劉可欣,王倩穎,楊森,劉俊峰,胡建軍,張淑琴※
(1.中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院特產(chǎn)研究所,吉林 長春 130112;2.塔里木畜牧科技兵團(tuán)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,新疆 阿拉爾 843300)
最近幾年,重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)(recombinase polymerase amplification,RPA)因其可使核酸在體外等溫條件下就可以進(jìn)行擴(kuò)增,且具有敏感度高、檢測用時短、成本低、特異性強(qiáng)和便攜等特點(diǎn),有望成為取代聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)技術(shù)的新的核酸體外擴(kuò)增技術(shù)。RPA技術(shù)是2006年英國劍橋科學(xué)家Piepenburg[1]等研發(fā)的一種體外核酸擴(kuò)增檢測新技術(shù)。英國TwistDX公司于2014年生產(chǎn)了具有可進(jìn)行商業(yè)生產(chǎn)檢測RPA的試劑盒。該試劑盒大大推動了RPA檢測技術(shù)在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)、醫(yī)學(xué)診斷以及生物檢測等眾多領(lǐng)域中的推廣應(yīng)用[2]。
RPA基本原理是依賴于DNA修復(fù)中的一個關(guān)鍵過程——同源重組。其擴(kuò)增原理是重組酶蛋白(recombinant enzyme protein,REP)與寡核苷酸引物在鏈置換DNA聚合酶及能量作用下發(fā)生結(jié)合產(chǎn)生重組酶絲狀復(fù)合物,該復(fù)合物在雙鏈DNA模板中尋找靶點(diǎn)。重組復(fù)合物在定位后引起鏈發(fā)生置換反應(yīng)后形成D環(huán)結(jié)構(gòu),為避免出現(xiàn)在新鏈DNA還未合成時就發(fā)生母鏈聚集配對的現(xiàn)象,單鏈結(jié)合蛋白(single-stranded binding protein,SSB)與發(fā)生置換反應(yīng)的模板單鏈DNA結(jié)合[3],之后重組酶絲狀復(fù)合物掃描DNA模板鏈,當(dāng)掃描識別到的序列可與設(shè)計(jì)的引物互補(bǔ)配對時,負(fù)責(zé)堿基配對的REP可通過與SSB相互結(jié)合,阻止攔截細(xì)胞核內(nèi)DNA水解酶降解單鏈DNA[3],最后DNA聚合酶在引物的3'端添加相應(yīng)堿基片段進(jìn)行DNA復(fù)制并延伸。
引物在RPA反應(yīng)中也同樣重要。RPA的引物與傳統(tǒng)常規(guī)PCR引物并不完全相同。當(dāng)我們設(shè)計(jì)RPA引物的時候,RPA引物長度需要在30~35 bp之間,以便于重組酶與引物形成復(fù)合物。因其引物比PCR技術(shù)長,所以特異性也較之更好。引物片段過短(15 bp),則會導(dǎo)致反應(yīng)重組率降低;引物片段過長(45 bp),雖然能夠使用,但是極易產(chǎn)生二級結(jié)構(gòu)及潛在的引物現(xiàn)象[4]。一般而言,兩個RPA引物產(chǎn)生的擴(kuò)增產(chǎn)物建議不超過500 bp,最適合的長度為100~200 bp。引物選擇基本分為3個步驟,首先選擇靶區(qū)域,之后設(shè)計(jì)候選引物,最后進(jìn)行實(shí)驗(yàn)篩選。因?yàn)楝F(xiàn)在科研人員對RPA技術(shù)的研究了解還不透徹,還沒有專門軟件可以對RPA引物進(jìn)行設(shè)計(jì),但有一些規(guī)則可遵循,即引物長度最好在30~35 bp之間;5'端的3~5個堿基要避免出現(xiàn)鳥嘌呤(G),3'端最后3個核苷酸最好是鳥嘌呤(G)或胞嘧啶(C),鳥嘌呤(G)胞嘧啶(C)的含量應(yīng)在30%~70%之間,同時無需考慮引物退火溫度,但要求引物的濃度范圍在400~500 nmol/L之間[5]。
大多數(shù)常用的PCR探針系統(tǒng)不適用于實(shí)時熒光定量RPA(Real time-RPA,RT-RPA)反應(yīng),確切地說利用聚合酶的5'至3'聚合酶活性的探針系統(tǒng)不能用于RPA反應(yīng)。Real time-RPA探針一般分別在5'端和3'端設(shè)計(jì)1個熒光基團(tuán)和熒光猝滅基團(tuán),還有與兩個基團(tuán)相連的中間位置設(shè)計(jì)脫堿基位點(diǎn)(abasic site)類似物(THF)。在一個反應(yīng)中,推薦探針濃度為120 nmol/L,有時調(diào)整探針濃度會促進(jìn)反應(yīng)的進(jìn)行,因此可在50~150 nmol/L濃度范圍內(nèi),對探針濃度進(jìn)行優(yōu)化[6]。
RPA技術(shù)可以和多種檢測方法相結(jié)合。常見的有凝膠電泳檢測技術(shù)、橫向流動試紙條檢測技術(shù)(RPALFD)、Real time-RPA和電化學(xué)檢測等。凝膠電泳檢測法成本低,所用設(shè)備簡單,但缺點(diǎn)是為避免電泳結(jié)果出現(xiàn)抹帶等現(xiàn)象,檢測前需要對擴(kuò)增產(chǎn)物進(jìn)行純化。
RPA-LFD技術(shù)以RPA技術(shù)擴(kuò)增原理為基礎(chǔ),引物帶有生物素標(biāo)志,探針帶有羧基熒光素(FAM)標(biāo)志,引物、探針與靶核酸發(fā)生擴(kuò)增反應(yīng),使最終擴(kuò)增產(chǎn)物同時攜帶FAM和生物素標(biāo)志[7]。將橫向流動試紙條檢測與RPA技術(shù)相組合,擴(kuò)增與檢測合計(jì)在30 min內(nèi),可以實(shí)現(xiàn)低至1~10 DNA拷貝的檢測限。此方法十分適用于基層進(jìn)行檢測,因?yàn)榇朔椒o需提前對操作員進(jìn)行專業(yè)培訓(xùn),也不需要昂貴的高端復(fù)雜精密儀器,僅通過肉眼就可以觀察出檢測結(jié)果,并且,此方法所用成本比實(shí)時熒光定量檢測法低。鄧王平等[8]應(yīng)用此技術(shù)檢測了日本血吸蟲。
RT-RPA檢測法目前已被廣泛應(yīng)用。RPA的實(shí)時熒光檢測應(yīng)選用特定探針,如Exo探針。Exo探針[9]是與靶序列具有同源性的寡核苷酸,含有脫堿基位點(diǎn)THF,兩側(cè)分別有一個熒光基團(tuán)和淬滅基團(tuán),3'端帶有阻斷物以避免探針延伸。當(dāng)探針不反應(yīng)時,熒光基團(tuán)信號被淬滅基團(tuán)壓制;而Exo探針與靶序列結(jié)合時,核酸外切酶III在THF位點(diǎn)切割探針,熒光基團(tuán)與淬滅基團(tuán)分離,實(shí)現(xiàn)熒光信號與擴(kuò)增產(chǎn)物的同步累積。實(shí)時熒光RPA不同于RT-PCR,其一直處于一個恒定的最佳反應(yīng)溫度進(jìn)行,可連續(xù)加入樣本擴(kuò)增。
電化學(xué)檢測利用電化學(xué)活性物質(zhì)產(chǎn)生與核酸擴(kuò)增有關(guān)的信號。大多數(shù)電化學(xué)檢測RPA的方法都是通過RPA-酶聯(lián)免疫吸附測定或RPA-酶促測定來檢測電流信號[10,11]。Ng等和Lau等[12,13]已經(jīng)采用金納米粒子作為RPA擴(kuò)增子檢測的信號傳感器。金納米粒子可以選擇性地結(jié)合RPA擴(kuò)增子,并將RPA擴(kuò)增子的濃度轉(zhuǎn)移到可測量的電化學(xué)信號中,而這種電化學(xué)檢測方法有著較高的分析靈敏度。Ng等[12]能夠檢測到低至1CFU的結(jié)核分枝桿菌DNA,Lau等[13]可檢測到低至214 pM的假單胞菌DNA。顯然RPA-電化學(xué)檢測的高分析靈敏度是一個優(yōu)勢,同時其檢測快速,低成本,適用于現(xiàn)場檢測。
RPA對溫度要求不高,在37~42℃條件下可以恒溫?cái)U(kuò)增。PCR技術(shù)需要一個較高溫度循環(huán)使模板變形擴(kuò)增,環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增(LAMP)要在65℃條件下退火,RPA技術(shù)并不需要,這使得RPA技術(shù)操作與其他擴(kuò)增技術(shù)相比更為簡單,并且減少了實(shí)驗(yàn)所需成本;RPA不僅可擴(kuò)增RNA,也可以擴(kuò)增DNA[14],而核酸序列依賴性擴(kuò)增卻只能用于檢測RNA;RPA耗時短,在5~20 min之內(nèi)就可以完成反應(yīng),比PCR、環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增、依賴核酸序列的擴(kuò)增等技術(shù)節(jié)省了很多時間;RPA對技術(shù)操作要求不高,不受檢測場地限制,并且應(yīng)用RPA技術(shù)檢測時也不需要十分高精尖的設(shè)備,甚至可以直接利用人體腋下溫度對樣品進(jìn)行檢測[15];RPA技術(shù)對檢測樣品要求也很低——模板可直接使用經(jīng)簡單裂解液裂解60 s的樣品,故十分適用于現(xiàn)場實(shí)地檢測;RPA技術(shù)的特異性佳,靈敏度高[16],其特異性可以與RT-PCR相媲美[17]。
RPA技術(shù)擴(kuò)增產(chǎn)物在進(jìn)行凝膠電泳檢測時,為了避免其他成分對結(jié)果造成的影響,需要對產(chǎn)物進(jìn)行純化。RPA技術(shù)單份檢測費(fèi)用不低,因?yàn)楝F(xiàn)階段使用的RPA試劑均產(chǎn)自英國,且目前沒有一款專業(yè)的軟件能夠設(shè)計(jì)和篩選RPA技術(shù)的引物和探針。RPA技術(shù)不能檢測較短序列的DNA或RNA,而且在檢測大量樣品時,很難控制反應(yīng)同時進(jìn)行。
表1 RPA與其他核酸檢測技術(shù)的比較Table 1 Comparison of RPA and other nucleic acid isothermal amplification methods
姜一瞳等[28]建立了一種RPA方法針對檢測犬細(xì)小病毒(CPV)。該實(shí)驗(yàn)引物序列的設(shè)計(jì)基于CPVVP2基因的保守區(qū)序列,通過優(yōu)化不同反應(yīng)條件,建立了犬細(xì)小病毒的RPA檢測方法。該方法最適反應(yīng)溫度為38℃,恒溫反應(yīng),反應(yīng)15 min后即可特異、快速地檢測出犬細(xì)小病毒。該方法特異性強(qiáng),敏感度高,同時使用普通PCR法、膠體金和RPA法檢測疑似CPV感染的臨床樣品,普通PCR和膠體金的檢出率(82%、76%)明顯低于建立的RPA方法的陽性檢出率(88%)。故該實(shí)驗(yàn)建立的檢測犬細(xì)小病毒方法簡單易于操作,反應(yīng)靈敏度高,結(jié)果真實(shí)可信,適用于CPV的快速檢測。林彥星等[29]建立了非洲豬瘟病毒(African swine fever virus)核酸LFD-RPA的快速檢測法。該方法以非洲豬瘟病毒B646L基因保守區(qū)序列為依據(jù),設(shè)計(jì)nfo RPA特異性引物和探針,結(jié)果表明,該方法高特異性,且不與PCV2、CSFV、PRRSV、FMDV及SVA等病原核酸發(fā)生反應(yīng);最低可以檢測到1.57 102copies/L重組質(zhì)粒pUC-B646L;檢測快速,其中RPA擴(kuò)增20 min,LFD檢測10~20 min。應(yīng)用該法對24個模擬樣品進(jìn)行檢測,檢測結(jié)果與RT-PCR法一致。該研究建立的LFDRPA快速檢測方法操作方便簡單,為ASFV現(xiàn)場快速檢測提供了技術(shù)支持。焦健等[30]建立快速檢測蘋果病毒的RT-RPA方法,其以蘋果莖溝病毒(apple stem grooving virus)、蘋果褪綠葉斑病毒(apple chlorotic leaf spot virus)、蘋果莖痘病毒(apple stem pitting virus)和蘋果壞死花葉病毒(apple necrotic mosaic virus)為檢測對象,通過設(shè)計(jì)特異性RPA引物以及探索反應(yīng)最適條件,與傳統(tǒng)RT-PCR方法比較其靈敏度、特異性,結(jié)果顯示所設(shè)計(jì)的RPA引物特異性高,最適反應(yīng)溫度為37℃,反應(yīng)時間為20 min,RT-RPA對4種蘋果病毒的檢測靈敏度為9.63 101copies,是傳統(tǒng)RT-PCR的102~103倍。
王素華等[31]基于炭疽桿菌BA5345基因建立了有效檢測炭疽桿菌的RPA方法,在39℃水浴鍋中反應(yīng)30 min即可實(shí)現(xiàn)對目的基因片段的有效擴(kuò)增,對重組質(zhì)粒pUC57-BA5345的最低檢測限為102copies/L,利用該研究建立的RPA方法對35份污染樣品進(jìn)行檢測,檢測的陽性率(65.71%)較常規(guī)PCR檢測的陽性率(42.86%)更高。劉立兵等[32]建立了沙門氏菌的RPA檢測方法。該研究選擇檢測的靶基因?yàn)樯抽T氏菌invA基因,設(shè)計(jì)特異性引物,反應(yīng)溫度為38℃,在水浴鍋中反應(yīng)20 min即可完成檢驗(yàn)。此方法操作簡便,特異性高,靈敏性可達(dá)到1.1 10-3ng/L。劉昂[33]等依據(jù)之前測序鑒定的羊源多殺性巴氏桿菌KMT1基因序列構(gòu)建了pET-28a(+)-KTM1標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)粒,設(shè)計(jì)適用于RT-RPA技術(shù)的特異性引物及熒光探針,建立RT-RPA方法的最適反應(yīng)體系,結(jié)果顯示,該試驗(yàn)建立的RTRPA方法最適反應(yīng)溫度為39℃,最佳引物為KMT1-Fe1,靈敏度達(dá)100 kb/L,檢測下限為10 kb/L,與大腸桿菌(Escherchia.coli)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、副 傷 寒 沙 門 氏 菌(Salmonella paratyphi)、副溶血弧菌(Vibrio parahaemolyticus)、綠膿桿菌(Pseudomonas aeruginosa)、產(chǎn)酸克雷伯菌(Klebsiella oxytoca)、布魯氏菌S2株(Brucella S2 strain)和鮑曼不動桿菌(Acinetobacter baumannii)均無交叉反應(yīng)。對13個組織樣本進(jìn)行檢測,陽性率為76.9%,與RT-PCR檢測結(jié)果的符合率達(dá)92.3%。綜上所述,該實(shí)驗(yàn)建立的羊源多殺性巴氏桿菌RT-RPA方法具有特異性強(qiáng)、靈敏性高、安全可靠和快捷等特點(diǎn),可用于臨床診斷多殺性巴氏桿菌。
王盛琳等[34]基于RPA技術(shù),建立出一種可在等溫環(huán)境下檢測日本血吸蟲核酸的方法,該方法敏感性強(qiáng)、特異性高、簡便且快速。該研究以Sj28S基因片段為靶序列,在39℃條件下,20 min即可完成對目的基因的擴(kuò)增。該方法與曼氏血吸蟲、埃及血吸蟲、單尾尾蚴感染釘螺、華支睪吸蟲、大片形吸蟲、衛(wèi)氏并殖吸蟲和牛帶絳蟲及陰性釘螺基因組DNA均無交叉反應(yīng),具有良好的特異性。敏感性試驗(yàn)結(jié)果顯示,所建方法最低可檢出100 fg/L的日本血吸蟲成蟲基因組DNA,或者是100 copies/L的目的基因。Li等[35]建立了一種檢測旋毛蟲(Trichinella.)的LF-RPA方法,該LFRPA方法可檢測100 fg DNA,而傳統(tǒng)PCR方法只能檢測到1 pg DNA,LF-RPA檢測靈敏度約為傳統(tǒng)PCR方法的10倍。在對實(shí)驗(yàn)感染旋毛蟲組和對照組小鼠的舌組織樣品、膈膜組織樣品和腹肌組織樣品的檢測中,LF-RPA法和傳統(tǒng)PCR法均可檢測到感染,實(shí)驗(yàn)感染小鼠的組織,對照組中都未出現(xiàn)假陽性。Yuan等[36]通過建立LF-RPA方法檢測爪哇根結(jié)線蟲(Meloidogynejavanica),該方法檢測限為1 pg純化基因組DNA,或0.01個雌成蟲,或0.1個第2期幼蟲,靈敏度明顯高于傳統(tǒng)的檢測方法。檢測16個土壤樣品,用直接從土壤中提取的DNA進(jìn)行LF-RPA檢測,10個人工接種的爪哇根結(jié)線蟲樣品中只有3個樣品檢測為陽性,而用改進(jìn)的Baermann漏斗法從土壤樣品中分離的線蟲gDNA,所有人工接種的爪哇根結(jié)線蟲樣品均被檢測為陽性;所有不含根結(jié)線蟲的土壤和人工接種南方根結(jié)線蟲的土壤樣本均未檢測到陽性。Xing等[37]建立了基于高重復(fù)反轉(zhuǎn)錄轉(zhuǎn)座SjR2基因的檢測日本血吸蟲(Schistosoma japonicum)的RPA方法,RPA方法的檢測限為0.9 fg,與實(shí)時PCR相當(dāng)。用RPA方法對30份感染糞便標(biāo)本和30份未感染糞便標(biāo)本進(jìn)行分析,其結(jié)果與改良加藤氏厚涂片法結(jié)果一致,敏感性和特異性均為100%。在對200名居民的糞便標(biāo)本檢測中,使用毛蚴孵化試驗(yàn)被確認(rèn)為陽性61人(31.5%),其中包括使用改良加藤氏厚涂片法檢測為陽性的48人(24%),隨后,將這200份糞便標(biāo)本分別進(jìn)行RPA、酶聯(lián)免疫吸附試驗(yàn)(ELISA)和間接血凝試驗(yàn)(IHA),結(jié)果顯示,RPA檢測出了陽性患者66名,其中包括5名假陽性,陰性患者134名;ELISA檢出陽性患者72名,其中假陽性患者23名,陰性患者128名,其中假陰性患者12名;IHA檢出陽性患61名,其中假陽性患者9名,陰性患者139名,其中假陰性患者9名。ELISA和IHA的靈敏度和特異度分別為85.2%和93.5%,80.3%和83.4%,RPA的靈敏度和特異度為100%和96.4%,該RPA方法較好地改善了現(xiàn)有檢測技術(shù)對低負(fù)荷感染不敏感的問題。Kate等[38]對比建立了基于曼氏血吸蟲(S.mansoni)ITS基因和28SrDNA基因的LF-RPA方法,基于28S基因的LF-RPA方法有著更好的特異性和敏感性,其檢測靈敏度限為10 pg DNA。
RPA作為在恒定溫度條件下反應(yīng)的新型核酸體外擴(kuò)增技術(shù),具有耗時短、靈敏度高、特異性強(qiáng)及操作簡單等獨(dú)特的優(yōu)越性,引起了科研人員的大量關(guān)注[39]。但重組酶聚合酶擴(kuò)增技術(shù)作為一種新興起的等溫檢測技術(shù),仍存在著一些缺點(diǎn)和不足,需進(jìn)一步完善。盡管RPA存在一些不足,但隨著科學(xué)家們RPA技術(shù)的不斷應(yīng)用和探索,將會改善這些不足,引起一場核酸檢測的革命,使RPA技術(shù)在不同領(lǐng)域尤其病原現(xiàn)場檢測中發(fā)揮更多的作用。