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黃芪多糖高壓破碎提取工藝優(yōu)化及體外抗氧化活性研究*

2022-06-10 07:29梁萬年李海池鐘超廖志遠王曉可陳圖敏
中國藥業(yè) 2022年11期
關鍵詞:液料清除率自由基

梁萬年,李海池,鐘超,廖志遠,王曉可,陳圖敏△

(1.中國科學院大學深圳醫(yī)院<光明>,廣東 深圳 518106;2.廣州中大南沙科技創(chuàng)新產(chǎn)業(yè)園有限公司,廣東 廣州 511458;3.中智廣州經(jīng)濟技術合作有限公司,廣東 廣州 510080)

黃芪為豆科植物蒙古黃芪Astragalus membranaceus(Fisch.)Bge.Var.mongholicus(Bge.)Hsiao或膜莢黃芪Astragalus membranaceus(Fisch.)Bge.的干燥根[1]。黃芪多糖是黃芪的有效成分,是從黃芪根中得到的大分子活性物質(zhì),主要為葡聚糖和雜多糖,具有抗腫瘤、抗衰老、抗氧化、抗輻射、抗病毒、調(diào)節(jié)免疫、改善心血管功能、雙向調(diào)節(jié)血糖、保護神經(jīng)等作用[2-5]。目前,通常采用熱水浸提、酶解法、微波輔助提取、超聲波輔助提取、超高壓提取等方法提取黃芪多糖,但存在提取溫度高、多糖易降解、需特定降解酶、儀器設備要求高、提取效率較低等問題[6-8]。高壓破碎提取技術是一種新型提取方法[9],在低溫或常溫條件下,利用高壓作用使樣品高速通過狹窄的縫隙時受到強大的剪切力、撞擊作用、湍流作用及在壓力瞬間釋放產(chǎn)生的空化效果等作用效果總和,使得細胞瞬間破碎并膨脹,促進細胞內(nèi)有效成分溶出,從而提高有效成分的得率[10],具有無需浸泡保壓、提取效率高、對儀器設備耐壓要求較低等優(yōu)點。本研究中采用高壓破碎提取法在低溫條件下提取黃芪多糖,采用正交試驗優(yōu)化其提取工藝,并研究其體外抗氧化活性,以開辟提取、分離黃芪多糖的新途徑?,F(xiàn)報道如下。

1 儀器與試藥

1.1 儀器

UV-2450型紫外可見分光光度計(島津<中國>有限公司);AL104型分析天平(梅特勒-托利多儀器<上海>有限公司,精度為萬分之一);JN-10C型低溫超高壓連續(xù)流細胞破碎儀(廣州聚能納米生物科技股份有限公司);DK-410HTDS型超聲波清洗機(深圳市得康洗凈電器有限公司);RE-52 AA型旋轉蒸發(fā)器,SHZ-DⅢ型循環(huán)真空泵(上海予華儀器設備有限公司)。

1.2 試藥

黃芪藥材飲片(廣州至信中藥飲片有限公司,批號為180601),經(jīng)廣州中大南沙科技創(chuàng)新產(chǎn)業(yè)園有限公司李海池副主任藥師鑒定為正品;D-無水葡萄糖標準品(中國食品藥品檢定研究院,批號110833-201908,純度為99.9%);1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(DPPH,梯希愛<上海>化成工業(yè)發(fā)展有限公司,批號為1090-66-4,純度97.0%);2,2-聯(lián)氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二銨鹽(ABTS,美國Sigma-Aldrich公司,批號為SLBG1958V,純度為98.0%);過硫化鉀(K2S2O8,分析純,國藥集團化學試劑有限公司);維生素C片(佛山手心制藥有限公司,批號為2011109);濃硫酸、無水乙醇、苯酚(分析純,廣州化學試劑廠);純化水為自制雙蒸水。

2 方法與結果

2.1 高壓破碎提取方法[9-10]

常溫條件下,將黃芪藥材粉碎后加入一定比例提取液,通過高速分散作用,使黃芪藥材粉末在提取液中進一步粉碎,且均勻分散,將均勻分散的樣品連續(xù)注入高壓粉碎提取裝置內(nèi);低溫條件下,黃芪多糖類成分在瞬間產(chǎn)生的較大壓力差作用下,迅速分散到提取液中,離心,分離濾液和藥渣。所得濾液即為黃芪多糖類成分提取液。

2.2 多糖提取工藝流程

黃芪藥材→粉碎→過篩→高壓破碎提取→過濾→濾液減壓濃縮→加95%乙醇(使含醇量達70%)[11],4℃沉淀12 h→離心(轉速為4 000 r/min)10 min→沉淀物→無水乙醇洗滌→減壓干燥→多糖粗品。按公式計算多糖得率。多糖得率(%)=(提取黃芪多糖質(zhì)量/黃芪藥材質(zhì)量)×100%。

2.3 多糖標準曲線繪制

取干燥至恒重的D-無水葡萄糖標準品50 mg,精密稱定,置100 mL容量瓶,加水溶解并定容,搖勻,配成質(zhì)量濃度為0.5 g/L的母液;精密移取0.1,0.2,0.5,0.7,1.5,2.0 mL母液,分別置10 mL容量瓶,分別加入6%苯酚溶液1.0 mL和濃硫酸5.0 mL,搖勻,靜置10 min,加水定容,以相應試劑為空白,于490 nm波長處測定吸光度。以多糖質(zhì)量濃度(X,g/L)為橫坐標、吸光度(Y)為縱坐標繪制標準曲線,得回歸方程Y=9.496 1X-0.002 5,R2=0.999 6(n=6)。結果表明,多糖質(zhì)量濃度在0.005~0.100 g/L范圍內(nèi)與吸光度線性關系良好。

2.4 高壓破碎提取工藝優(yōu)化

2.4.1 單因素試驗[9-10,12]

藥材粒度:稱取適量不同粒度(過60,80,100,120,140目篩)的黃芪藥材,以液料比為20∶1(V/m),提取溶劑為純化水,破碎提取壓力為100 MPa,提取1次的條件進行高壓破碎提取,考察不同藥材粒度對黃芪多糖得率的影響。結果見圖1 A??芍S芪藥材粒度在80目時,黃芪多糖的得率較高。

破碎提取壓力:稱取黃芪藥材(過80目篩)適量,共7份,以液料比為20∶1(V/m),提取溶劑為純化水,提取1次,破碎提取壓力分別為50,75,100,125,150,175,200 MPa的條件進行高壓破碎提取,考察不同破碎提取壓力對黃芪多糖得率的影響。結果見圖1 B??梢姡S芪多糖的得率隨著破碎提取壓力的升高而提高,125 MPa時多糖得率最大,繼續(xù)提高破碎提取壓力多糖得率反而降低。

乙醇體積分數(shù):稱取黃芪藥材(過80目篩)適量,共5份,以液料比為20∶1(V/m),提取溶劑分別為純化水、10%乙醇、20%乙醇、30%乙醇、40%乙醇,破碎提取壓力為125 MPa,提取1次的條件進行高壓破碎提取,考察不同乙醇體積分數(shù)對黃芪多糖得率的影響。結果見圖1 C??梢?,黃芪多糖的得率隨乙醇體積分數(shù)的升高而降低。不同體積分數(shù)乙醇,極性大小不同,對多糖的溶解能力不同。多糖易溶于水溶液,不易溶于乙醇溶液。

液料比(V/m)[10]:稱取黃芪藥材(過80目篩)適量,共5份,以純化水為提取溶劑,破碎提取壓力為125 MPa,提取1次,液料比分別為5∶1,10∶1,20∶1,30∶1,40∶1(V/m)的條件進行高壓破碎提取,考察不同液料比對黃芪多糖得率的影響。結果見圖1 D??梢姡斠毫媳?0∶1(V/m)時,多糖得率較高。

提取次數(shù):稱取黃芪藥材(過80目篩)適量,共4份,以純化水為提取溶劑,液料比為20∶1(V/m),破碎提取壓力為125 MPa,不同提取次數(shù)(分別提取1,2,3,4次)進行高壓破碎提取,考察不同提取次數(shù)比對黃芪多糖得率的影響。結果見圖1 E。可見,當提取次數(shù)超過2次時,黃芪多糖的得率變化不大,繼續(xù)增加提取次數(shù)反而會增加其他雜質(zhì)的溶出,也會增加后續(xù)工藝的處理難度。綜合考慮黃芪多糖得率及其對實際應用的影響,以提取2次為佳。

2.4.2 正交試驗優(yōu)化提取工藝

根據(jù)單因素試驗考察結果,以黃芪多糖得率為評價指標,選取藥材粒度(A)、破碎提取壓力(B)、乙醇體積分數(shù)(C)、液料比(D)4個考察因素,采用正交試驗優(yōu)化高壓破碎提取黃芪多糖的工藝參數(shù)。因素水平見表1。

表1 因素與水平Tab.1 Factors and levels

由正交設計助手Ⅱ3.1軟件分析可知,4個因素對黃芪多糖得率的影響次序為C>A>B>D,乙醇體積分數(shù)對黃芪多糖得率具有顯著影響。根據(jù)實際操作、溶液制備的難易程度(如濃縮時間、成分影響等)及料液比成本綜合考慮,最終選擇液料比為20∶1(V/m)。可得因素與水平的最佳組合為A2B2C1D2,即高壓破碎提取黃芪多糖的最佳工藝參數(shù)為藥材粒度80目,破碎提取壓力125 MPa,液料比20∶1(V/m)用水提取2次。取3批藥材,按最佳工藝參數(shù)進行驗證,結果3批藥材中多糖平均得率為9.41%,RSD為0.98%,表明該工藝穩(wěn)定可行,可用于黃芪多糖的提取。

A.藥材粒度B.破碎提取壓力C.乙醇體積分數(shù)D.液料比E.提取次數(shù)圖1 黃芪多糖單因素試驗A.Particle size of medicinal materials B.Pressure of crushing extraction C.Volume fraction of ethanol D.Liquid-solid ratio E.Extraction timesFig.1 Single factor test of APS

表2 L9(34)正交試驗設計與結果Tab.2 Design and results of the L9(34)orthogonal test

表3 方差分析結果Tab.3 Results of ANOVA

2.5 多糖體外抗氧化活性研究

2.5.1 DPPH自由基清除率[13-14]

溶液制備:取干燥至恒重的采用最優(yōu)提取工藝提取的黃芪多糖0.5 g,精密稱定,置100 mL容量瓶中,加水定容,搖勻,配制成質(zhì)量濃度為5 mg/mL的供試品溶液。取上述供試品溶液,加水稀釋成質(zhì)量濃度分別為0.25,0.50,0.75,1.00,1.25,1.50 mg/mL的系列黃芪多糖待測溶液。同法制備系列陽性對照維生素C溶液。取DPPH標準品20 mg,精密稱定,配制成質(zhì)量濃度為0.04 mg/mL的DPPH無水乙醇溶液500 mL,充分振搖,4℃下避光保存,備用。

活性測定:分別取不同質(zhì)量濃度的黃芪多糖待測溶液和維生素C溶液與DPPH無水乙醇溶液,各2 mL,充分混勻,避光靜置反應30 min,于517 nm波長下測定吸光度(A),平行測定3次,取平均值。按以下公式計算,DPPH自由基清除率(%)=[1-(A1-A2)/A0]×100%。式中,空白組(A0)2 mL無水乙醇+2 mL DPPH無水乙醇溶液;樣品組(A1)2 mL待測溶液+2 mL DPPH無水乙醇溶液;本底組(A2)2 mL待測溶液+2 mL無水乙醇溶液。結果見圖2 A。

A.DPPH自由基B.ABTS自由基圖2 黃芪多糖對DPPH和ABTS自由基清除率的影響A.DPPH free radical B.ABTS free radicalFig.2 Effect of APS on the scavenging rates for DPPH and ABTS free radicals

測定結果:由圖2 A可知,DPPH自由基清除率隨黃芪多糖質(zhì)量濃度的增加而逐漸升高。以質(zhì)量濃度(X,mg/mL)為橫坐標、清除率(Y)為縱坐標繪制標準曲線,得回歸方程Y=10.148X+13.719(R2=0.986 4)。采用GraphPad Prism 8.0軟件計算得DPPH自由基清除率為50%時,黃芪多糖質(zhì)量濃度為1.131 mg/mL。

2.5.2 ABTS自由基清除率

溶液制備:參照2.5.1項下方法配制不同質(zhì)量濃度的黃芪多糖溶液和維生素C溶液。參考文獻[15-18],并作適當調(diào)整以制備ABTS貯備液,取ABTS標準品193.3 mg和K2S2O8粉末34.5 mg,精密稱定,制成濃度為7 mmol/L的ABTS溶液和7.35 mmol/L的K2S2O8溶液各100 mL,混勻,室溫下避光反應16 h,備用。使用前用蒸餾水稀釋,于734 nm波長處測定吸光度為0.70±0.05。

活性測定:分別取不同質(zhì)量濃度的黃芪多糖溶液和維生素C溶液1 mL及ABTS貯備液2 mL,充分混勻,避光靜置反應10 min,于734 nm波長下測定吸光度,平行測定3次,取平均值。按以下公式計算,ABTS自由基清除率(%)=[1-(A1/A0)]×100%。式中,空白組(A0)1 mL蒸餾水+2 mL ABTS貯備液;樣品組(A1)1 mL待測溶液+2 mL ABTS貯備液。結果見圖2 B。

測定結果:由圖2 B可知,ABTS自由基清除率隨黃芪多糖質(zhì)量濃度的增加而逐漸升高。以質(zhì)量濃度(X,mg/mL)為橫坐標、清除率(Y)為縱坐標繪制標準曲線,得回歸方程Y=9.215 3X+9.765 3(R2=0.986 1)。采用GraphPad Prism 8.0軟件計算得ABTS自由基清除率為50%時黃芪多糖質(zhì)量濃度為1.037 mg/mL。

3 討論

高壓破碎提取技術是在低溫或常溫條件下,利用高壓作用使細胞瞬間破碎并膨脹,細胞內(nèi)的成分與提取溶劑充分接觸、溶解、分散,從而提高有效成分的得率,并避免有效成分的降解[19-20]。本研究中以高壓破碎技術提取黃芪多糖,結果表明方法穩(wěn)定可行。

本研究中通過對自由基的清除能力評價黃芪多糖的體外抗氧化活性,選擇了2種常用的體外抗氧化活性測定方法,均根據(jù)吸光度的降幅程度評價黃芪多糖的抗氧化能力。DPPH·在有機溶劑中是一種穩(wěn)定的有機自由基,其醇溶液呈深紫色,當存在抗氧化劑時,DPPH·與抗氧化劑發(fā)生反應,于517 nm波長處最大吸收峰的吸光度值下降,且下降程度呈線性關系[21]。ABTS是一種化學性自由基引發(fā)劑,ABTS被氧化后可生成穩(wěn)定的藍綠色陽離子自由基ABTS+·,與抗氧化劑反應時,生成無色的ABTS,于734 nm波長處最大吸收峰的吸光度值減?。?2]。本研究中采用DPPH法和ABTS法測定的體外抗氧化活性結果基本一致,表明采用高壓破碎提取的黃芪多糖具有一定的體外抗氧化活性,但與維生素C相比偏弱。

目前,關于黃芪多糖的提取方法有熱水浸提法、酶提取法、微波輔助提取法、超聲波輔助提取法、超高壓提取等,其中超高壓技術提取法與本方法類似。超高壓提取技術是在常溫下用100~1 000 MPa的流體靜壓力作用于料液上,保壓一段時間,然后迅速卸壓,使細胞內(nèi)外滲透壓力差突然增大,破壞細胞的各種膜,達到提取目的[23-24]。相比于超高壓提取技術,高壓破碎提取技術無需浸泡保壓,對儀器設備的耐壓要求較低,該工藝解決了現(xiàn)有工藝存在的一些問題[25-26]。

本研究中采用L9(34)正交試驗優(yōu)化了黃芪多糖的高壓破碎提取工藝的提取條件,最優(yōu)提取工藝為藥材粉碎至80目,提取壓力為125 MPa,溶劑為水,液料比20∶1(V/m),提取2次,多糖得率平均為9.41%。體外抗氧化活性試驗表明,黃芪多糖對DPPH自由基和ABTS自由基均有一定的清除能力。本研究中建立的方法具有參數(shù)更簡單、更經(jīng)濟合理等優(yōu)勢,為黃芪多糖的開發(fā)與利用開辟了新途徑。

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