国产日韩欧美一区二区三区三州_亚洲少妇熟女av_久久久久亚洲av国产精品_波多野结衣网站一区二区_亚洲欧美色片在线91_国产亚洲精品精品国产优播av_日本一区二区三区波多野结衣 _久久国产av不卡

?

煙草NNttGGCCNN22啟動(dòng)子的克隆及功能研究

2021-08-04 03:51:04翟春賀王浩李怡博蘇夢迪郭豪楊永霞張松濤
中國煙草學(xué)報(bào) 2021年3期
關(guān)鍵詞:結(jié)果表明擬南芥轉(zhuǎn)基因

翟春賀,王浩,李怡博,蘇夢迪,郭豪,楊永霞,張松濤*

1 河南農(nóng)業(yè)大學(xué)煙草學(xué)院,國家煙草栽培生理生化研究基地,煙草行業(yè)煙草栽培重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,河南鄭州農(nóng)業(yè)路63號(hào) 450002;

2 廣東煙草韶關(guān)市有限公司,廣東韶關(guān)北江中路27號(hào) 512000

真核翻譯起始因子2(eukaryotic Initiation Factor 2,eIF2)是調(diào)控蛋白翻譯起始階段的關(guān)鍵因子。eIF2的α亞基發(fā)生磷酸化修飾后,可抑制蛋白質(zhì)翻譯起始。目前,在動(dòng)物中已發(fā)現(xiàn)四種可磷酸化eIF2α的蛋白激酶,包括PKR(protein kinase double-stranded RNA-dependent)、HRI(heme-regulated inhibitor)、PERK(PKR-like endoplasmic reticulum kinase) 和GCN2(General Control Non-derepressible 2)。在動(dòng)物和芽殖酵母中,當(dāng)氨基酸缺乏時(shí),GCN2介導(dǎo)的eIF2α磷酸化可以降低翻譯起始速率,同時(shí)激活氨基酸合成相關(guān)基因的表達(dá),從而應(yīng)對(duì)氨基酸缺乏[1-2]。在植物中,目前只發(fā)現(xiàn)GCN2一種蛋白激酶可使eIF2α磷酸化,暗示著GCN2在植物營養(yǎng)缺乏中起重要作用。

植物GCN2在多種組織中均可表達(dá)。在擬南芥和煙草中,AtGCN2和NtGCN2在根、莖、葉、花中均可表達(dá)[3]。其中,NtGCN2在葉片中表達(dá)量最高,在根和莖中表達(dá)量最低。此外,GCN2還參與植物生長發(fā)育的調(diào)控。在擬南芥中,gcn2突變會(huì)導(dǎo)致種子萌發(fā)延遲,葉片變長,葉綠素含量降低[4]。GCN2還可以響應(yīng)多種生物和非生物脅迫[5-10]。紫丁香假單胞菌和黃斑病菌ES4326侵染擬南芥時(shí),GCN2被激活并磷酸化eIF2α,同時(shí)在侵染前期正調(diào)控ABA生物合成[11]。在煙草中,煙粉虱侵染也可以激活煙草GCN2的表達(dá)[13]。此外,低溫、鹽脅迫、UV輻射、干旱和冷害等非生物脅迫均能激活GCN2的表達(dá)[3,12-13]。

植物激素是由植物自身代謝產(chǎn)生的一類有機(jī)物質(zhì),在極低的濃度下就對(duì)植物生長發(fā)育有明顯生理效應(yīng),在植物生長發(fā)育過程中起重要作用。研究發(fā)現(xiàn),GCN2可被多種植物激素激活,包括壬二酸(AZA)、茉莉酸甲酯(MeJA)和水楊酸(SA)等[3,12-13]。茉莉酸甲酯和水楊酸均是植物生長發(fā)育及抗逆反應(yīng)中起重要作用的內(nèi)源性激素,其中水楊酸是植物系統(tǒng)獲得性抗性(Systemic Acquired Resistance,SAR)的重要信號(hào)分子[14-15],而茉莉酸甲酯參與了植物防御信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)。噴施茉莉酸甲酯和水楊酸可激活A(yù)tGCN2[4,12],表明GCN2可能在植物防御食草昆蟲中發(fā)揮了重要作用。脫落酸(ABA)是一種應(yīng)激激素,在植物遭受干旱和鹽脅迫時(shí)迅速積累,參與植物逆境響應(yīng)[16]。擬南芥受到病原菌侵染時(shí),GCN2參與了ABA信號(hào)傳導(dǎo),進(jìn)而關(guān)閉氣孔,限制病原體進(jìn)入[11]。AZA是植物生物脅迫和非生物脅迫下脂質(zhì)過氧化的產(chǎn)物,它能夠引起植物中SA的積累進(jìn)而引發(fā)防御反應(yīng)[17]。在擬南芥和煙草中,一定濃度的壬二酸處理可激活GCN2[3,12]。這些研究結(jié)果表明GCN2可以響應(yīng)多種植物激素,廣泛參與了植物對(duì)各種脅迫的應(yīng)答。

目前啟動(dòng)子的相關(guān)研究主要集中在組織特異性啟動(dòng)子、誘導(dǎo)型啟動(dòng)子和合成啟動(dòng)子的發(fā)現(xiàn)和應(yīng)用等方面[18-22]。組織特異性啟動(dòng)子如牽牛子綠色組織特異性PNZIP(pharbitis nil leucine zipper)啟動(dòng)子和煙草腺毛特異表達(dá)的TTR1啟動(dòng)子(Transthyretin 1)。前者可以驅(qū)動(dòng)外源基因在綠色組織中高表達(dá),后者可以在腺毛中特異表達(dá)外源基因。誘導(dǎo)型啟動(dòng)子PR1aP(Pathogenesis-related genes la)具有水楊酸誘導(dǎo)性[23-25]。合成啟動(dòng)子由核心啟動(dòng)子區(qū)和應(yīng)答元件組合而成,也可以通過構(gòu)建啟動(dòng)子文庫合成[21]。研究發(fā)現(xiàn),根特異性順式作用元件模塊與玉米泛素基因啟動(dòng)子PortUbi882(Porteresia ubiquitin)上86 bp核心序列融合而成的合成啟動(dòng)子可以驅(qū)動(dòng)GUS基因在煙草的根部特異性表達(dá)[26]。此外,利用CRISPR/Cas9技術(shù)通過敲除或插入應(yīng)答元件探究啟動(dòng)子功能也是啟動(dòng)子研究的一種重要手段[27]。

目前關(guān)于GCN2的研究大多集中在動(dòng)物和芽殖酵母中[28-29],植物GCN2的研究主要集中在模式植物擬南芥,但目前有關(guān)GCN2啟動(dòng)子的研究尚未見報(bào)道,其調(diào)控機(jī)制尚不明確。實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn)煙草NtGCN2包含了NtGCN2-1和NtGCN2-2兩個(gè)拷貝,二者在進(jìn)化上分別來自于其親本林煙草和絨毛狀煙草[12]。本研究從煙草中克隆了NtGCN2-1上游2000 bp的啟動(dòng)子NtGCN2-Nsy-pro2000,構(gòu)建了NtGCN2-Nsy-pro2000驅(qū)動(dòng)的GUS基因表達(dá)載體,將其轉(zhuǎn)化煙草后分析煙草NtGCN2啟動(dòng)子在不同植物激素處理下的表達(dá)模式,為進(jìn)一步研究GCN2基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控機(jī)制提供了資料。

1 材料與方法

1.1 材料

植物材料:N. tabacumK326種植在河南農(nóng)業(yè)大學(xué)煙草栽培生理生化研究基地實(shí)驗(yàn)室。

菌株和載體:pCAMBIA-NPT-GUS載體為河南農(nóng)業(yè)大學(xué)煙草栽培生理生化研究基地保存,大腸桿菌Escherichia coliDH5α,農(nóng)桿菌Agrobacterium tumefaciensEHA105感受態(tài)購于諾唯贊生物科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 啟動(dòng)子克隆及質(zhì)粒構(gòu)建

根據(jù)NtGCN2基因上游2000 bp序列設(shè)計(jì)引物(表1),以煙草K326基因組DNA為模板擴(kuò)增NtGCN2上游啟動(dòng)子序列,將NtGCN2-Nsy-pro2000連接至pCAMBIA-NPT-GUS載體的HindIII和EcoRI位點(diǎn),替代原有的35S啟動(dòng)子,將獲得的表達(dá)載體pCAMBIA-NPT-NtGCN2-Nsy-pro2000::GUS轉(zhuǎn)化大腸桿菌E. coliDH5α,挑選陽性菌落鑒定后進(jìn)行測序。

表1 本實(shí)驗(yàn)用到的引物Tab. 1 The primers used in this study

1.2.2NtGCN2啟動(dòng)子序列分析

采 用Plant CARE (http//bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)和PLACE數(shù)據(jù)庫(https://www.dna.affrc.go.jp/PLACE/?action=newplace)分 析啟動(dòng)子序列并預(yù)測應(yīng)答元件。

1.2.3 煙草遺傳轉(zhuǎn)化及PCR鑒定

采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的葉盤轉(zhuǎn)化法[30]將NtGCN2-Nsy-pro2000::GUS片段轉(zhuǎn)入煙草K326中,獲得轉(zhuǎn)基因株系。

提取轉(zhuǎn)基因植株DNA,采用GUS-F/R引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR反應(yīng)程序:95℃預(yù)變性10 min;95℃變性10 s,55℃退火30 s,72℃延伸1 min,重復(fù)30個(gè)循環(huán);72℃延伸10 min。

1.2.4 激素處理

選取在培養(yǎng)基中培養(yǎng)30 d的轉(zhuǎn)基因煙苗進(jìn)行處理,將過濾后的激素(1 mmol/L SA、0.1 mmol/L MeJA、0.1 mmol/L ABA、0.1 mmol/L AZA,SA、MeJA、 ABA和AZA購自生工生物工程有限公司)用干凈的噴壺均勻噴灑到煙草幼苗上,分別在噴施0 h、24 h、48 h后取培養(yǎng)基上幼苗8~10棵用于GUS基因分析和GUS酶活性檢測。

1.2.5 RNA提取及實(shí)時(shí)熒光定量PCR

采用艾德萊試劑公司植物總RNA快速通用試劑盒提取上述待測樣品總RNA,諾唯贊生物科技有限公司HiScript? II Reverse Transcriptase試劑盒進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄。實(shí)時(shí)熒光定量PCR以轉(zhuǎn)基因煙草cDNA為模板,采用L25和GUS上下游引物對(duì)進(jìn)行定量PCR(表1)。反應(yīng)體系為:2 μL模板,0.5 μL上下游引物,10 μL SYBR Green Mix,7 μL ddH2O。反應(yīng)程序采用95℃預(yù)變性10 min;95℃變性10 s,60℃退火30 s,重復(fù)30個(gè)循環(huán);70℃-95℃獲得溶解曲線。以L25為內(nèi)參基因,采用2-ΔΔCT法計(jì)算定量結(jié)果。

1.2.6 GUS組織化學(xué)染色

取待測樣品浸入-20℃預(yù)冷的90%丙酮,冰上靜置15 min。將樣品浸入GUS染液(10 mmol/L Na2EDTA、1 mmol/L K3[Fe(CN)6]、1 mmol/L K4[Fe(CN)6]、0.5% Triton X-100、20%甲醇、pH為7的100 mmol/L磷酸緩沖溶液、1 mg/mL X-Gluc),37℃過夜。采用75%~95%乙醇進(jìn)行梯度脫色至透明,觀察染色情況并拍照。

1.2.7 GUS酶活性分析

取100 mg待測樣品液氮研磨粉碎,置入2 mL離心管,加入1 mL GUS酶提取液(100 mL pH為7的0.1 M 磷酸緩沖液,2 mL 10% SDS溶液,4 mL pH為8的0.5 M EDTA溶液,200 μL Triton X-100溶液,β-巰基乙醇200 μL,混勻后定容至200 mL),混勻后在12000 rpm離心5 min(4℃),將上清液轉(zhuǎn)移至新的離心管,-80℃保存待用。

采用Bradford法測定蛋白濃度,取20 μL蛋白上清,加入80 μL 37℃預(yù)熱的GUS酶提取液,再加入100 μL 底物MUG,37℃溫浴30 min。365 nm激發(fā)波長,455 nm發(fā)射波長,狹縫10 nm條件下測定熒光強(qiáng)度,根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算酶活性。

2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

2.1 啟動(dòng)子序列克隆與分析

2.1.1NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子克隆與表達(dá)載體構(gòu)建

以煙草K326基因組DNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,結(jié)果如圖1A所示。對(duì)獲得的重組載體進(jìn)行PCR鑒定,結(jié)果如圖1B所示。PCR擴(kuò)增產(chǎn)物大小約為2000 bp,均與預(yù)期結(jié)果一致。測序結(jié)果表明pCAMBIANPT-NtGCN2-Nsy-pro2000::GUS載體構(gòu)建成功。

圖1 PCR擴(kuò)增NtGCN2-Nsy-pro2000片段與重組載體鑒定Fig.1 PCR amplification of the NtGCN2-Nsy-pro2000 and identification of the recombinant vector

2.1.2NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子序列分析

對(duì)獲得的NtGCN2-Nsy-pro2000序列進(jìn)行順式作用元件分析發(fā)現(xiàn),該序列含有高等植物啟動(dòng)子核心區(qū)域和上游調(diào)控區(qū)。其上游調(diào)控區(qū)分布著多種脅迫響應(yīng)元件,包括干旱誘導(dǎo)元件(MBS)、脫落酸應(yīng)答元件(ABRE)、與茉莉酸甲酯應(yīng)答相關(guān)的基序(TGACG-motif)、乙烯應(yīng)答元件(ERE)、光響應(yīng)元件(AE-box)、厭氧誘導(dǎo)應(yīng)答元件(ARE)以及參與防御和脅迫應(yīng)答的元件(TC-rich repeasts)(表2)。

表2 NtGCN2-Nsy-pro2000順式作用元件預(yù)測Tab. 2 Prediction of NtGCN2-Nsy-pro2000 cis-acting elements

將獲得的NtGCN2-Nsy-pro2000與不同煙草中GCN2啟動(dòng)子序列進(jìn)行比對(duì)分析。BLAST分析結(jié)果顯示NtGCN2-Nsy-pro2000與NsyGCN2-pro相似度高達(dá)98.9%(數(shù)據(jù)未顯示)。系統(tǒng)進(jìn)化分析結(jié)果發(fā)現(xiàn)煙草GCN2啟動(dòng)子在進(jìn)化上分為兩種類型,其中NtGCN2-Nsy-pro2000、弱毒煙草NatGCN2-pro(N. attenuata)、白肋煙TN90GCN2-X3-pro(N. tabacum TN90 X3)與林煙草NsyGCN2-pro(N. sylvestris)在進(jìn)化上親緣關(guān)系較近。白肋煙TN90GCN2-pro(N. tabacum TN90)與絨毛狀煙草NtoGCN2-pro(N. tomentosiformis)在進(jìn)化上親緣關(guān)系較近(圖2)。這些結(jié)果表明NtGCN2-Nsypro2000在進(jìn)化上可能來自林煙草。

圖2 不同品種煙草GCN2啟動(dòng)子的系統(tǒng)進(jìn)化分析Fig.2 The phylogenetic analysis of the GCN2 promoter from different tobacco varieties

2.2 NtGCN2-Nsy-pro2000::GUS的遺傳轉(zhuǎn)化

采用農(nóng)桿菌介導(dǎo)的方法進(jìn)行遺傳轉(zhuǎn)化,結(jié)果如圖3所示。未侵染菌液的K326葉片在含有卡那霉素的分化培養(yǎng)基上逐漸發(fā)白死亡(圖3A),而在不含卡那霉素的分化培養(yǎng)基上正常分化(圖3B),NtGCN2-Nsy-pro2000::GUS轉(zhuǎn)基因葉片分化出不定芽(圖3C),將其移至生根培養(yǎng)基上培養(yǎng),獲得轉(zhuǎn)基因植株(圖3D)。

圖3 NtGCN2-Nsy-pro2000遺傳轉(zhuǎn)化Fig.3 Genetic transformation of NtGCN2-Nsy-pro2000

2.3 轉(zhuǎn)基因株系篩選與鑒定

2.3.1 組織化學(xué)染色分析

對(duì)獲得的轉(zhuǎn)基因株系進(jìn)行GUS化學(xué)染色,結(jié)果如圖4所示。其中,CaMV35S啟動(dòng)子轉(zhuǎn)基因植株和NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子轉(zhuǎn)基因植株葉片均被染上藍(lán)色。該結(jié)果初步表明NtGCN2-Nsy-pro2000具有啟動(dòng)子活性,并在葉片中表達(dá)量最高,該結(jié)果與擬南芥和煙草中的基因表達(dá)結(jié)果相一致[4,12]。

圖4 轉(zhuǎn)基因煙草幼苗的GUS組織化學(xué)染色Fig.4 The GUS staining of transgenic tobacco seedlings

2.3.2 PCR鑒定

以提取轉(zhuǎn)基因煙草植株的DNA為模板,采用GUS-F/R引物進(jìn)行DNA鑒定,結(jié)果如圖5所示。其中,以質(zhì)粒為模板的陽性對(duì)照擴(kuò)增出250 bp左右的條帶,而以提取的K326植株DNA為模板的陰性對(duì)照未擴(kuò)增出條帶,NtGCN2-Nsy-pro2000轉(zhuǎn)基因株系擴(kuò)增產(chǎn)物與陽性對(duì)照擴(kuò)增產(chǎn)物大小一致。該結(jié)果說明pCAMBIA-NPT-NtGCN2-Nsy-pro2000::GUS載體成功整合至煙草K326的基因組中。

圖5 轉(zhuǎn)基因煙草的DNA-PCR鑒定Fig.5 DNA-PCR identification of transgenic tobacco

2.4 不同植物激素處理下NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子表達(dá)分析

采用SA處理NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子轉(zhuǎn)基因幼苗后,轉(zhuǎn)基因植株GUS基因表達(dá)和酶活測定結(jié)果如圖6A所示。結(jié)果表明,SA處理后,GUS表達(dá)量和酶活性均呈現(xiàn)出先增加后降低的趨勢。其中,SA處理24 h后,GUS表達(dá)量和酶活性最高。GUS基因表達(dá)量結(jié)果表明,SA處理24 h和48 h后GUS基因表達(dá)量顯著高于0 h。GUS酶活性分析發(fā)現(xiàn),SA處理24 h后GUS酶活性提高,48 h后下降。這些結(jié)果表明SA處理24 h激活GCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子的表達(dá)。

MeJA處理NtGCN2-Nsy-pro2000轉(zhuǎn)基因幼苗后,轉(zhuǎn)基因植株GUS基因表達(dá)和酶活性分析如圖6B所示。結(jié)果表明,MeJA處理后GUS基因表達(dá)和酶活性呈下降趨勢。MeJA處理24 h和48 h后,GUS表達(dá)量與0 h相比顯著下降。GUS酶活性測定結(jié)果表明,在處理24 h和48 h后,GUS酶活性顯著下降,與GUS基因表達(dá)結(jié)果一致。這些結(jié)果表明MeJA抑制GCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子的表達(dá)。

ABA處理NtGCN2-Nsy-pro2000轉(zhuǎn)基因幼苗后,轉(zhuǎn)基因植株GUS基因表達(dá)和酶活性分析如圖6C所示。結(jié)果表明,ABA處理后,GUS基因表達(dá)量呈上升趨勢而GUS酶活性呈先上升后下降趨勢。ABA處理24 h和48 h后,GUS基因表達(dá)量持續(xù)增加。GUS酶活性測定在ABA處理24 h后顯著增加,處理48 h后顯著低于對(duì)照0 h。這些結(jié)果表明ABA處理可以激活GCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子的表達(dá)活性。

AZA處理NtGCN2-Nsy-pro2000轉(zhuǎn)基因幼苗后,GUS基因定量表達(dá)和酶活性分析結(jié)果如圖6D所示。結(jié)果表明,AZA處理后GUS基因表達(dá)量呈上升趨勢而酶活性呈先下降后上升趨勢。處理48 h后GUS基因表達(dá)量是0 h的3.27(±0.05)倍,GUS酶活性是0 h的1.14(±0.02)倍。這些結(jié)果表明,NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子的表達(dá)活性在AZA處理48 h達(dá)到最大。

3 討論

在植物中,GCN2廣泛參與了多種生物和非生物脅迫應(yīng)答[3-4]。此外,GCN2也可以被多種植物激素(SA、MeJA、AZA等)所激活[3-4,12]。本研究克隆了煙草NtGCN2基因啟動(dòng)子,發(fā)現(xiàn)啟動(dòng)子中存在眾多脅迫應(yīng)答元件,分析了不同植物激素處理下NtGCN2基因啟動(dòng)子的表達(dá)。

圖6 SA、MeJA、ABA及AZA處理對(duì)轉(zhuǎn)基因株系GUS基因表達(dá)量和酶活性的影響Fig.6 Effects of SA, MeJA , ABA and AZA treatments on the expression and enzymatic activity of GUSin transgenic lines

啟動(dòng)子通常位于基因上游,包含典型的核心啟動(dòng)子區(qū)和調(diào)控區(qū),是基因表達(dá)的重要調(diào)控元件。本研究克隆的NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子有典型的高等植物啟動(dòng)子結(jié)構(gòu)特點(diǎn),調(diào)控區(qū)域存在諸多順式作用元件,如干旱誘導(dǎo)元件(MBS)、脫落酸應(yīng)答元件(ABRE)、茉莉酸甲酯應(yīng)答元件(TGACG-motif)、乙烯應(yīng)答元件(ERE)、光響應(yīng)元件(AE-box)、厭氧誘導(dǎo)應(yīng)答元件(ARE)以及參與防御和脅迫應(yīng)答元件(TCrich repeasts)。在擬南芥和煙草中,GCN2可以響應(yīng)干旱和冷害等非生物脅迫應(yīng)答,同時(shí)也參與了SA、ABA、MeJA和AZA等植物激素應(yīng)答[3,12],這可能與NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子上含有眾多順式作用元件有關(guān)。

在煙草中,本實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn)NtGCN2基因存在兩個(gè)拷貝NtGCN2-1和NtGCN2-2,二者分別來自于其親本林煙草和絨毛狀煙草[4,10]。本實(shí)驗(yàn)克隆了NtGCN2-1基因上游2000 bp的啟動(dòng)子NtGCN2-Nsypro2000,系統(tǒng)進(jìn)化分析發(fā)現(xiàn)該啟動(dòng)子序列與林煙草啟動(dòng)子序列相似度高達(dá)98.9%,這與NtGCN2-1在進(jìn)化上來源于林煙草的結(jié)論一致[4,10]。

在煙草和擬南芥中,GCN2基因在根、莖、葉和花中均有表達(dá)[4,12]。煙草中,葉片中GCN2-1基因表達(dá)量最高,花莖次之,根中最低。本研究發(fā)現(xiàn)NtGCN2-Nsy-pro2000轉(zhuǎn)基因株系幼苗的葉片中GUS染色最深,而在根和莖中未發(fā)現(xiàn)藍(lán)色。該結(jié)果與NtGCN2在煙草中基因表達(dá)量結(jié)果相一致[4,12]。另外,盡管在根中未檢測到染色,但基因表達(dá)結(jié)果表明其在根中有相對(duì)較低的表達(dá)。同時(shí),擬南芥AtGCN2在根、莖、葉、花和角果中均有表達(dá)[4],因此推測該啟動(dòng)子可能不具有組織特異性。

GCN2在動(dòng)物和芽殖酵母中能夠被氨基酸等營養(yǎng)缺乏激活,進(jìn)而磷酸化eIF2α調(diào)節(jié)蛋白合成以應(yīng)對(duì)脅迫和維持生存。GCN2在植物逆境脅迫中起重要作用。擬南芥和煙草中,GCN2廣泛參與了各種生物和非生物脅迫(植物激素、干旱、低溫、鹽害和病蟲害等)應(yīng)答[12,14,31]。本研究中,NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子序列分析發(fā)現(xiàn)其上含有包括茉莉酸甲酯和脫落酸等植物激素應(yīng)答元件在內(nèi)的諸多順式作用元件。植物激素ABA在植物抗逆中起重要作用,當(dāng)植物受到干旱和鹽脅迫時(shí),植物體內(nèi)ABA迅速積累以響應(yīng)逆境[32]。在擬南芥和煙草中,GCN2能被ABA激活[10-11]。本研究發(fā)現(xiàn)NtGCN2-Nsy-pro2000序列上存在一個(gè)ABA應(yīng)答元件(-1292 bp~-1298 bp),ABA處理激活了NtGCN2-Nsy-pro2000驅(qū)動(dòng)的GUS基因表達(dá)。因此,推測ABA可能通過與啟動(dòng)子中ABA應(yīng)答元件相互作用激活了GCN2的表達(dá)。茉莉酸甲酯可誘導(dǎo)激活植物防御機(jī)制,外源茉莉酸甲酯可激活植物對(duì)干旱、低溫和鹽脅迫等逆境的響應(yīng)[33-35]。本研究結(jié)果發(fā)現(xiàn)NtGCN2-Nsy-pro2000上含有兩個(gè)MeJA應(yīng)答元件(-131 bp~-135 bp,-840 bp~-844 bp),MeJA激素處理結(jié)果表明MeJA抑制了NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子活性,該結(jié)果與實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn)MeJA處理抑制了NtGCN2基因表達(dá)的結(jié)論相一致[12]。水楊酸是一種天然的植物激素信號(hào)分子,大量研究表明一定濃度的外源SA可以減輕鹽脅迫對(duì)植物造成的危害[36-41]。在擬南芥和煙草中,SA處理激活了GCN2基因的表達(dá)[12,14]。本研究發(fā)現(xiàn)雖然NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子上未預(yù)測到SA應(yīng)答元件,但是SA處理24 h激活了NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)的GUS基因表達(dá)。該結(jié)果與擬南芥、煙草中SA激活GCN2基因表達(dá)的結(jié)果相一致。AZA是激活植物防御基因表達(dá)的誘導(dǎo)劑,在系統(tǒng)獲得性抗性防御中起誘導(dǎo)作用[42]。在擬南芥和煙草中,AZA處理均激活了GCN2基因的表達(dá),這與本研究中AZA處理48 h激活NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)的GUS基因表達(dá)的結(jié)果相一致[12,14]。雖然在NtGCN2-Nsy-pro2000序列上未發(fā)現(xiàn)AZA和SA應(yīng)答元件,但是SA和AZA處理后GCN2基因和NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)GUS基因均被激活,說明NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子上可能存在著未預(yù)測到的SA和AZA應(yīng)答元件,或者存在其它未知的調(diào)控機(jī)制。此外,缺失突變分析發(fā)現(xiàn)玉米亞硫酸氧化酶基因(ZmSO)啟動(dòng)子上含有的119 bp DNA元件能被ABA和干旱激活[43];柑橘CsLCYb1(Lycopene β-cyclase)基因啟動(dòng)子含有的增強(qiáng)子元件可區(qū)分不同的柑橘種類[44];小麥TaSnRK2(sucrose non-fermenting 1-related protein kinase 2)基因啟動(dòng)子TaSnRK2.8區(qū)域存在著莖特異性元件(-1481~-821)、葉特異性元件和根特異性元件(-2631~-1481 之間)[45]。因此,研究將進(jìn)一步對(duì)NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子進(jìn)行5’端缺失突變分析,明確其順式作用元件的功能,為GCN2啟動(dòng)子調(diào)控研究奠定基礎(chǔ)。

4 結(jié)論

本研究克隆了NtGCN2上游2000 bp序列,構(gòu)建了NtGCN2-Nsy-pro2000::GUS啟動(dòng)子表達(dá)載體,并獲得了啟動(dòng)子轉(zhuǎn)基因株系。分析了NtGCN2-Nsypro2000啟動(dòng)子在四種植物激素脅迫下的表達(dá),初步探究NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子的功能,得出以下結(jié)論:(1)克隆的NtGCN2上游2000 bp基因序列具有啟動(dòng)子活性,在進(jìn)化上可能來源于其親本林煙草。(2)NtGCN2-Nsy-pro2000驅(qū)動(dòng)的GUS基因表達(dá)在四種激素處理下有不同的響應(yīng)模式,AZA、ABA和SA激活NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)的GUS基因表達(dá),而MeJA抑制了NtGCN2-Nsy-pro2000啟動(dòng)子驅(qū)動(dòng)的GUS基因表達(dá)。本研究從啟動(dòng)子入手探究了GCN2的表達(dá)模式,為GCN2調(diào)控機(jī)理的研究奠定了基礎(chǔ)。

猜你喜歡
結(jié)果表明擬南芥轉(zhuǎn)基因
擬南芥:活得粗糙,才讓我有了上太空的資格
探秘轉(zhuǎn)基因
轉(zhuǎn)基因,你吃了嗎?
尿黑酸對(duì)擬南芥酪氨酸降解缺陷突變體sscd1的影響
兩種LED光源作為擬南芥生長光源的應(yīng)用探究
擬南芥干旱敏感突變體篩選及其干旱脅迫響應(yīng)機(jī)制探究
天然的轉(zhuǎn)基因天然的轉(zhuǎn)基因“工程師”及其對(duì)轉(zhuǎn)基因食品的意蘊(yùn)
玩轉(zhuǎn)轉(zhuǎn)基因
體育鍛煉也重要
闊世瑪與世瑪用于不同冬小麥品種的安全性試驗(yàn)
益阳市| 涪陵区| 定襄县| 建平县| 达拉特旗| 霍山县| 错那县| 杭州市| 尉犁县| 汕头市| 凤山市| 宝山区| 正安县| 崇文区| 吉安市| 东兴市| 阆中市| 新兴县| 满城县| 奉贤区| 卓资县| 清水河县| 大宁县| 九龙城区| 马关县| 浦北县| 邵武市| 南开区| 攀枝花市| 郁南县| 新晃| 仙游县| 沿河| 庆元县| 长白| 新巴尔虎右旗| 祁连县| 万宁市| 惠来县| 电白县| 泸水县|