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基于微流控芯片的茶多酚電化學(xué)檢測(cè)方法研究

2021-09-04 06:08謝耀聰俞建峰
關(guān)鍵詞:微流伏安茶多酚

謝耀聰,俞建峰*,石 賽

(1.江南大學(xué) 機(jī)械工程學(xué)院,江蘇 無錫 214122;2.江蘇省食品先進(jìn)制造裝備技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,江蘇 無錫 214122)

茶多酚是茶葉中多酚類化合物的總稱,是一種安全無毒、無副作用的純天然提取物[1]。茶多酚中含有較多羥基,能夠有效抑制氧化酶活性,阻止氧化過程中的鏈?zhǔn)椒磻?yīng),表現(xiàn)出較強(qiáng)的抗氧化能力[2],具有清除自由基[3]、抗衰老[4]、抗癌[5]、降血脂[6]等生物活性,廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥、化妝品等領(lǐng)域[7-9]。因此,茶多酚的檢測(cè)分析對(duì)茶多酚制品的品質(zhì)控制具有重要意義。

目前茶多酚的檢測(cè)方法主要有福林酚法、氣相色譜法、高效液相色譜法等[10],雖然這些方法檢測(cè)精度高,但也存在操作復(fù)雜、分析時(shí)間長(zhǎng)、儀器成本高等缺點(diǎn)。循環(huán)伏安法和安培滴定法等電化學(xué)技術(shù),具有檢測(cè)速度快、靈敏度高和儀器成本低等優(yōu)點(diǎn)[11],已成為一種茶多酚檢測(cè)的新方法,但現(xiàn)有的茶多酚電化學(xué)檢測(cè)過程仍存在自動(dòng)化程度低,試劑樣品用量大等[12]缺陷。

微流控是一種在微米尺度的通道中實(shí)現(xiàn)微液滴操縱、沉淀反應(yīng)、分離及檢測(cè)等功能的技術(shù)[13]。微流控芯片中可集成生物酶、微電極等結(jié)構(gòu),并借助檢測(cè)儀器實(shí)現(xiàn)物質(zhì)的定量分析,減少了試劑用量,實(shí)現(xiàn)樣品預(yù)處理到檢測(cè)分析的整體微型化、集成化與便攜化[14-15]。開展微流控和電化學(xué)技術(shù)相結(jié)合的茶多酚檢測(cè)方法的研究尚未見相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道。

作者提出了一種基于微流控芯片的茶多酚電化學(xué)檢測(cè)方法,將茶多酚檢測(cè)過程中的進(jìn)料、混合和循環(huán)伏安檢測(cè)功能集成在微流控芯片上,采用3D打印技術(shù)制造微流控芯片,以微流控芯片為檢測(cè)通道,絲網(wǎng)印刷電極為電化學(xué)傳感器,建立了微流控檢測(cè)平臺(tái),通過實(shí)驗(yàn)對(duì)檢測(cè)過程中的緩沖液種類、緩沖液pH、掃描速度和進(jìn)料流量等4個(gè)參數(shù)進(jìn)行了優(yōu)化,最后運(yùn)用該方法測(cè)定普洱茶樣品的茶多酚含量,并與標(biāo)準(zhǔn)福林酚法的檢測(cè)結(jié)果進(jìn)行對(duì)比。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

1.1.1 材料沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品:購(gòu)于合肥博美生物公司;普洱茶樣品:購(gòu)于云南普洱茶(集團(tuán))有限公司;福林酚、碳酸鈉、氯化鉀、濃硫酸,配置PBS緩沖液的磷酸、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀,配置CBS緩沖液的檸檬酸、磷酸氫二鈉、配置B-R緩沖液的硼酸、乙酸、氫氧化鈉:購(gòu)于國(guó)藥集團(tuán)試劑有限公司;其他試劑均為分析純,使用前未進(jìn)行純化;實(shí)驗(yàn)用水均為去離子水。

1.1.2 儀器CHI660E電化學(xué)工作站:上海辰華儀器公司產(chǎn)品;注射泵:蘇州汶顥微流控技術(shù)有限公司產(chǎn)品;微流控芯片:江南大學(xué)食品加工技術(shù)與裝備研究中心自制;絲網(wǎng)印刷碳電極:市售;精密電子分析天平:奧豪斯國(guó)際貿(mào)易(上海)有限公司產(chǎn)品;722可見分光光度計(jì):上海欣茂儀器有限公司產(chǎn)品;高速離心機(jī):上海安亭科學(xué)儀器廠產(chǎn)品。

1.2 微流控芯片研制

為了滿足微流控檢測(cè)平臺(tái)對(duì)茶多酚的檢測(cè)需求,設(shè)計(jì)了具有自動(dòng)進(jìn)料、混合和循環(huán)伏安檢測(cè)功能的微流控芯片,模型如圖1所示。A為芯片的進(jìn)料通道,通過PTFE導(dǎo)管分別與注射泵的兩個(gè)微量進(jìn)樣器連接,實(shí)現(xiàn)緩沖液和待測(cè)樣品的自動(dòng)進(jìn)料功能;B為混合通道,將緩沖液和待測(cè)樣品進(jìn)行充分混合,為循環(huán)伏安法提供穩(wěn)定的檢測(cè)環(huán)境,混合是茶多酚檢測(cè)過程中的關(guān)鍵環(huán)節(jié),如果混合不均勻?qū)a(chǎn)生較大的檢測(cè)誤差,因此將混合通道設(shè)計(jì)成內(nèi)肋形微混合結(jié)構(gòu),文獻(xiàn)報(bào)道并驗(yàn)證了此結(jié)構(gòu)混合效率高,混合均勻性好[16]。C為電化學(xué)檢測(cè)區(qū),D為廢液出口,E為電極插口??杉缮唐坊z網(wǎng)印刷電極,降低了微電極高昂的制作成本,絲網(wǎng)印刷電極為三電極結(jié)構(gòu),工作電極和輔助電極為碳墨電極,參比電極為Ag/AgCl電極。

圖1 微流控芯片結(jié)構(gòu)模型Fig.1 Structure model of microfluidic chip

微流控芯片由Micro Plus Advantage 3D打印機(jī)(EnvieionTEC,德國(guó))采用DLP技術(shù)打印成型,芯片材料為Formlabs耐高溫光敏樹脂。

1.3 檢測(cè)平臺(tái)搭建

圖2為微流控檢測(cè)平臺(tái)示意圖,主要由注射泵(行程分辨率:0.078μm)、微流控芯片(自制)、絲網(wǎng)印刷電極、電化學(xué)工作站和計(jì)算機(jī)組成。微流控芯片的接口處均采用熱熔膠密封,防止溶液泄漏。注射泵通過微量進(jìn)樣器以一定的進(jìn)料流量將緩沖液和待測(cè)樣品分別注入微流控芯片的進(jìn)料通道,兩種溶液混合均勻后到達(dá)電化學(xué)檢測(cè)區(qū),絲網(wǎng)印刷電極通過適配器與電化學(xué)工作站連接,電化學(xué)工作站采用循環(huán)伏安法測(cè)得氧化峰電流與沒食子酸濃度的定量關(guān)系,進(jìn)而應(yīng)用于茶多酚的檢測(cè)分析。

圖2 微流控檢測(cè)平臺(tái)示意圖Fig.2 Schematic diagram of microfluidic detection platform

1.4 實(shí)驗(yàn)方法

1.4.1 標(biāo)準(zhǔn)溶液制備沒食子酸母液制備:稱取0.171 g的沒食子酸(gallic acid,GA)標(biāo)準(zhǔn)品加入燒杯中,用去離子水充分溶解后,移至100 mL容量瓶中定容。將母液稀釋成5~1 250μmol/L共13個(gè)不同濃度的沒食子酸溶液,4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.4.2 樣品制備普洱茶樣品母液制備:將15 mL體積分?jǐn)?shù)10%的甲醇溶液置于70℃水浴鍋中預(yù)熱,普洱茶樣品置于碾磨缽中碾磨,稱取0.2 g碾磨后的樣品于8 mL離心試管中,加入5 mL預(yù)熱后的甲醇溶液,充分?jǐn)嚢?,立即轉(zhuǎn)至70℃水浴鍋中保溫10 min,取出后降到室溫,在3 500 r/min的離心機(jī)中離心10 min,上層清液移至10 mL容量瓶中,殘?jiān)偬崛∫淮?,另用濾紙過濾兩次,合并兩次清液加去離子水定容到10 mL,搖勻,4℃冰箱中保存?zhèn)溆谩?/p>

1.4.3 電極活化絲網(wǎng)印刷碳電極的活化方法1:將電極插入飽和碳酸鈉溶液中,采用計(jì)時(shí)電流法,恒電位為1.2 V,掃描5 min;方法2:將電極置于0.5 mol/L稀硫酸溶液中,采用循環(huán)伏安法掃描至穩(wěn)定。電極活化后集成至微流控檢測(cè)平臺(tái)上,采用循環(huán)伏安法,進(jìn)料流量為40μL/min,以100 mV/s進(jìn)行掃描,電解質(zhì)為B-R緩沖液(pH 3.0)。在此條件下,研究沒食子酸的電化學(xué)行為,選擇最佳的電極活化方法。

1.4.4 實(shí)驗(yàn)條件優(yōu)化

1)研究緩沖液種類和pH的影響 制備0.1 mol/L的B-R,PBS,CBS 3種緩沖液(pH 3.0)。注射泵的檢測(cè)樣品進(jìn)樣器吸取500μmol/L的沒食子酸溶液2 mL,緩沖液進(jìn)樣器每次吸取與沒食子酸等量的緩沖液,設(shè)定注射泵的進(jìn)料流量為40μL/min,以100 mV/s進(jìn)行掃描,同一條件下連續(xù)檢測(cè)5次,取氧化峰電流的平均值。更換緩沖液進(jìn)樣器中的緩沖液,重復(fù)檢測(cè)步驟。選定最佳緩沖液后,配置其不同pH值(2.0、3.0、4.0、5.0、6.0、7.0、8.0),重復(fù)檢測(cè)步驟。

2)研究掃描速度的影響 注射泵的兩個(gè)進(jìn)樣器分別吸取B-R緩沖液(pH 3.0)和500μmol/L的沒食子酸溶液2 mL,設(shè)定其進(jìn)料流量為40μL/min,改變循環(huán)伏安掃描方式,同一條件下連續(xù)檢測(cè)5次,取氧化峰電流的平均值。

3)研究進(jìn)料速度的影響 注射泵的兩個(gè)進(jìn)樣器分別吸取B-R緩沖液(pH 3.0)和500μmol/L的沒食子酸溶液2 mL,設(shè)定循環(huán)伏安掃描速度為100 mV/s,改 變 進(jìn) 料 流 量(0,20,40,60,80,100,120,140,160,180,200μL/min),同一條件下連續(xù)檢測(cè)5次,取氧化峰電流的平均值。

1.4.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)定在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下,分別測(cè)定5~1 250μmol/L共13組不同濃度沒食子酸的氧化峰電流值,同一濃度下連續(xù)檢測(cè)5次,取氧化峰電流的平均值,每次檢測(cè)所消耗的沒食子酸溶液為10μL。以沒食子酸濃度x為橫坐標(biāo),氧化峰電流值y為縱坐標(biāo),計(jì)算得到標(biāo)準(zhǔn)曲線。

1.4.6 普洱茶樣品中的茶多酚質(zhì)量分?jǐn)?shù)測(cè)定取普洱茶樣品母液0.25 mL加至100 mL容量瓶中,加水定容,取4份5 mL樣品溶液,分別加入一定量的沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)品,得到樣品待測(cè)液,在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下,分別測(cè)定其氧化峰電流,平行檢測(cè)3次,計(jì)算得到回收率與樣品中茶多酚的質(zhì)量分?jǐn)?shù)。

1.4.7 統(tǒng)計(jì)分析方法采用Excel 2013記錄和整理實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),運(yùn)用OriginPro 2017軟件對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析及作圖。

2 結(jié)果與討論

2.1 沒食子酸在微流控檢測(cè)平臺(tái)上的電化學(xué)行為

圖3為空白底液和沒食子酸溶液在集成不同活化電極的微流控檢測(cè)平臺(tái)上的循環(huán)伏安圖(電壓0~0.9 V)。兩種活化電極在空白底液中,未出現(xiàn)電流響應(yīng);在沒食子酸溶液中,電壓在0.41 V(相對(duì)于Ag/AgCl)左右均出現(xiàn)一個(gè)不可逆的氧化峰,與文獻(xiàn)[17]中報(bào)道的一致。對(duì)比圖3中(a)和(b)兩條曲線可知,飽和碳酸鈉活化電極的氧化峰電流響應(yīng)更大,峰形明顯,主要原因是經(jīng)過飽和碳酸鈉溶液處理后,電極表面的碳墨變得蓬松多孔,增加了其與沒食子酸的接觸面積;同時(shí),電極表面生成的含氧基團(tuán)有利于減弱羥基鍵能[18]。這些性質(zhì)有效提高了電極表面的電荷遷移速度,使得電極反應(yīng)速度加快,故選擇在微流控檢測(cè)平臺(tái)上集成飽和碳酸鈉活化電極。

圖3 飽和碳酸鈉活化電極和稀硫酸活化電極的循環(huán)伏安圖Fig.3 CVs of saturated sodium carbonate solution activated carbon electrodes and dilute sulfuric acid solution activated carbon electrodes

2.2 緩沖液種類和pH的影響

沒食子酸的電化學(xué)行為與緩沖液種類和pH等多種因素有關(guān)。在微流控檢測(cè)平臺(tái)上,采用循環(huán)伏安法對(duì)B-R,PBS和CBS 3種緩沖液中沒食子酸的氧化行為進(jìn)行研究。由圖4(a)可知,B-R緩沖液的氧化峰與陽極電流分離較好,峰電流最大,因此選擇B-R緩沖液作為支持電解質(zhì)。

通過循環(huán)伏安法在pH 2.0~8.0范圍內(nèi)研究BR緩沖液的pH對(duì)沒食子酸氧化峰電流的影響。由圖4(b)可知,當(dāng)pH增加時(shí),沒食子酸的氧化峰電位負(fù)向移動(dòng),表明質(zhì)子參與電極反應(yīng)[19]。氧化峰電位與理論值[17]接近。由圖4(c)可知,在pH 2.0~8.0范圍內(nèi),沒食子酸的氧化峰電流隨著pH的增加先增后減,在pH約為3.0處獲得最大的峰電流響應(yīng)。因此,作者選擇pH為3.0的B-R緩沖液,進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

圖4 緩沖液種類和pH對(duì)沒食子酸氧化峰電壓和峰電流的影響Fig.4 Effect of buffer types and pH on the oxidation peak potential and peak current of GA

2.3 掃描速度的影響

圖5是不同掃描速度對(duì)沒食子酸氧化峰電流的影響。由圖5(a)可知,氧化峰電流隨著掃描速度的增大而增大。由圖5(b)可知,氧化峰電流與掃描速度的平方根具有良好的線性關(guān)系,線性回歸方程為Ipa=3.820 2+0.234 5v1/2,這表明電極反應(yīng)過程受擴(kuò)散控制[20]。掃描速度超過100 mV/s時(shí),循環(huán)伏安曲線逐漸毛糙,對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果產(chǎn)生干擾和誤差,綜合考慮氧化峰電流大小和循環(huán)伏安曲線的光滑程度,掃描速度選擇100 mV/s為佳。

圖5 掃描速度對(duì)沒食子酸氧化峰電流的影響Fig.5 Effect of scan rates on the oxidation peak current of GA

2.4 進(jìn)料流量的影響

圖6為不同進(jìn)料流量對(duì)氧化峰電流的影響。進(jìn)料流量分別在0和20μL/min時(shí),連續(xù)5次測(cè)得的氧化峰電流相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD大于10%,重復(fù)性較差,分析其原因可能是微流控芯片中的液體流速過慢時(shí),芯片內(nèi)部液體分布不均勻,導(dǎo)致芯片電化學(xué)檢測(cè)區(qū)的沒食子酸濃度產(chǎn)生波動(dòng),影響了檢測(cè)重復(fù)性;進(jìn)料流量在40~200μL/min時(shí),氧化峰電流隨著進(jìn)料速度的增加先減小后增加,最后趨于穩(wěn)定,檢測(cè)結(jié)果重復(fù)性較好(RSD小于1.7%),分析其原因可能是隨著進(jìn)料速度的增加,芯片內(nèi)部流場(chǎng)逐漸穩(wěn)定,但部分沒食子酸的氧化產(chǎn)物吸附在工作電極表面,阻礙了電荷轉(zhuǎn)移,降低了電極表面的反應(yīng)速率[21];隨著進(jìn)料流量進(jìn)一步增加,沒食子酸在電極表面的更新速度加快,使得電極反應(yīng)速度增加,當(dāng)沒食子酸的更新速度達(dá)到極限時(shí),氧化峰電流逐漸穩(wěn)定。綜合考慮氧化峰電流、重復(fù)性和試劑用量,選擇流量為40μL/min。

圖6 氧化峰電流與進(jìn)料流量的關(guān)系Fig.6 Plots of the oxidation peak current for GA as function of inject speeds

2.5 標(biāo)準(zhǔn)曲線與檢出限

在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下,采用微流控檢測(cè)平臺(tái)對(duì)不同濃度的沒食子酸進(jìn)行循環(huán)伏安檢測(cè)。圖7(A)為不同 濃 度(5,10,25,50,75,100,200,300,400,500,750,1 000,1 250μmol/L)沒食子酸的循環(huán)伏安圖,由圖7(a)可知,氧化峰電流隨著沒食子酸濃度的增加而增加。由圖7(b)可知,沒食子酸濃度在5~1 250μmol/L范圍內(nèi)與氧化峰電流有良好的線性關(guān)系,線性回歸方程為:Ipa=0.174 3+0.011 4c(Ipa,μA;c,μmol/L;R2=0.998 0),最低檢出限為6.9×10-7mol/L(S/N=3),靈敏度為0.011 4μA/(μmol/L)。

2.6 重現(xiàn)性、再現(xiàn)性和穩(wěn)定性

在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下,對(duì)微流控檢測(cè)平臺(tái)進(jìn)行了重現(xiàn)性、再現(xiàn)性和穩(wěn)定性的研究。在微流控檢測(cè)平臺(tái)上連續(xù)檢測(cè)500μmol/L的沒食子酸溶液5次,測(cè)得氧化峰電流的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差RSD為1.739%,說明檢測(cè)平臺(tái)具有良好的重現(xiàn)性。采用飽和碳酸鈉溶液活化5片新的絲網(wǎng)印刷碳電極,并依次集成到微流控檢測(cè)平臺(tái)中對(duì)500μmol/L的沒食子酸溶液進(jìn)行測(cè)定,測(cè)得氧化峰電流的RSD為2.231%,說明檢測(cè)平臺(tái)具有良好的再現(xiàn)性。采用同一微流控檢測(cè)平臺(tái)連續(xù)一周對(duì)500μmol/L的沒食子酸溶液進(jìn)行檢測(cè)(測(cè)量次數(shù)大于50次),測(cè)得氧化峰電流的RSD為2.068%,說明檢測(cè)平臺(tái)具有良好的穩(wěn)定性。

圖7 沒食子酸標(biāo)準(zhǔn)曲線的測(cè)定Fig.7 Determination of GA standard curve

2.7 樣品分析

取4份已制備的普洱茶樣品待測(cè)液,在最優(yōu)實(shí)驗(yàn)條件下,采用標(biāo)準(zhǔn)加入法測(cè)定其氧化峰電流,平行檢測(cè)3次取平均值。樣品檢測(cè)結(jié)果如表1所示,回收率在97.6%~104.6%之間,與福林酚法的檢測(cè)結(jié)果基本一致,表明本方法可滿足茶多酚常規(guī)分析要求。

3 結(jié)語

將茶多酚檢測(cè)過程中的進(jìn)料、混合和循環(huán)伏安檢測(cè)功能集成在微流控芯片上,并設(shè)計(jì)了可集成絲網(wǎng)印刷碳電極的插口,降低了微電極的制作成本,采用3D打印技術(shù)制造微流控芯片,建立了微流控檢測(cè)平臺(tái)。

通過實(shí)驗(yàn)對(duì)緩沖液種類、緩沖液pH、掃描速度和進(jìn)料速度4個(gè)參數(shù)進(jìn)行了優(yōu)化,并運(yùn)用該方法測(cè)定普洱茶樣品中茶多酚的含量,檢測(cè)結(jié)果與福林酚法基本一致,滿足茶多酚的常規(guī)分析要求。

本方法中進(jìn)樣、混合和循環(huán)伏安檢測(cè)過程自動(dòng)化進(jìn)行,省去了人工操作環(huán)節(jié),檢測(cè)時(shí)間縮短為40 s,試劑用量為70μL,具有簡(jiǎn)便、低成本、準(zhǔn)確的特點(diǎn),可用于茶多酚含量的快速檢測(cè),并可推廣到其他植物提取物的快速檢測(cè)。

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