高雙紅, 李媛英, 劉博文, 龍 思, 劉鐵芫, 許岳飛
(西北農(nóng)林科技大學(xué)草業(yè)與草原學(xué)院, 陜西 楊凌 712100)
草坪因具有美化環(huán)境、凈化空氣和減少噪音等功能[1],在提高人們生活質(zhì)量中的同時(shí),市場(chǎng)需求量也越來(lái)越大。高羊茅(Festucaarundinacea)是禾本科羊茅屬多年生草本植物,因其抗性好、與雜草競(jìng)爭(zhēng)優(yōu)勢(shì)大、生命力強(qiáng)等優(yōu)點(diǎn)被廣泛應(yīng)用于園林綠化中,是目前我國(guó)最為常見(jiàn)的冷季型草坪草之一[2]。韓烈保等[3]認(rèn)為,高羊茅具有比大多數(shù)冷季型草坪草更強(qiáng)的耐酸堿能力;王友保等[4]研究發(fā)現(xiàn)高羊茅可以吸收土壤中一定量的Cu;同時(shí)有研究表明高羊茅可以去除受污染土壤中的Se元素[5];高羊茅的這種能力有望使其成為修復(fù)重金屬污染土壤的重要草坪草品種。因此,高羊茅作為冷季型草坪草其應(yīng)用前景十分廣闊。
現(xiàn)代城市高樓聳立以及人們對(duì)于喬、灌、草等立體綠化的需求,使得草坪的遮蔭問(wèn)題十分突出[6]。據(jù)統(tǒng)計(jì),美國(guó)約有1/4的草坪處于遮蔭環(huán)境[7],而我國(guó)約有1/2的草坪處于遮蔭環(huán)境[8]。光照對(duì)草坪的生長(zhǎng)十分重要,遮蔭會(huì)導(dǎo)致草坪草光合速率下降、葉片變薄、莖桿纖細(xì)和生物量降低[9],嚴(yán)重影響草坪質(zhì)量。因此,研究弱光脅迫對(duì)草坪草生理特性的影響,探究緩解遮蔭脅迫的方法,對(duì)草坪的質(zhì)量和經(jīng)濟(jì)效益等具有十分重要的科學(xué)和現(xiàn)實(shí)意義。
硫化氫(H2S)作為一種重要的氣體信號(hào)分子,參與植物生長(zhǎng)發(fā)育的各個(gè)過(guò)程,并且具有緩解鹽害、干旱、低溫和重金屬等多種非生物脅迫的功能[10]。研究表明,外源H2S可以通過(guò)調(diào)節(jié)內(nèi)源H2S含量,維持植物體內(nèi)的Na+/K+平衡,增強(qiáng)抗氧化能力,從而提高耐鹽性[11]。在干旱脅迫下,H2S顯著上調(diào)Rubisco活化酶的活性,引起葉片氣孔關(guān)閉,提高擬南芥對(duì)干旱的適應(yīng)能力[12]。外源H2S也可通過(guò)促進(jìn)光系統(tǒng)II(PSII)來(lái)緩解強(qiáng)光下水稻遭受的光抑制傷害[13]。然而,有關(guān)H2S調(diào)控高羊茅耐蔭性的研究尚未見(jiàn)報(bào)道。因此,本文探討了H2S對(duì)高羊茅耐蔭性的調(diào)控作用,擬為提高草坪草耐蔭性和草坪的科學(xué)養(yǎng)護(hù)管理提供理論依據(jù)。
試驗(yàn)所用高羊茅(FestucaarundinaceaSchreb.)品種為Arid 3,種子購(gòu)買(mǎi)于克勞沃(北京)生態(tài)科技有限公司并存儲(chǔ)于4℃冰箱中。試驗(yàn)使用藥劑主要有500 μmol·L-1硫化氫供體硫氫化鈉(NaHS),300 μmol·L-1硫化氫清除劑次牛磺酸(HT),300 μmol·L-1硫化氫合成酶抑制劑羧甲基胺半鹽酸鹽(AOA)[14]。
用0.1%(w/v)次氯酸鈉(NaClO)溶液對(duì)種子進(jìn)行表面消毒,并用蒸餾水漂洗數(shù)次。然后,將種子置于鋪有雙層濾紙的培養(yǎng)皿中,每皿含50粒種子,為一個(gè)重復(fù),每個(gè)處理設(shè)置三個(gè)重復(fù)。試驗(yàn)第一階段用藥劑在黑暗條件下浸種24 h;第二階段培養(yǎng)箱培養(yǎng)2周,并在第7 d時(shí)噴施藥劑。本試驗(yàn)5個(gè)處理,分別為:自然光照+蒸餾水(CK)、弱光+蒸餾水(LL)、弱光+硫化氫供體硫氫化鈉(LS)、弱光+硫化氫清除劑次?;撬?LT)和弱光+硫化氫合成酶抑制劑羧甲基胺半鹽酸鹽(LA)。人工氣候箱的設(shè)置是白天時(shí)長(zhǎng)為16 h,溫度25℃,自然光強(qiáng)為200 μmol·m-2·s-1PPFD,弱光脅迫為40 μmol·m-2·s-1PPFD,相對(duì)濕度保持在60%;夜間時(shí)長(zhǎng)為8 h,溫度為20℃,光強(qiáng)為0,相對(duì)濕度保持在50%。具體試驗(yàn)設(shè)計(jì)見(jiàn)下表。
表1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)表Table 1 Table of experimental design
發(fā)芽率(GP)=(發(fā)芽試驗(yàn)?zāi)┢谝?guī)定日期種子數(shù)/供試種子數(shù))×100%
發(fā)芽勢(shì)(GE)=(發(fā)芽試驗(yàn)初期規(guī)定日期內(nèi)發(fā)芽種子數(shù)/供試種子數(shù))×100%
發(fā)芽指數(shù)GI=∑Gt/Dt
活力指數(shù)VI=GI×S
其中Dt為發(fā)芽時(shí)間(d),Gt為與Dt相對(duì)應(yīng)的發(fā)芽種子數(shù),S為一定時(shí)期內(nèi)正常幼苗的單株長(zhǎng)[15-16]。
數(shù)據(jù)采用SPSS 19.0進(jìn)行單因素方差分析(P<0.05差異顯著),運(yùn)用SigmaPlot 14.0進(jìn)行作圖。
在5個(gè)不同處理下,高羊茅種子的發(fā)芽指數(shù)、發(fā)芽勢(shì)以及活力指數(shù)產(chǎn)生一定程度的差異。CK處理組、高羊茅種子發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、發(fā)芽勢(shì)以及活力指數(shù)均為最高,LL處理則對(duì)高羊茅種子的萌發(fā)產(chǎn)生了顯著影響,與CK相比,其顯著降低高羊茅種子的發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、發(fā)芽勢(shì)、活力指數(shù)(P<0.05),與CK相比,分別降低了7.54%,21.27%,10.71%和22.22%,LS對(duì)高羊茅種子萌發(fā)有一定促進(jìn)作用,與LL相比,LS處理的發(fā)芽指數(shù)增加15.49%,而LT處理和LA處理顯著降低弱光下高羊茅種子萌發(fā),與LL處理相比,LT處理下發(fā)芽勢(shì)和活力指數(shù)分別降低17.34%和31.43%,說(shuō)明內(nèi)源硫化氫對(duì)弱光下高羊茅種子的萌發(fā)有一定的促進(jìn)作用。(圖1)
圖1 H2S對(duì)弱光脅迫下高羊茅萌發(fā)的影響Fig.1 Effects of H2S on the germination of tall fescue under low-light stress注:不同字母表示差異顯著(P<0.05)。下同Note:Different letters meant significant difference at 0.05 level. The same as below
弱光脅迫處理對(duì)高羊茅胚根和胚芽產(chǎn)生的影響不同。由圖2可知,與CK相比,LL處理使得高羊茅胚根重顯著下降38.4%,卻使得高羊茅胚芽重增加0.0083%。較LL處理組相比,LS處理組高羊茅的胚根重和胚芽重變化不明顯,但均有所增加;LT處理組和LA處理組胚根重和胚芽重則發(fā)生明顯變化,胚根重和胚芽重均顯著下降(P<0.05),其中LT處理和LA處理胚根分別下降73.12%和50.17%(圖2A)。表明結(jié)果弱光脅迫下,高羊茅的胚根生長(zhǎng)受到抑制,而施加外源H2S能夠緩解這種抑制。
圖3 H2S對(duì)弱光脅迫下高羊茅細(xì)胞膜穩(wěn)定性的影響Fig.3 Effects of H2S on the stability of tall fescue cell membrane under low-light stress
激素水平是植物對(duì)逆境響應(yīng)的重要指標(biāo)。不同處理下植物體內(nèi)激素水平存在差異。與CK相比較,LL處理顯著增加了高羊茅體內(nèi)的H2S,ABA和GA含量,增加值分別為36.28%,29.29%和38.82%。與LL處理相比較,LS處理使得H2S和ABA含量增大54.51%和42.40%,差異達(dá)到顯著水平(P<0.05),同時(shí)使GA含量顯著下降12.90%(P<0.05);而LT處理和LA處理會(huì)顯著降低H2S和ABA含量,但顯著增加GA含量,其中LT處理下ABA和H2S分別下降31.64%和28.39%,GA卻增加7.20%,這與LS處理結(jié)果完全相反。表明弱光脅迫下,施加外源H2S能夠促進(jìn)內(nèi)源H2S和ABA的產(chǎn)生并抑制GA,而施加AOA和HT則效果與之完全相反(圖4)。
圖4 H2S對(duì)弱光脅迫下高羊茅內(nèi)源GA、ABA、H2S的影響Fig.4 Effect of H2S on the endogenous GA、ABA、H2S of tall fescue under low-light stress
發(fā)芽是植物生長(zhǎng)非常關(guān)鍵的一個(gè)過(guò)程,其成功與否影響著草坪的密度和蓋度以及質(zhì)量。H2S能夠調(diào)節(jié)植物諸多生理和生化過(guò)程,包括種子的萌發(fā)和幼苗的生長(zhǎng)[23];有研究表明低劑量外源施用H2S能夠通過(guò)激活β-淀粉酶活性來(lái)促進(jìn)種子萌發(fā)[24];并提高鹽脅迫下苜蓿種子萌發(fā)抗氧化酶同工酶活性和轉(zhuǎn)錄物水平[25]。在本研究中,弱光下施加H2S提升了高羊茅種子的萌發(fā)特性,而清除或者抑制內(nèi)源H2S則會(huì)對(duì)種子萌發(fā)起到顯著的負(fù)作用,說(shuō)明內(nèi)源H2S促進(jìn)了弱光脅迫下高羊茅種子的萌發(fā),這與前人研究結(jié)果一致。
光照與植物生長(zhǎng)發(fā)育關(guān)系密切,光照不足會(huì)引起植物的形態(tài)學(xué)重建[26]。近年來(lái),關(guān)于植物弱光脅迫的研究多開(kāi)展于黃瓜(CucumissativusLinn)[27]等相關(guān)植物,在林木栽培[28]也有研究。弱光脅迫下高羊茅胚根重較CK顯著下降,而胚芽重輕微增加,表明弱光脅迫促進(jìn)高羊茅幼苗的向上生長(zhǎng),在一定程度上會(huì)抑制高羊茅胚根的生長(zhǎng)。在弱光脅迫下,分別施加H2S,AOA,HT后,發(fā)現(xiàn)各處理的胚根重和胚芽重為L(zhǎng)S最大,LL次之,而LA,LT最小,即H2S在一定程度上緩解了弱光脅迫對(duì)高羊茅幼苗生長(zhǎng)的限制。我們前期研究發(fā)現(xiàn),在弱光脅迫下,外施H2S能夠增加高羊茅株高、生物量、葉寬、分蘗數(shù)等[14],這與本試驗(yàn)得到的結(jié)果相一致。
植物激素是由植物本身合成的極少數(shù)有機(jī)化合物,但它們對(duì)植物內(nèi)部營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的運(yùn)輸和代謝具有重要影響[32]。當(dāng)植物遭受逆境脅迫時(shí),其自身的代謝產(chǎn)物和生理調(diào)節(jié)物質(zhì)發(fā)生顯著變化。當(dāng)植物處于遮蔭脅迫下時(shí),其內(nèi)源激素的含量也會(huì)發(fā)生變化,進(jìn)而調(diào)節(jié)植物的抗逆過(guò)程。本試驗(yàn)中,弱光脅迫使高羊茅幼苗的內(nèi)源激素H2S,GA,ABA濃度均增大;而通過(guò)施加H2S可以促進(jìn)內(nèi)源H2S和ABA的產(chǎn)生,抑制GA的產(chǎn)生。植物激素GA能夠促進(jìn)器官成熟,促進(jìn)生長(zhǎng)發(fā)育并誘導(dǎo)營(yíng)養(yǎng)素的轉(zhuǎn)運(yùn),LL脅迫使得GA增大,原因可能是與弱光誘導(dǎo)高羊茅株高有所增加;ABA能誘導(dǎo)某些特定的酶的重新合成從而增加植物的抗性,也被稱(chēng)為“脅迫激素”[33],在植物遭受脅迫時(shí),H2S作為氣體信號(hào)分子,在增強(qiáng)植物的許多功能中起著極其重要的作用[34]。弱光脅迫下ABA和H2S的顯著增加可能是植物對(duì)逆境時(shí)自身所做出的響應(yīng)。張彥潔等[33]研究表明對(duì)番茄種子或幼苗進(jìn)行外源H2S處理,增加葉片中的H2S含量,這與本試驗(yàn)結(jié)果一致。
植物體內(nèi)不同種類(lèi)的植物激素的生理效應(yīng)有相互促進(jìn)或者拮抗的效果,植物激素對(duì)植物生長(zhǎng)發(fā)育的調(diào)控結(jié)果往往是由多種植物激素綜合作用的[37]。本研究中,LS處理組的H2S和ABA均較其他處理組相比顯著增大,說(shuō)明外源H2S的施加不僅極大地促進(jìn)了內(nèi)源H2S的增加,同時(shí)也促進(jìn)了ABA的顯著增加。H2S作為一種新型的氣體信號(hào)分子,其與ABA之間相互協(xié)同作用,共同賦予植物抗逆性[38]。然而,H2S提高抗氧化機(jī)制的分子機(jī)制人仍需要進(jìn)一步研究。