發(fā),進一步實施瓊脂糖酶基因的克隆表達(dá)及放大發(fā)酵等做了基礎(chǔ)研究。
1.1.1 樣品 太歲樣品由作者所在實驗室保藏。
1.1.2 主要試劑和儀器 酵母粉、蛋白胨、碘化鉀、碘、D-半乳糖、3-5二硝基水楊酸、NH4SO4、K2HPO4·3H2O、MgSO4·7H2O、瓊脂粉:國藥集團化學(xué)試劑有限公司產(chǎn)品;瓊脂糖(BiowestAgarose):無錫特達(dá)生物技術(shù)有限公司產(chǎn)品;柱式細(xì)菌基因提取試劑盒:天恩澤基因科技有限公司產(chǎn)品;2×Taq酶等PCR相關(guān)試劑:大連TaKaRa公司產(chǎn)品;pH計:奧豪斯儀器有限公司產(chǎn)品;凝膠成像系統(tǒng):Biorad公司產(chǎn)品;PCR儀、電泳儀:Biorad公司產(chǎn)品。
1.1.3 培養(yǎng)基與常用儲備液
1)篩選 培 養(yǎng) 基(g/L):Agar 15、(NH4)2SO42、K2HPO4·3H2O0.5、NaCl 0.2、MgSO4·7H2O0.02;pH為7。
2)搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):Agar 2,(NH4)2SO42、K2HPO4·3H2O 0.5、NaCl 0.2、MgSO4·7H2O 0.05、FeSO4·3H2O 0.02、CaCl20.01;pH為7。
3)種子培養(yǎng)基:同搖瓶發(fā)酵培養(yǎng)基。
4)種子液的制備:用接種環(huán)輕蘸單個菌落,接種至種子培養(yǎng)基,30℃、150 r/min過夜培養(yǎng)即為種子液。
5)DNS試劑:3,5-二硝基水楊酸3.15 g,在500 mL蒸餾水中溶解并攪拌,水浴至45℃,在溶液中按次序加入NaOH 20 g、酒石酸鉀91 g、無水亞硫酸鈉2.5 g、苯酚2.5 mL,攪勻,降至常溫后定容到1 000 mL,放入棕色試劑瓶避光密封,室溫下放置7 d后使用,6個月內(nèi)有效[19]。
6)底物溶液:瓊脂糖溶于pH為7的磷酸鹽緩沖液,使其終質(zhì)量濃度為0.5 g/dL,煮沸溶解后放置在40℃保溫。
1.2.1 菌種的篩選 取1 g太歲樣品加入10 mL無菌水后于小型料理機中攪碎處理,將處理后的樣品稀釋后涂布于篩選培養(yǎng)基平板上,30℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)2 d,為防止盧氏碘液對細(xì)胞造成損傷,先標(biāo)記篩選培養(yǎng)基上長出的單菌落并于新的平板上劃線,后在原平板上傾倒盧氏碘液,挑選原平板中有較大透明圈的菌落,將其對應(yīng)的新平板放入培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。轉(zhuǎn)接入有50 mL發(fā)酵培養(yǎng)基的250 mL錐形瓶中,30℃、150 r/min培養(yǎng)40 h,離心取上清液測酶活,選取540 nm處吸光度最高的細(xì)菌保存并鑒定。
1.2.2 菌株的鑒定
1)將菌株在平板上劃線至出現(xiàn)單個菌落,觀察其形態(tài),革蘭氏染色后觀察菌體細(xì)胞特征。
2)16S rRNA基因序列的PCR擴增和序列比對。利用柱式細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒,提取全基因組作為PCR模板DNA。擴增引物選用細(xì)菌鑒定通用引物:正向引物27F:5′-AGAGTTTGATCC TGGCTCAG-3′,反向引物1492R:5′-GGTTACCTTG TTACGACTT-3′。
PCR反應(yīng)體系(50μL):2×Taq酶溶液25μL,DNA模板1μL,上下游引物各1μL,ddH2O 22μL。擴增程序:94℃預(yù)變性3 min,94℃變性1 min,55℃退火30 s,72℃延伸1 min,30個循環(huán);72℃延伸10 min。取5μL擴增樣品進行電泳檢測,結(jié)果呈陽性(條帶大小正確)的樣品送至天霖生物科技(無錫)有限公司測序。測得序列結(jié)果利用NCBI的BLAST程序做同源性比對,選取比對后一些相似的菌株序列,運用MEGA5.0的Neighbor-Joining(NJ)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹。
1.2.3 酶活的測定 粗酶制備:4℃、8 000 r/min離心10 min取發(fā)酵上清液。
實驗組為200μL發(fā)酵液加入200μL質(zhì)量濃度0.5 g/dL的瓊脂糖底物,對照組在此基礎(chǔ)上再加入400μL DNS試劑,對粗酶液進行鈍化處理。兩組分別混勻后在40℃下反應(yīng)30 min,實驗組加入DNS試劑停止反應(yīng),煮沸5 min,冰水降溫后定容至5 mL。以對照組作為參照,測定其在540 nm處的吸光度,根據(jù)標(biāo)曲確定反應(yīng)產(chǎn)生的還原糖質(zhì)量。
瓊脂糖酶的酶活定義:依照上述前提,每分鐘產(chǎn)生1μg還原糖所需的酶量作為一個酶活單位U。酶活力以U/mL表示。
1.2.4 菌株的生長曲線和產(chǎn)酶曲線 將體積分?jǐn)?shù)2%的種子液加入發(fā)酵培養(yǎng)基,30℃、150 r/min培養(yǎng),間隔5 h取發(fā)酵液,以其在600 nm下的吸光度、發(fā)酵上清液的酶活力制作菌株的生長曲線和產(chǎn)酶曲線。
1.2.5 菌株產(chǎn)瓊脂糖酶的發(fā)酵優(yōu)化 采用單因素方法依次調(diào)整培養(yǎng)基的碳源、氮源及無機鹽質(zhì)量濃度。選取瓊脂粉、葡萄糖、可溶性淀粉、乳糖與瓊脂糖(均為0.2 g/dL)作為碳源,探究不同碳源對菌株產(chǎn)酶的影響。確定最合適的碳源后,探究菌株產(chǎn)酶與碳源的添加質(zhì)量濃度之間的關(guān)系。優(yōu)化碳源后,選擇牛肉膏、蛋白胨、NH4NO3、(NH4)2SO4及酵母粉(均為0.2 g/dL)作為氮源,進一步探究氮源的不同是否影響菌株產(chǎn)瓊脂糖酶。確定最佳氮源后,根據(jù)預(yù)實驗結(jié)果,確定K+、Mg2+及Ca2+為3種實驗因素(金屬離子添加形式分別為:K2HPO4·3H2O、MgSO4·7H2O、CaCl2),以濃度2 mmol/L和5 mmol/L為變量設(shè)計了8組實驗(見表1),從而確定產(chǎn)瓊脂糖酶的最佳發(fā)酵培養(yǎng)基。
表1 無機鹽濃度優(yōu)化Table 1 Optimization of the concentration of inorganic salts
1.2.6 數(shù)據(jù)分析及繪圖 所有實驗采用至少3個重復(fù),在此基礎(chǔ)上采用SPPSV13.0軟件進行統(tǒng)計分析。使用Origin 8.5軟件進行繪圖。
利用瓊脂糖酶篩選培養(yǎng)基,從太歲樣品得到幾株產(chǎn)生明顯透明圈的菌株。經(jīng)過初篩純化及搖瓶復(fù)篩之后,發(fā)現(xiàn)編號為P1的細(xì)菌產(chǎn)酶能力較強,初始酶活達(dá)到10.08 U/mL。將其作為目的菌株進行下一步研究。按照分子生物學(xué)的方法得到16SrRNA基因一段長1 425 bp的DNA,將得到的DNA利用NCBI網(wǎng)站的BLAST進行比對,結(jié)果顯示編號為P1的菌株序列與氣味類芽孢桿菌(Paenibacillus odorifer)的一致性超過99%。構(gòu)建系統(tǒng)進化樹顯示P1與Paenibacillus odorifer DSM 15391(T)在同一分支的置信度為77%,所以將其鑒定為類芽孢桿菌屬(見圖1)。
圖1 Paenibacillus sp.P1的16Sr RNA進化樹分析Fig.1 16S r RNA phylogenetic tree analysis of Paenibacillus sp.P1
單個P1菌落在篩選培養(yǎng)基上是白色半透明圓形、表面平整、邊緣規(guī)則的短桿狀細(xì)胞,呈革蘭氏陰性。經(jīng)生理生化鑒定,該菌具有固氮能力,既不能利用明膠,也無法水解纖維素(見表2)。
表2 Paenibacillus sp.P1生理生化鑒定Table 2 Physiological and biochemical identification of Paenibacillus sp.P1
利用發(fā)酵培養(yǎng)基在30℃培養(yǎng)60 h后,繪制菌株的生長及產(chǎn)酶曲線(見圖2),發(fā)現(xiàn)菌株在1~10 h時,生長緩慢,此時產(chǎn)酶量非常低。而在10~25 h期間,菌株屬于快速生長期,生物量劇增且酶量也逐步上升。之后P1進入生長穩(wěn)定期,此時生物量增長減緩,在35 h左右生物量有下降趨勢,但相應(yīng)酶活依然在增加,在40 h時達(dá)到最高值。之后菌種的生物量得到短暫回升后繼續(xù)降低,酶量也隨之減少。因此可判斷P1的最優(yōu)發(fā)酵時長為40 h,此時瓊脂糖酶酶活為10.1 U/mL。
圖2 Paenibacillus sp.P1的生長曲線和產(chǎn)瓊脂糖酶曲線Fig.2 Growth curve and agarase-producing curve of Paenibacillus sp.P1
選取瓊脂粉、葡萄糖、可溶性淀粉、乳糖與瓊脂糖(均為0.2 g/dL)作為碳源進行實驗,其他成分與發(fā)酵培養(yǎng)基中一致。30℃培養(yǎng)40 h測酶活(碳源質(zhì)量濃度的優(yōu)化與此步操作一致)。如圖3(a)所示,在以葡萄糖、可溶性淀粉和乳糖作為碳源時,P1的瓊脂糖酶產(chǎn)量較低,而以瓊脂粉和瓊脂糖作為碳源時,瓊脂糖酶的酶活雖相差不大,但瓊脂粉更能促進酶活升高。兩者的區(qū)別在于瓊脂粉中瓊脂膠占比更高,結(jié)合瓊脂膠的結(jié)構(gòu)以及后續(xù)實驗中金屬離子的濃度優(yōu)化結(jié)果,猜測是瓊脂膠上的基團對酶活提高起了促進作用,所以進一步的碳源優(yōu)化實驗選擇瓊脂粉作為碳源。圖3(b)中當(dāng)瓊脂粉質(zhì)量濃度不超過0.3 g/dL時,酶活隨著培養(yǎng)基中瓊脂粉質(zhì)量濃度的增加而增加,最高可達(dá)到16.9 U/mL,而當(dāng)瓊脂粉質(zhì)量濃度在0.3~0.5 g/dL時,酶活隨瓊脂粉質(zhì)量濃度升高而下降,因瓊脂粉中的瓊脂糖具有凝膠功能,猜測是瓊脂粉質(zhì)量濃度升高,使反應(yīng)液黏稠,導(dǎo)致菌株生長過緩,酶活下降。
圖3 碳源種類及瓊脂粉質(zhì)量濃度對Paenibacillus sp.P1產(chǎn)瓊脂糖酶的影響Fig.3 Effects of carbon source species and agarose concentration on agarase production by Paenibacillus sp.P1
選擇0.3 g/dL的瓊脂粉作為最佳碳源后,以質(zhì)量濃度均為0.2 g/dL的牛肉膏、蛋白胨、NH4NO3、(NH4)2SO4及酵母粉作氮源,考察氮源種類與瓊脂糖酶活力大小的聯(lián)系。結(jié)果如圖4所示,在選取的5種氮源下,P1都能產(chǎn)生瓊脂糖酶,但考慮到菌株本身的固氮能力,通過實驗只能得出的結(jié)論是以蛋白胨作為氮源時,菌株產(chǎn)酶最多,此時的酶活達(dá)到22.7 U/mL。
圖4 氮源種類對Paenibacillus sp.P1產(chǎn)瓊脂糖酶的影響Fig.4 Effects of nitrogen source species on agarase production by Paenibacillus sp.P1
在優(yōu)化碳源、氮源及一些基礎(chǔ)發(fā)酵條件后,酶活提升到原始酶活的2倍以上。而產(chǎn)瓊脂糖酶的發(fā)酵培養(yǎng)基中有不少無機鹽成分,所以進一步通過改變組分中的金屬離子濃度探究其對菌株產(chǎn)酶的影響。結(jié)果見圖5,第6組酶活最高,此時K+、Mg2+及Ca2+的濃度分別為5、2、5 mmol/L。當(dāng)培養(yǎng)基中K2HPO4·3H2O與CaCl2的濃度升高時,P1的酶活有所提高,其中Ca2+對酶活提升有明顯促進效果,而Mg2+濃度的增加則導(dǎo)致了酶活的降低??赡茈S著SO42-添加濃度的增加,與Ca2+發(fā)生了結(jié)合,導(dǎo)致了Ca2+的減少,使得Ca2+的促進作用被減弱,造成瓊脂糖酶活力減弱,Ca2+濃度的高低對瓊脂糖酶活的影響明顯,可能與瓊脂糖酶的結(jié)構(gòu)中有Ca2+結(jié)合位點有關(guān)。
圖5 金屬離子濃度對Paenibacillus sp.P1產(chǎn)瓊脂糖酶的影響Fig.5 Effect of metal ion concentration on agarase production by Paenibacillus sp.P1
我國的藻類資源十分豐富,但目前的開發(fā)利用產(chǎn)品多是以生產(chǎn)瓊脂作為化工及醫(yī)藥等原料出口,不僅附加值低,對環(huán)境也有污染。而通過瓊脂糖酶水解瓊脂或瓊脂糖可以高效獲得瓊脂寡糖[20],瓊脂寡糖具備抗氧化活性[21]、保濕美白、抗炎及抑制淀粉降解[22]的作用。關(guān)于瓊脂糖酶產(chǎn)生菌的篩選和重組瓊脂糖酶的研究雖然很多,但尚沒有可以應(yīng)用于工業(yè)的酶產(chǎn)品,且目前國內(nèi)主要研究海洋來源細(xì)菌及其產(chǎn)生的瓊脂糖酶。作者從太歲中分離得到3株產(chǎn)瓊脂糖酶菌株,其中編號為P1的菌株產(chǎn)酶能力較強。通過生理生化及分子生物學(xué)鑒定,確定該菌株為氣味類芽孢桿菌(P.odorifer)。國內(nèi)尚未見有P.odorifer產(chǎn)瓊脂糖酶的報道,關(guān)于類芽孢桿菌的瓊脂糖酶基因的研究也相對較少。國外報道中,Hosoda等從菠菜根際土壤中分離得到幾株產(chǎn)瓊脂糖酶的Paenibacillussp.,這些菌株優(yōu)先存在于根部而不是土壤,符合根瘤菌的特性,并且它們都具有多種細(xì)胞外瓊脂糖[23];Song等篩選到一株產(chǎn)瓊脂糖酶的菌Paenibacillussp.SSG-1,并通過菌株的全基因組測序得到瓊脂糖酶基因的序列[24]。
作者篩選獲得的Paenibacillussp.P1可以利用瓊脂作為唯一碳源,屬于非海洋來源的類芽孢桿菌屬,說明其含有將瓊脂糖水解成單糖的瓊脂糖水解酶體系,并且可能包含多種瓊脂糖酶,因此具有極大的開發(fā)潛力。實驗測定并繪制了該菌的生長及產(chǎn)酶曲線,其最佳產(chǎn)酶時間為培養(yǎng)40 h。通過對培養(yǎng)基的碳源、氮源及無機鹽濃度等因素的初步優(yōu)化,獲得其最適發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):Agar 3、蛋白胨2、K2HPO4·3H2O 1.0、NaCl 0.3、MgSO4·7H2O 0.05、FeSO4·3H2O 0.02、CaCl20.04(pH為7)。在最適發(fā)酵培養(yǎng)基中發(fā)酵40 h測定P1的瓊脂糖酶酶活,該菌株的最高酶活達(dá)到34.7 U/mL,酶活提高為原來的3.4倍,為菌株放大培養(yǎng)和后續(xù)的瓊脂糖酶應(yīng)用提供了基礎(chǔ)。為了對類芽孢桿菌的瓊脂糖酶進行更深入的研究,將考慮對菌種P1進行全基因組測序,挖掘出菌株中所有與瓊脂糖水解相關(guān)的酶的基因,進行克隆表達(dá)或進一步對基因進行改造,以獲得酶活力更高、穩(wěn)定性更好等性質(zhì)更優(yōu)良的瓊脂糖酶,從而進行更為全面的研究。后續(xù)實驗也將以此為方向展開,期望得到關(guān)于類芽孢桿菌所產(chǎn)瓊脂糖酶的具體生物信息,補充非海洋來源的瓊脂糖酶信息,對比類芽孢桿菌所產(chǎn)瓊脂糖酶之間的異同。另外可將一種或幾種瓊脂糖酶聯(lián)合應(yīng)用于藻類轉(zhuǎn)化,生產(chǎn)單糖以及瓊脂寡糖等,促進藻類資源的有效利用,將資源向高附加值產(chǎn)品轉(zhuǎn)化,為瓊脂糖酶的研究及藻類資源轉(zhuǎn)化提供更多方向。