唐志強,李小麗,許小涵,蒲高斌,2*
(1.山東中醫(yī)藥大學(xué),山東 濟南 250355;2.山東省中藥質(zhì)量控制與全產(chǎn)業(yè)鏈建設(shè)協(xié)同創(chuàng)新中心,山東 濟南 250355)
金銀花為忍冬科植物忍冬LonicerajaponicaThunb.的干燥花蕾或帶初開的花,有清熱解毒、疏散風(fēng)熱等功效。目前,中國新冠肺炎疫情雖然整體得到了有效的控制,但是國內(nèi)個別地區(qū)仍有反復(fù),國際形勢依然非常嚴峻。金銀花為清熱類藥物,通過發(fā)揮清熱解毒、疏風(fēng)散熱等功效,起到防御病毒的作用,成為各個省份使用頻率較高的中藥之一,社會需求也隨之不斷加大[1]。病蟲害是導(dǎo)致金銀花產(chǎn)量不高、質(zhì)量不穩(wěn)的主要原因,因此急需培育出優(yōu)良種質(zhì)來提高金銀花的產(chǎn)量、質(zhì)量和抗病蟲害能力,滿足社會需求。
基因編輯是改良品種、創(chuàng)新種質(zhì)的新方法,已在多個物種中成功應(yīng)用。CRISPR/Cas9基因組編輯技術(shù)因為其高效簡便等優(yōu)點,已經(jīng)成為目前功能基因研究及種質(zhì)改良的主要工具。在水稻中過表達OsPPDK基因,能夠在種子形成時期提高葉片的光合效率,促進衰老葉片的N活化,在延緩葉片衰老的同時提升水稻的持綠性,為增加水稻產(chǎn)量打下了基礎(chǔ)[2]。Wang等[3]利用CRISPR/Cas9技術(shù)生成攜帶TaMLO-A1等位基因突變的轉(zhuǎn)基因小麥植株,提高抗白粉病能力的同時增加了小麥的產(chǎn)量。Do等[4]通過編輯大豆FAD2-1A和FAD2-1B基因,將油酸含量增加了80%,亞油酸含量下降到1.3%~1.7%,改善了種子油脂的性狀,創(chuàng)造出高油酸大豆。U6RNA是一種小的非編碼RNA,廣泛參與mRNA前體的剪接成熟[5]。U6RNA所對應(yīng)的U6啟動子通常被用來驅(qū)動sgRNA的轉(zhuǎn)錄,是CRISPR/Cas9系統(tǒng)中的重要組成部分。目前,U6啟動子已在多種植物的CRISPR/Cas9系統(tǒng)中使用,包括蘋果[6]、藜麥[7]、大豆[8]、地錢[9]等。藏旭陽等[10-11]利用海島棉的U6啟動子構(gòu)建GbU6-1P啟動子并且利用PEG瞬時轉(zhuǎn)化法將核心片段轉(zhuǎn)入原生質(zhì)體中,篩選出GbU6-7P啟動子,以GGB為靶序列構(gòu)建CRISPR/Cas9基因編輯載體并成功轉(zhuǎn)入棉花的原生質(zhì)體中,實現(xiàn)了對棉花內(nèi)源靶基因GGB的定點編輯。王怡婷等[12]以大豆YT9啟動子構(gòu)建的CRISPR/Cas9基因編輯體系能夠靶向敲除GmPDS11和GmPDS18雙基因,實現(xiàn)大豆靶向基因編輯功能。Pompili等[13]利用擬南芥U6啟動子驅(qū)動sgRNA的轉(zhuǎn)錄,對蘋果中火疫病相關(guān)基因進行定點突變,以植株接種病菌后的發(fā)病情況來判斷基因編輯的效果,統(tǒng)計了蘋果的轉(zhuǎn)基因和基因組編輯效率。
近年來,越來越多的金銀花功能基因被相繼克隆出來,為金銀花的基因編輯奠定了基礎(chǔ)。喬永剛等[14]從金銀花中篩選出34個AP2轉(zhuǎn)錄因子,DREB和RAV均能響應(yīng)低溫脅迫,隨著處理時間和組織部位的不同,表達量也存在差異,在一定程度上闡明金銀花AP2轉(zhuǎn)錄因子響應(yīng)低溫脅迫的機制。Yan等[15]發(fā)現(xiàn)在不同濃度的鹽脅迫下,HQT和PAL家族基因轉(zhuǎn)錄水平升高,綠原酸含量升高,藥材生物量積累和質(zhì)量都得到提高。Qi等[16]采用BLAST法和HMM法從忍冬轉(zhuǎn)錄組測序結(jié)果中得到CYP450基因,通過qRT-PCR篩選出5個與綠原酸生物合成相關(guān)的CYP450s酶進行探究,克隆得到3個LjC4Hs基因和2個LjC3Hs基因,有效地促進了綠原酸的生物合成。目前為止U6啟動子已應(yīng)用于多種植物,但是關(guān)于金銀花U6啟動子轉(zhuǎn)錄活性的研究還未見報道。金銀花基因組中含有多種U6啟動子,這些啟動子的活性也并不相同,并且U6啟動子具有物種偏好性,外源的啟動子在金銀花中可能難以高效啟動轉(zhuǎn)錄,因此有必要克隆金銀花自身的U6啟動子,以便于開展金銀花的基因編輯。
本研究所用的金銀花華金6號和煙草均由山東中醫(yī)藥大學(xué)中藥資源研究室種植;大腸桿菌感受態(tài)細胞購自全式金生物技術(shù)有限公司;農(nóng)桿菌感受態(tài)細胞購自上海唯地生物技術(shù)有限公司;基因組DNA提取試劑盒、純化試劑盒和5minTMTA/Blunt-Zero Cloning Kit購自南京諾唯贊生物技術(shù)有限公司;質(zhì)粒小提試劑盒購自天根生化科技(北京)有限公司;啟動子測序由鉑尚生物技術(shù)(上海)有限公司完成;DNA聚合酶采用北京聚合美生物科技有限公司生產(chǎn)的新型藍色染料高保真Taq酶mix;染色液5-溴-4-氯-3-吲哚葡萄糖苷X-Gluc和10×PBS緩沖液購自北京索萊寶科技有限公司。
1.2.1 啟動子的克隆
取山東中醫(yī)藥大學(xué)藥圃中生長良好的華金6號金銀花葉片,采用植物基因組提取試劑盒提取金銀花基因組DNA。利用設(shè)計好的引物(表1)和DNA聚合酶進行擴增,PCR程序為:98 ℃ 3 min;95 ℃ 30 s、55 ℃ 30 s、72 ℃ 1 min,32個循環(huán);72 ℃ 5 min。反應(yīng)體系為:DNA模板2.5 μL、正向引物和反向引物各1.25 μL、DNA聚合酶25 μL、水20 μL,共50 μL。用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測正確后,膠回收試劑盒回收并純化目的片段?;厥胀瓿珊笈cpCE2 TA/Blunt-Zero載體連接、轉(zhuǎn)化、一次活化,對重組質(zhì)粒采用PCR方法鑒定,鑒定正確的質(zhì)粒進行測序。用DNAMAN軟件對測序結(jié)果進行分析,序列對比正確后進行二次活化。
表1 本研究使用的引物序列
1.2.2 U6啟動子表達載體構(gòu)建
圖1 金銀花不同截短U6啟動子驅(qū)動GUS的融合表達載體構(gòu)建
1.2.3 原生質(zhì)體的制備
取無菌煙草葉片1 g,剪成約0.5 cm2的碎片,加入10 mL酶解液(纖維素酶1%,離析酶0.5%,甘露醇0.6 mol/L,MES 20 mmol/L,KCl 20 mmol/L,55 ℃水浴10 min后加入BSA 0.1%和CaCl21 mmol/L),26 ℃,60 r/min,避光酶解4 h[17]。酶解后的葉片過70 um細胞濾網(wǎng),700 r/min離心5 min,棄上清后用W5(NaCl 154 mmol/L,CaCl2125 mmol/L,KCl 5 mmol/L)洗滌3次,加入1 mL MMM緩沖液(MgCl215 mmol/L,MES 0.1%,甘露醇 0.5 mmol/L),于4 ℃保存。煙草原生質(zhì)體在4 ℃中保存的時間約為3 d[18]。
1.2.4 農(nóng)桿菌侵染原生質(zhì)體
取1 mL二次活化后的菌液,4 000 r/min離心5 min,棄上清;加入1 mL LB液體培養(yǎng)基懸浮菌體,靜置2 min后離心,棄上清;加入1 mL MS液體培養(yǎng)基,懸浮菌體,28 ℃,200 r/min培養(yǎng)1~2 h;加入1 mL原生質(zhì)體,25 ℃培養(yǎng)30 min,離心,棄上清,加入1 mL MS液體培養(yǎng)基懸浮后,28 ℃放置24 h。
1.2.5 原生質(zhì)體染色和計數(shù)
在原生質(zhì)體中加入1 mL的染色液(X-Gluc母液100 mL+50 mmol/L的PBS 900 mL;X-Gluc母液:5-溴-4-氯-3-吲哚葡萄糖苷 X-Gluc用N-N-二甲基甲酰胺配成20 mmol/L),37 ℃染色12 h。12 h后使用75%乙醇脫色3次,滴入血球計數(shù)板,鏡檢。
從華金6號金銀花中分別克隆出Chr01 U6-F1、Chr02 U61-F1、Chr02 U61-F2、Chr02 U62-F1和Chr02 U62-F2啟動子片段,回收純化后與T載體連接,PCR擴增后根據(jù)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測結(jié)果(圖2),將正確的質(zhì)粒送去測序。測序結(jié)果符合預(yù)期。
注:M—D2000; 1—Chr01 U6-F1;2—Chr02 U61-F1;3—Chr02 U61-F2;4—Chr02 U62-F1;5—Chr02 U62-F2。
本研究克隆了金銀花中3個候選的啟動子,發(fā)現(xiàn)其都含有RNA聚合酶Ⅲ結(jié)合、識別所需要的TATA框和USE元件(圖3),這表明克隆的3個金銀花U6啟動子可能都具有轉(zhuǎn)錄活性。
注:箭頭為U6RNA的轉(zhuǎn)錄起始位點。
利用Hind Ⅲ和BamH Ⅰ雙酶切構(gòu)建好的T載體(圖4),經(jīng)驗證每個啟動子片段大小正確,回收、純化目的片段并成功與PBI 121載體大片段相連(圖5)。
注:M—D2000。
注:M—D2000;1—Chr01 U6-F1;2—Chr02 U61-F1;3—Chr02 U61-F2;4—Chr02 U62-F1;5—Chr02 U62-F2。
農(nóng)桿菌侵染原生質(zhì)體后,利用染色液對原生質(zhì)體進行染色。本研究以CaMV35S啟動子為陽性對照,以農(nóng)桿菌為陰性對照,通過染色的結(jié)果可發(fā)現(xiàn)Chr01 U6-F1啟動子具有較高的轉(zhuǎn)錄活性,Chr02 U62-F1啟動子的轉(zhuǎn)錄活性低于Chr01 U6-F1啟動子,Chr02 U61-F1、Chr02 U61-F2和Chr02 U62-F2啟動子染色結(jié)果均未出現(xiàn)藍色,表明這些啟動子不具備轉(zhuǎn)錄活性或轉(zhuǎn)錄活性極低(圖6)。
注:A—煙草原生質(zhì)體;B—Chr01 U6-F1啟動子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;C—Chr02 U61-F1啟動子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;D—Chr02 U61-F2啟動子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色; E—Chr02 U62-F1啟動子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;F—Chr02 U62-F2啟動子轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;G—CaMV35S轉(zhuǎn)錄后的原生質(zhì)體染色;H—農(nóng)桿菌侵染后的原生質(zhì)體染色。
本研究從金銀花全基因組測序結(jié)果中篩選出多個候選的U6啟動子,利用BLAST和PCR驗證,最終確立Chr01 U6-F1、Chr02 U61-F1、Chr02 U61-F2、Chr02 U62-F1和Chr02 U62-F2這5種U6啟動子進行后續(xù)研究。通過構(gòu)建不同長度啟動子驅(qū)動GUS的植物融合表達載體和農(nóng)桿菌瞬時轉(zhuǎn)化等方法,最終篩選出Chr01 U6-F1這一長度為255 bp的高效轉(zhuǎn)錄啟動子。在篩選出的啟動子中Chr02 U62-F1的轉(zhuǎn)錄活性低于Chr01 U6-F1,其余啟動子轉(zhuǎn)錄活性較低或不具有轉(zhuǎn)錄活性。針對Chr02 U62-F1和Chr02 U62-F2這兩個同一啟動子5′端不同截短染色情況差異提出假設(shè),猜測其5′端有抑制因子或隨著序列長度增加,組織轉(zhuǎn)染難度也相應(yīng)提高。研究表明,U6啟動子在具備必要元件時即可擁有轉(zhuǎn)錄活性,而序列過長可能會存在抑制因子,使較長序列的U6啟動子的轉(zhuǎn)錄活性受到抑制[19]。卞書迅等[20]在包含必要的USE和TATA盒前提下,把蘋果10號染色體上的U6啟動子從5′端進行不同長度的截短,發(fā)現(xiàn)長度為275 bp的U6啟動子轉(zhuǎn)錄活性最高,而長度為1 527 bp和959 bp的U6啟動子轉(zhuǎn)錄活性較低。卞書迅提出蘋果U6啟動子的5′末端存在一些抑制因子,抑制了這些啟動子的轉(zhuǎn)錄活性。雷建峰等[21]從棉花中克隆得長度分別為1 166、1 119、1 134、1 214和1 176 bp的5種GbU6啟動子,經(jīng)過篩選,最終確定了轉(zhuǎn)錄活性較高,序列長度為1 134 bp的GbU6-5P,為構(gòu)建棉花CRISPR/Cas9基因組編輯載體系統(tǒng)提供了有效的啟動子。在番茄中,U6啟動子被截取到200 bp左右時仍具有較高的轉(zhuǎn)錄活性[22],而在擬南芥中,U6啟動子被截取到79 bp時還可用于基因編輯體系[23]。這些研究結(jié)果進一步驗證了啟動子5′端有抑制因子或隨著序列長度增加組織轉(zhuǎn)染難度也相應(yīng)提高的猜想。
綜上所述,本研究克隆并鑒定得到了一個具有高效轉(zhuǎn)錄活性的U6啟動子,為在金銀花中建立CRISPR/Cas9基因組編輯系統(tǒng)提供了理論依據(jù),為后續(xù)對金銀花功能基因研究、種質(zhì)改良、新品種培育、提高抵抗生物及非生物脅迫能力奠定了堅實的基礎(chǔ)。