李鴻浩, 徐 超, 林智慧, 顧 鋼, 周 挺, 梁頒捷, 陳承亮, 石 妍, 劉國(guó)坤, 肖 順
(1.福建農(nóng)林大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院,福建 福州 350002;2.福建省煙草公司三明市公司,福建 三明 365000;3.福建省煙草公司煙草科學(xué)研究所,福建 福州 350003)
福建省是我國(guó)重要植煙區(qū).鄧真等[1]于2009—2011年對(duì)福建省煙區(qū)病害進(jìn)行調(diào)查發(fā)現(xiàn),煙草灰霉病在各煙區(qū)普遍發(fā)生,個(gè)別地區(qū)發(fā)病嚴(yán)重,其病原菌為害煙株的莖、葉和花器,對(duì)煙草產(chǎn)量及品質(zhì)均造成影響.據(jù)三明煙草公司統(tǒng)計(jì),僅2015年三明煙區(qū)發(fā)生灰霉病的面積就達(dá)5.64 hm2,累計(jì)產(chǎn)量損失約1.5×106kg.
目前,對(duì)于灰霉病的防治主要依賴于化學(xué)藥劑.許多學(xué)者對(duì)不同類型藥劑對(duì)煙草灰霉病的防治效果進(jìn)行了研究.例如:宮飛燕等[2]研究發(fā)現(xiàn),咪鮮胺、多氧霉素、異菌脲、多菌靈、腐霉利、乙烯菌核利、嘧霉胺和代森錳鋅對(duì)灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的有效抑制中濃度(EC50)值分別為0.03、2.21、3.48、6.79、23.21、24.74、34.94和621.36 mg·L-1;周浩等[3]研究發(fā)現(xiàn),多菌靈、丙環(huán)唑、嘧霉胺和異菌脲對(duì)4株煙草灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的EC50平均值分別為0.06、0.36、0.53和0.60 mg·L-1;汪漢成等[4]研究發(fā)現(xiàn),氟啶胺、咪鮮胺、苯醚甲環(huán)唑和代森錳鋅對(duì)煙草灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的EC50值分別為0.02、0.03、0.39和7.86 mg·L-1.由此可見,不同研究中相同藥劑對(duì)煙草灰霉病菌的抑制作用存在一定差異,這可能與菌株不同有關(guān).
腐霉利和異菌脲屬于二甲酰亞胺類殺菌劑,是生產(chǎn)中用于防治灰霉病的重要?dú)⒕鷦秽酌拱穼儆诒桨被奏ゎ悮⒕鷦?,?duì)灰霉病具有特效[5-7].本研究從福建省6個(gè)煙區(qū)采集灰霉病樣品,經(jīng)分離鑒定后,選擇30株菌株作為供試菌株,檢測(cè)其對(duì)腐霉利、異菌脲及嘧霉胺的敏感性,以明確這些藥劑對(duì)福建省煙區(qū)灰霉病菌的抑制作用,為今后煙區(qū)合理用藥提供理論基礎(chǔ).
煙草灰霉病樣品:2016年4—5月采集于福建省6個(gè)植煙區(qū)煙草站,包括泰寧縣下渠煙草站、沙縣富口村煙草站、建寧縣煙草站、清流縣煙草站、大田縣太華鎮(zhèn)萬湖村煙草站及永安市大湖煙草站,每個(gè)站點(diǎn)隨機(jī)采集發(fā)病葉片10片.
分離培養(yǎng)基:馬鈴薯葡萄糖(PDA)培養(yǎng)基,制備方法參考文獻(xiàn)[8].
殺菌劑:腐霉利[procymidone,50%水分散粒劑,興農(nóng)藥業(yè)(中國(guó))有限公司],異菌脲[iprodione,500 g·L-1懸浮劑,拜耳作物科學(xué)(中國(guó))有限公司],嘧霉胺(pyrimethanil,50%可濕性粉劑,壽光晨陽農(nóng)化有限公司).所有藥劑用無菌水配成質(zhì)量濃度為100 μg·mL-1的母液備用.
1.2.1 菌株分離 采用組織分離法[8]分離菌株:取病健交界處小塊組織于體積分?jǐn)?shù)為70%的乙醇中浸泡2 s,然后轉(zhuǎn)入體積分?jǐn)?shù)為5%的次氯酸鈉溶液再次消毒10 min,無菌水漂洗3次,再用無菌濾紙吸去表面水分后接于PDA平板中央,25 ℃黑暗培養(yǎng)3 d,挑取新鮮菌絲培養(yǎng)直至純化.每個(gè)采集地隨機(jī)選擇5株菌株進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn).
1.2.2 病原菌形態(tài)觀察 將分離到的30株菌株接種于PDA平板上,25 ℃黑暗培養(yǎng)7 d,記錄菌落與菌核的顏色和形態(tài).在光學(xué)顯微鏡(Nikon ECLIPSE Ni-U)和體式顯微鏡(Nikon SMZ18)下觀察病原菌分生孢子梗及孢子形態(tài)特征并拍照.
1.2.3 病原菌分子鑒定 收集0.5~1.0 g菌絲于2 mL離心管中,蓋緊后投入液氮中快速冷卻1 min,取出離心管并用研磨棒粉碎菌絲,然后根據(jù)Biospin真菌基因組DNA提取試劑盒說明書進(jìn)行DNA提取.
以表1的引物擴(kuò)增目的基因.ITS區(qū)PCR擴(kuò)增程序:95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,共30個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸10 min[9]. HSP60、RPB2基因PCR擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性5 min,94 ℃變性30 s,55 ℃退火30 s,72 ℃延伸90 s,35個(gè)循環(huán),72 ℃ 10 min,4 ℃終止反應(yīng)[10].擴(kuò)增G3PDH基因的退火溫度為64 ℃,其他程序同HSP60、RPB2序列的擴(kuò)增.所有PCR擴(kuò)增體系:ddH2O 9.5 μL,引物ITS1和ITS4各1 μL,DNA模板 1 μL,PremixTaqTM(TAKARA)12.5 μL.引物由上海生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成.反應(yīng)完成后,取4 μL PCR產(chǎn)物于質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的瓊脂糖凝膠上進(jìn)行電泳檢測(cè).將擴(kuò)增產(chǎn)物送至上海生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行雙向測(cè)序,采用軟件DNAMAN 7.0 (Lynnon BioSoft,魁北克,加拿大) 對(duì)獲得的序列進(jìn)行比對(duì)拼接,最后將序列在NCBI數(shù)據(jù)庫(http://www.ncbi.nlm.nih.gov/blast/)中進(jìn)行對(duì)比鑒定.
表1 PCR擴(kuò)增和測(cè)序所用引物[10-11]Table 1 Primers for PCR amplification and sequencing
1.2.4 藥劑敏感性測(cè)定 采用菌絲生長(zhǎng)速率法[12]測(cè)定30株菌株對(duì)殺菌劑腐霉利、異菌脲和嘧霉胺的敏感性.在菌落邊緣打取菌餅(?=50 mm),分別接種于含不同濃度藥劑的PDA平板上,以不含藥劑的PDA平板為對(duì)照,每個(gè)處理4次重復(fù).將所有接種平板置于23 ℃黑暗培養(yǎng)7 d,待對(duì)照菌落直徑約為培養(yǎng)皿的2/3時(shí),用十字交叉法測(cè)量各濃度處理的菌落直徑,計(jì)算各濃度藥劑對(duì)菌株生長(zhǎng)的抑制率.試驗(yàn)中腐霉利的終濃度分別為0.010、0.025、0.030、0.050和0.100 μg·mL-1;異菌脲的終濃度分別為0.04、0.05、0.07、0.10和0.20 μg·mL-1;嘧霉胺的終濃度分別為0.047、0.056、0.070、0.090和0.140 μg·mL-1.
1.2.5 數(shù)據(jù)分析 采用Excel 2016和DPS V7.05軟件對(duì)試驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析.
所有菌株的菌絲和菌落形態(tài)均相似:菌絲在生長(zhǎng)初期為無色或淺色,生長(zhǎng)中后期顏色加深,為淺褐色或深褐色;菌落生長(zhǎng)初期均為灰白色,且多數(shù)菌落呈棉絮狀或匍匐狀,后期氣生菌絲較發(fā)達(dá)且致密(圖1A);分生孢子梗細(xì)長(zhǎng)、直立,具分隔且有分枝,分生孢子梗底部略微膨大,頂端的產(chǎn)孢細(xì)胞膨大呈球狀,其上生長(zhǎng)小柄并產(chǎn)生大量分生孢子,呈葡萄穗狀,分生孢子為單細(xì)胞,呈卵圓形,長(zhǎng) 7.17~10.23 μm,平均(8.44±0.75) μm,寬5.21~6.31 μm,平均(5.75±0.34) μm(圖1B,1C);培養(yǎng)7 d后,菌落開始產(chǎn)生菌核(圖1D),菌核初期呈白色,后顏色逐漸加深,變黑變硬.由此初步判斷該病原菌為灰葡萄孢(BotrytiscinereaPers.).
A.菌落;B.分生孢子;C.孢子梗;D.菌核.圖1 煙草灰霉病病原菌的形態(tài)特征Fig.1 Morphological characteristics of tobacco gray mold pathogen
采用真菌通用引物ITS1和ITS4對(duì)30株菌株進(jìn)行PCR擴(kuò)增,均獲得約540 bp的片段.測(cè)序后將所有序列于NCBI中進(jìn)行BLAST比對(duì),結(jié)果表明,30株菌株與灰葡萄孢的同源性在97.35%~99.63%之間.選取其中同源性最高(99.63%)的一個(gè)序列上傳,該序列名稱為fafu01,登錄號(hào)為MW629853.1. RPB2、G3PDH、HSP60基因擴(kuò)增分別獲得約1 100、900、1 000 bp的片段,與目的片段大小一致.綜合病原菌形態(tài)特征及ITS序列比對(duì)結(jié)果,可確定本研究分離的煙草灰霉病病原菌均為灰葡萄孢.
供試的30株灰霉病菌菌株對(duì)腐霉利的敏感性無顯著差異,其EC50平均值在0.73~1.11 μg·mL-1之間.不同植煙區(qū)的菌株對(duì)腐霉利的敏感性差異倍數(shù)有所不同:來自大田縣的菌株差異最大,差異倍數(shù)為5.44;其他采集地的菌株差異倍數(shù)均小于2.00 .敏感性最低和最高的菌株均來自大田縣(表2).
表2 不同植煙區(qū)煙草灰霉病菌對(duì)腐霉利的敏感性1)Table 2 Sensitivity of B.cinerea collected from different planting regions to procymidone
1)差異倍數(shù)為EC50最大值與最小值的比值.
供試的30株菌株對(duì)異菌脲的敏感性無顯著差異,其EC50平均值在0.41~1.01 μg·mL-1之間.不同植煙區(qū)的菌株對(duì)異菌脲的敏感性差異有所不同:來自大田縣的菌株差異最大,差異倍數(shù)為3.17;來自沙縣的菌株次之,差異倍數(shù)為2.49;其他采集地的菌株差異倍數(shù)均小于2.00.敏感性最低的菌株來自沙縣和清流縣,敏感性最高的菌株來自大田縣(表3).
表3 不同植煙區(qū)煙草灰霉病菌對(duì)異菌脲的敏感性1)Table 3 Sensitivity of B.cinerea collected from different planting regions to iprodione
供試的30株菌株對(duì)嘧霉胺的敏感性無顯著差異,其EC50平均值在0.77~1.18 μg·mL-1之間.不同植煙區(qū)的菌株對(duì)嘧霉胺的敏感性差異有所不同:來自泰寧縣的菌株差異最大,差異倍數(shù)為3.55;來自大田縣的菌株次之,差異倍數(shù)為3.17;其他采集地的菌株差異倍數(shù)均小于3.00.敏感性最低的菌株來自建寧縣和永安市,敏感性最高的菌株來自泰寧縣(表4).
表4 不同植煙區(qū)煙草灰霉病菌對(duì)嘧霉胺的敏感性1)Table 4 Sensitivity of B.cinerea collected from different planting regions to pyrimethanil
本研究對(duì)福建省6個(gè)植煙區(qū)的煙草灰霉病病原菌進(jìn)行了分離,結(jié)合形態(tài)學(xué)和分子生物學(xué)手段對(duì)其中30株菌株進(jìn)行了鑒定,結(jié)果表明所有菌株均為灰葡萄孢.
腐霉利對(duì)30株煙草灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的EC50值范圍為0.38~2.06 μg·mL-1.已有研究表明,腐霉利對(duì)來自草莓和藍(lán)莓的灰霉菌菌株的EC50值為0.07~5.76 μg·mL-1[13].可見,腐霉利對(duì)不同灰霉菌菌株的EC50值差異很大.
異菌脲對(duì)30株煙草灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的EC50值范圍為0.23~1.17 μg·mL-1.Avenot et al[14]通過對(duì)來自葡萄、開心果和石榴的灰霉病菌進(jìn)行研究認(rèn)為,當(dāng)異菌脲對(duì)菌絲生長(zhǎng)的EC50值小于1 μg·mL-1時(shí),菌株為敏感菌株;Baggio et al[15]研究表明,當(dāng)異菌脲對(duì)草莓灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的EC50值大于1.2 μg·mL-1時(shí),菌株為抗性菌株;Chen et al[16]研究也表明,異菌脲對(duì)黑莓灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的EC50值為2.596 μg·mL-1,其對(duì)灰霉病的防效大幅降低.由此推測(cè)福建煙草灰霉病菌可能有部分菌株出現(xiàn)了一定抗性,但抗性比較低.
嘧霉胺對(duì)30株煙草灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的EC50值范圍為0.33~1.22 μg·mL-1.已有研究表明,當(dāng)嘧霉胺對(duì)草莓灰霉病菌菌絲生長(zhǎng)的EC50值大于5.0 μg·mL-1時(shí),菌株為抗性菌株[15].由此推測(cè)本研究中的供試菌株尚未對(duì)嘧霉胺產(chǎn)生抗性.
綜上所述, 3種藥劑對(duì)30株煙草灰霉病菌菌株的抑制效果都比較好,但從EC50平均值來看,效果最好的是異菌脲(0.71 μg·mL-1),腐霉利(0.91 μg·mL-1)次之.
致謝:感謝福建農(nóng)林大學(xué)植物保護(hù)學(xué)院陳鳳平博士在論文寫作過程中給予的幫助!