郭鴻儒 宮田嬌 張春楊 孫繼紅 王 茹 楊淑芳
(吉林省蠶業(yè)科學(xué)研究院,吉林吉林 132012)
蛹蟲(chóng)草是我國(guó)重要的人工栽培食藥用真菌之一,因其豐富的營(yíng)養(yǎng)藥用價(jià)值而被聯(lián)合國(guó)糧農(nóng)組織譽(yù)為“21世紀(jì)的健康食品”[1-2]。目前國(guó)內(nèi)外對(duì)蛹蟲(chóng)草的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值與功效的研究主要聚焦在多糖、蟲(chóng)草素、萜類等方面[3-5],隨著多層次多樣蛹蟲(chóng)草價(jià)值的探索,食藥用真菌中活性肽的研究備受矚目,對(duì)深度研發(fā)、蛋白質(zhì)資源高效利用具有重要意義[6-7]。研究表明,以蛹蟲(chóng)草納米粉為基質(zhì),利用地衣芽孢桿菌發(fā)酵制備的蛹蟲(chóng)草肽是一類具有抗氧化、增強(qiáng)免疫功能以及降血糖作用的小分子生物無(wú)活性物質(zhì),是蛹蟲(chóng)草深加工的產(chǎn)物,可廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥等行業(yè)[8-9]。然而,直接口服生物活性肽極易被生物體內(nèi)的酶分解,其生物活性也隨之消失,使其在醫(yī)藥保健和疾病預(yù)防領(lǐng)域受到很大程度的限制,嚴(yán)重阻礙蛹蟲(chóng)草活性肽的市場(chǎng)研發(fā)[10]。針對(duì)以上問(wèn)題,本研究采用高分子包埋技術(shù)制備蛹蟲(chóng)草肽靶向微囊,不僅可使蛹蟲(chóng)草肽進(jìn)入到人體后在一定的時(shí)間內(nèi)釋放,達(dá)到對(duì)活性肽劑量的有效控制,還可實(shí)現(xiàn)藥物的靶向輸送,達(dá)到緩釋/控釋目的。試驗(yàn)選取天然明膠、半合成材料乙基纖維素及高分子聚合材料聚乳酸,通過(guò)篩選不同囊材制備蛹蟲(chóng)草肽微囊及對(duì)其結(jié)構(gòu)進(jìn)行表征,考察微囊制劑的釋放度和降解性,優(yōu)化工藝條件使其成為理想的靶向劑,為蛹蟲(chóng)草的深加工提供必要的理論及實(shí)踐指導(dǎo),也為蟲(chóng)草肽類制劑通過(guò)口服途徑應(yīng)用于食品、保健養(yǎng)生等領(lǐng)域提供理論依據(jù)。
蛹蟲(chóng)草:由吉林省蠶業(yè)科學(xué)研究院北冬蟲(chóng)夏草研究中心提供。
地衣芽孢桿菌(Bacilluslicheniformis)E-30,沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué)酶工程實(shí)驗(yàn)室保藏菌種。
聚乳酸(PLA)、聚乙烯醇(PVA)、明膠、司盤80、二氯甲烷(DCM)、乙醇(國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司);氫氧化鈉、鹽酸、氯化鈉、牛肉膏、蛋白胨、酵母浸提粉。以上試劑均為分析純。
2.1.1 納米級(jí)蛹蟲(chóng)草的制備
以蛹蟲(chóng)草子實(shí)體為原料,高能納米沖擊磨為試驗(yàn)設(shè)備,研磨時(shí)間為5 h,粒徑為0.606 μm,由吉林省蠶業(yè)科學(xué)研究院制得納米級(jí)蛹蟲(chóng)草。
2.1.2 地衣芽孢桿菌的活化
菌液由地衣芽孢桿菌(BacilusLicheniformis)和無(wú)菌水組成。已滅菌完成的白金環(huán)蘸取少許配置好的菌液,在固體培養(yǎng)基上以劃線法劃線后密封,置于恒溫培養(yǎng)箱中,調(diào)節(jié)溫度至37℃倒扣活化1 d。
2.1.3 蛹蟲(chóng)草液體培養(yǎng)基的配制
取2.5%納米級(jí)蛹蟲(chóng)草粉末,逐一添加到6個(gè)250 mL三角瓶中,以1%葡萄糖作為碳源和能源,再分別加入100 mL無(wú)菌水和少量滅菌后的攪拌玻璃珠均勻攪拌1 min,高壓滅菌25 min,待冷卻至室溫后,即為制成的蛹蟲(chóng)草液體培養(yǎng)基。
2.1.4 納米蛹蟲(chóng)草活性肽的制備
挑取3%接種量的菌至三角瓶液體培養(yǎng)基中,均勻攪拌,35 ℃,150 r/min條件下位于搖床中搖3 d,制備蛹蟲(chóng)草發(fā)酵液。再將發(fā)酵液于3 500 r/min離心10 min,超濾(N2,0.15 pa),收集5 000 Da下的溶液,真空冷凍干燥,即得納米蛹蟲(chóng)草活性肽,以下簡(jiǎn)稱蛹蟲(chóng)草肽。
2.1.5 蛹蟲(chóng)草肽明膠微囊的制備
取輕質(zhì)液體石蠟15 mL,加入司盤80乳化劑150 μL(質(zhì)量分?jǐn)?shù)1%),即為油相。精準(zhǔn)稱取1 g明膠,加入5 mL蒸餾水,60 ℃水浴加熱,制得質(zhì)量分?jǐn)?shù)為20%的明膠溶液,即為水相。油相∶水相的比例為3∶1。水相需在50 ℃水浴加熱攪拌,滴加于油相中,乳化10 min后,改為冰浴。1 h后,滴加0.3 mL甲醛交聯(lián)固化,復(fù)攪拌1 h,轉(zhuǎn)移至小燒杯中4 ℃以下,固化1 d,最后采用適量異丙醇脫水,制得明膠固化球,先用乙醇再用石油醚洗滌兩至三次,1 600 r/min離心3 min,真空冷凍干燥。即為干燥的明膠微囊。
包封率及載藥率的計(jì)算:
取微囊4 mg加到5 mL容量瓶中,蒸餾水定容,在波長(zhǎng)560 nm下,采用可見(jiàn)分光光度法測(cè)定吸光度并記錄,根據(jù)考馬斯亮藍(lán)法制備標(biāo)準(zhǔn)曲線及檢測(cè)肽含量。
包封率=(微囊中蟲(chóng)草肽含量/投入肽量)×100%
載藥率=(藥物的質(zhì)量/明膠藥物微囊的質(zhì)量)×100%
2.1.6 蛹蟲(chóng)草肽乙基纖維素微囊的制備
將0.5 g乙基纖維素(壁材)與0.25 g蛹蟲(chóng)草活性肽(芯材)溶于50 mL純水備用,將30 mL無(wú)水乙醇以2 mL/min的速率滴加到備液中,并以150 r/min的速率行攪拌,過(guò)濾懸浮液、25 ℃干燥,制得芯材/壁材分別為1:2的白色粉末狀活性肽微囊。
1)活性肽包封率測(cè)定:將制備得到的微囊懸浮液離心分離后,在286 nm波長(zhǎng)下測(cè)量上清液的吸光度,并通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線得到上清液中活性肽的含量。
活性肽包封率=1-懸浮液中游離活性肽/活性肽總量
2)載藥率測(cè)定:稱取一定量樣品于干燥的試管中,加入10 mL無(wú)水乙醇,25 ℃下浸提20 min,于286 nm處測(cè)定浸提液中的吸光值,每個(gè)樣品平行測(cè)定3 次,取平均值。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算浸提液中的活性肽含量,即為包裏在微囊中的活性肽,從而計(jì)算出載藥率。
載藥率=微囊中活性肽質(zhì)量/微囊質(zhì)量。
2.1.7 蛹蟲(chóng)草活性肽聚乳酸(PLA)微囊的制備
將活性肽溶液加入一定濃度的PLA二氯甲烷溶液中,冰浴降溫,在超聲波的作用下乳化成白色乳狀液后,立即滴入聚乙二醇外水相溶液中分散,并用磁力攪拌器在25 ℃下攪拌3 h,二氯甲烷完全揮發(fā)后,載藥微囊分散液以5 000 r/min離心10 min,保留上清,沉淀下的微囊以去離子水沖洗3次,最后得到的微囊真空干燥,4 ℃貯藏。
聚乳酸微囊包封率的測(cè)定:
其中,A總為加入的活性肽總量,A游為上清中的活性肽含量。
2.2.1 微囊的體外釋藥實(shí)驗(yàn)方法
采取動(dòng)態(tài)膜透析法,將微囊倒入透析袋中,并加入10 mL PBS緩沖溶液,將透析袋系緊后放入盛有190 mL PBS緩沖溶液的燒杯中,25 ℃磁力攪拌。定時(shí)取出1 mL溶液,利用福林酚法測(cè)定多肽含量,并加入1 mL新鮮釋放介質(zhì)。
2.2.2 蛹蟲(chóng)草肽聚乳酸微囊胃內(nèi)微環(huán)境降解過(guò)程體外模擬實(shí)驗(yàn)方法
1)人工胃液配制:取1 mol/L鹽酸16.4 mL,加水約800 mL及胃蛋白酶10 g,攪勻后加水定容至1 000 mL即可。
2)體外模擬實(shí)驗(yàn):采用動(dòng)態(tài)膜透析法,取0.5 g微囊分別裝于含有上述模擬胃液的透析袋中,磁力攪拌器上低速攪拌,胃液4 h后將微囊取出正置顯微鏡下觀察,腸液24 h后觀察。
2.2.3 蛹蟲(chóng)草肽聚乳酸微囊腸道內(nèi)微環(huán)境降解過(guò)程體外模擬實(shí)驗(yàn)方法
1)人工腸液配制:取磷酸二氫鉀6.8 g加水500 mL。用0.4%的氫氧化鈉溶液調(diào)節(jié)pH至6.8;另取胰酶10 g加水適量使溶解,將兩液混合后,加水定容至1 000 mL即可。
自1932年但采爾回德國(guó)至蔡元培病逝的8年間,兩人雖未曾再謀面,但一直保持著頻繁的書(shū)信交流,但采爾也成為蔡元培交往時(shí)間最長(zhǎng)、感情最深的一名外國(guó)學(xué)者。
2)采用動(dòng)態(tài)膜透析法,取0.5 g微囊分別裝于含有上述模擬腸液的透析袋中,磁力攪拌器上低速攪拌,在模擬腸液中反應(yīng)24 h將微囊取出正置顯微鏡下觀察。
2.2.4 微囊的外部形態(tài)特征的觀察方法
采用光學(xué)顯微鏡觀察所制微囊懸浮液的整體形狀及微囊的形態(tài),將所制微囊懸浮液滴1滴到載玻片上,進(jìn)行檢測(cè);采用Quanta 250型的掃描電鏡觀察微囊的表面形貌; 取少量微囊樣本,加入蒸餾水,超生震蕩使其粒子分散,再取少量樣品溶液置于銅托上,用紅外燈照射干燥,再進(jìn)行樣品檢測(cè)。
2.2.5 紅外光譜測(cè)試方法
在檢測(cè)樣品制備中,首先稱取適量溴化鉀以紅外燈105 ℃干燥3 h,備用。以空氣為參比,用溴化鉀壓片成空白片。取0.3 mg樣品,復(fù)用紅外燈105 ℃干燥3 h,加入溴化鉀100 mg,在研缽中充分研磨,用壓片機(jī)壓制成片狀。掃描范圍在4 000-500 cm-1。
2.2.6 蛹蟲(chóng)草肽微囊穩(wěn)定性試驗(yàn)
1)3種微囊的儲(chǔ)存穩(wěn)定性試驗(yàn):將各種微囊放置于冷藏條件下(4 ℃)6個(gè)月后,各取100 mg檢測(cè)肽含量減損情況。
2)蛹蟲(chóng)草活性肽微囊在人工胃液中穩(wěn)定性試驗(yàn):分別取100 mg 3種蛹蟲(chóng)草肽微囊并各自加入10 mL 人工胃液 (按2005年版中國(guó)藥典配制)中,置37 ℃,120 r/min恒溫振蕩培養(yǎng)箱中于規(guī)定時(shí)間取出,10 000 ×g 離心,檢測(cè)上清液及微囊中肽含量。同時(shí)以未處理的微囊為對(duì)照并設(shè)置其肽含量為100%。
2.2.7 三種微囊細(xì)胞毒性測(cè)定試驗(yàn)
在96孔板中,每孔接種200 μL細(xì)胞懸液。設(shè)置空白組(無(wú)細(xì)胞),對(duì)照組(有細(xì)胞)和試驗(yàn)組(有細(xì)胞),每組設(shè)3~5個(gè)復(fù)孔,在37 ℃的 CO2的培養(yǎng)箱中孵育過(guò)夜。次日吸棄培養(yǎng)液,加入200 μL各微囊,相應(yīng)質(zhì)量濃度設(shè)置1 mg·mL-1、2 mg·mL-1、3 mg·mL-1、4 mg·mL-1的無(wú)酚紅DMEM完全培養(yǎng)液。在2 d后取出96孔板,每孔吸剔100 μL培養(yǎng)液,同時(shí)加入10 μL MTT(5mg·mL-1),37 ℃孵育4 h,吸掉上清,每孔加入100 μL DMSO,震蕩混勻至沉淀完全溶解,用酶標(biāo)儀在570 nm測(cè)定各孔的吸光值。
3.1.1 明膠膠囊的形態(tài)觀察及性能測(cè)試
如圖1A所示,在顯微鏡下明膠微囊光鏡檢測(cè)為純白色。從圖1B電鏡檢測(cè)所示微囊表面平滑,微囊中央部位不透光,但黑色囊心物,邊緣處呈半透光。實(shí)驗(yàn)條件下包封率為50.84%,載藥量為23%。
1A 明膠微囊的光鏡檢測(cè) 1B 明膠微囊的掃面電鏡檢測(cè) 1C 明膠微囊紅外光譜檢測(cè)圖1 蛹蟲(chóng)草肽的明膠微囊
3.1.2 明膠微囊的釋藥性能
采用2.2.1的方法,發(fā)現(xiàn)明膠微囊在48 h內(nèi)累積釋藥量可達(dá)到48%。
3.2.1 乙基纖維素膠囊的形態(tài)觀察及性能測(cè)試
如圖2B所示,乙基纖維素膠囊呈表面光滑、分散均勻的球形粒子(粒徑大約為200 nm~1 μm),少量微囊有黑色囊心。如圖2C所示,2 965 cm-1與2 884 cm-1這兩處的吸收峰均為乙基纖維素-CH鍵的伸縮振動(dòng)特征峰,表明包埋成功。在該試驗(yàn)條件下,包封率為83%,載藥量為21%。
2A 乙基纖維素膠囊的光鏡檢測(cè) 2B 乙基纖維素膠囊的掃描電鏡 2C 乙基纖維素膠囊的紅外光譜圖2 蛹蟲(chóng)草肽的乙基纖維素微囊
3.2.2 乙基纖維素微囊的釋藥性能
采用2.2.1的方法,發(fā)現(xiàn)乙基纖維素微囊釋藥量變化在36 h內(nèi)釋藥率達(dá)到28%,然而隨即開(kāi)始下降至48 h的20%。
3.3.1 聚乳酸微囊的形態(tài)觀察及包封率和載藥量檢測(cè)
如圖3中所示,復(fù)相乳液法制備的蛹蟲(chóng)草肽聚乳酸微囊凍干粉呈白色,在顯微鏡下為球狀,無(wú)黑色囊心。在該試驗(yàn)條件下,包封率為79.2%,成球率為86.90%,載藥量為58%。
3A 聚乳酸微囊凍干粉 3B聚乳酸微囊顯微鏡觀察 3C 聚乳酸微囊的掃描電鏡觀察圖3 蛹蟲(chóng)草肽的聚乳酸微囊
3.3.2 聚乳酸微囊的釋藥性能
采用2.2.1的方法,發(fā)現(xiàn)聚乳酸微囊釋藥量在48 h內(nèi)呈遞增趨勢(shì)且最大峰值為67%。圖4為釋藥前聚乳酸微囊,其外表圓潤(rùn)充裕且無(wú)裂縫但釋藥中卻發(fā)現(xiàn)有縫隙出現(xiàn)。藥物釋出一般通過(guò)表面蝕解、整體崩解等方式表達(dá),其緩釋過(guò)程如下圖5所示。
A 釋藥前 B 釋藥過(guò)程中圖4 顯微鏡下蛹蟲(chóng)草肽釋藥聚乳酸微囊體外釋藥狀態(tài)觀察
蛹蟲(chóng)草聚乳酸微囊 表面蝕解 整體崩解的過(guò)程圖5 蛹蟲(chóng)草肽的聚乳酸微囊緩釋過(guò)程
3.3.3 響應(yīng)面法優(yōu)化蛹蟲(chóng)草肽聚乳酸微囊制備工藝
因素水平表,見(jiàn)表1。響應(yīng)面分析參數(shù)見(jiàn)表2,響應(yīng)面圖分析四個(gè)提取因素對(duì)蛹蟲(chóng)草肽包埋率的影響見(jiàn)圖6。
表1 因素水平表
表2 響應(yīng)面分析參數(shù)
圖6 響應(yīng)面圖分析四個(gè)提取因素對(duì)蛹蟲(chóng)草肽包埋率的影響
方差分析表明:決定系數(shù)(R2=0.9328),僅有0.7%的總變量在模型中沒(méi)能解釋,矯正決定系數(shù)(Adj.R2=0.8658)說(shuō)明模型有1.35%的變異,能夠比較真實(shí)地反應(yīng)試驗(yàn)結(jié)果。變異系數(shù)值(C.V.%)僅為1.84,更加清晰的證明實(shí)驗(yàn)值的高度精確和可靠??梢圆捎没貧w模型對(duì)響應(yīng)值進(jìn)行預(yù)測(cè)。
利用Design Expert對(duì)上表的數(shù)據(jù)進(jìn)行二次多項(xiàng)式擬合,建立蛹蟲(chóng)草肽包封率與PLA質(zhì)量分?jǐn)?shù)(A)、PVA質(zhì)量分?jǐn)?shù)(B)、溫度(C)油水比(D)的回歸方程為:
包封率(%)=84.76+4.91A+8.03B+5.64C+1.15D-5.92AB-4.18AC-2.13AD+4.00BC-3.27BD+1.45CD-6.94A2-5.88B2-9.67C2-2.88D2。
該模型的F值為13.88,相對(duì)于的P值小于0.000 1,說(shuō)明該模型極顯著,同時(shí)失擬項(xiàng)P值為0.253 5 >0.05,失擬不顯著,說(shuō)明所選用的二次回歸模型是合適的,并且各因素對(duì)包封率影響程度大小依次是PVA質(zhì)量分?jǐn)?shù)>溫度>PLA質(zhì)量分?jǐn)?shù)>油水比。
由該模型得到的最佳條件為包封率87.2%,PVA質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3.56%,溫度為40.8℃,PLA質(zhì)量分?jǐn)?shù)為8.11%,油水比為1∶8。在此條件下重復(fù)進(jìn)行3次試驗(yàn),得到包封率為87.2%±0.02%,進(jìn)一步證明該模型合理。
PLA微囊的掃描電鏡結(jié)果如圖7所示,不難看出聚乳酸微囊錯(cuò)落有致地均勻分布在掃面電鏡下,平均粒徑為50.4 μm。
圖7 PLA 微囊的掃描電鏡結(jié)果
從圖8A中可判斷出甲基的伸縮振動(dòng)峰和彎曲振動(dòng)分別發(fā)生在2 948 cm-1和1 458 cm-1,該紅外數(shù)據(jù)說(shuō)明成功制備了聚乳酸微囊,且在制備過(guò)程中未發(fā)生其他化學(xué)變化。從掃描電鏡的結(jié)果圖8B可以看出,聚乳酸微囊外形橢圓,表面光滑,包封率良好,符合微囊要求。
8A聚乳酸微囊的紅外光譜圖
8B 聚乳酸微囊的掃描電鏡圖圖8 蛹蟲(chóng)草肽聚乳酸微囊紅外光譜及掃描電鏡圖
3T3-L1脂肪細(xì)胞是否分化完全主要從細(xì)胞形態(tài)與油紅O染色兩個(gè)方面來(lái)進(jìn)行觀察。如圖9A所示,未分化的3T3-L1前脂肪呈現(xiàn)為纖維狀、不規(guī)則梭型,用油紅O染色后發(fā)現(xiàn)細(xì)胞內(nèi)沒(méi)有脂肪滴。隨著誘導(dǎo)時(shí)間的增加,在12 d時(shí),細(xì)胞逐漸變?yōu)闄E圓,在倒置顯微鏡下可以觀察到,大約90%以上的細(xì)胞均誘導(dǎo)成為脂肪細(xì)胞(圖9B),3T3-L1脂肪細(xì)胞胰島素抵抗模型穩(wěn)定性試驗(yàn)顯示, 在48 h后加入1 mmol/L的DEX和3 mmol/L的DEX胰島素均出現(xiàn)了較為明顯的變化。由圖9C可以看出,在40 h后3 mmol/L的DEX胰島素抵抗效果要優(yōu)于1 mmol/L的DEX抵抗效果,可以用于構(gòu)建胰島素抵抗模型并進(jìn)行下一步試驗(yàn)。
9A 未分化的脂肪細(xì)胞 9B 分化12 d的脂肪細(xì)胞 9C 胰島素抵抗模型的建立圖9 建立3T3-L1脂肪細(xì)胞胰島素抵抗模型
本研究采用包埋好的3種蛹蟲(chóng)草肽微囊,利用3T3-L1脂肪細(xì)胞胰島素抵抗模型進(jìn)行降血糖活性檢測(cè)試驗(yàn),試驗(yàn)結(jié)果見(jiàn)圖10。圖中顯示,對(duì)照組與正常組比較,葡萄糖消耗量下降極顯著,陽(yáng)性組對(duì)葡萄糖的利用率顯著提高。但乙基纖維素微囊組對(duì)葡萄糖的利用率與對(duì)照組差異不顯著,明膠微囊組與對(duì)照組相比,差異稍顯著,而聚乳酸微囊組與對(duì)照組比較,差異極顯著。以上結(jié)果說(shuō)明3種處理中,聚乳酸微囊制備過(guò)程中對(duì)蛹蟲(chóng)草肽活性具有保護(hù)作用,而其他2種處理由于化學(xué)試劑的使用可能降低了蛹蟲(chóng)草肽活性。
圖10 蛹蟲(chóng)草肽細(xì)胞水平上的體外降血糖活性檢測(cè)
3.7.1 3種微囊的儲(chǔ)存穩(wěn)定性
將各種微囊放置于冷藏條件下(4 ℃)6個(gè)月后,各取100 mg檢測(cè)肽含量減損,各種微囊肽含量未發(fā)生流失,說(shuō)明冷藏條件下各種活性肽微囊很穩(wěn)定。
3.7.2 蛹蟲(chóng)草活性肽微囊在人工胃液中的穩(wěn)定性
采用2.2.6中的方法,發(fā)現(xiàn)將各微囊制劑置于人工胃液3 h后,聚乳酸微囊的肽含量為100%,乙基纖維素微囊的肽含量為75%,明膠微囊含量為70%。可見(jiàn),聚乳酸微囊具有較好的抗胃酸及胃蛋白酶穩(wěn)定性。
細(xì)胞毒性檢測(cè)結(jié)果如圖11所示。左圖為24 h各樣品的處理結(jié)果,其中1、2、3、4 為乙基纖維素微囊在4個(gè)不同質(zhì)量濃度下對(duì)細(xì)胞毒性的影響,5、6、7、8為聚乳酸微囊在4個(gè)不同質(zhì)量濃度下對(duì)細(xì)胞毒性的影響,9、10、11、12 為明膠微囊在4個(gè)不同質(zhì)量濃度下對(duì)細(xì)胞毒性的影響。從左圖結(jié)果可以看出,在乙基纖維素及明膠微囊制劑作用下,細(xì)胞生存能力與對(duì)照組不存在顯著差異,說(shuō)明二者不抑制細(xì)胞生長(zhǎng),無(wú)細(xì)胞毒性,而聚乳酸微囊肽處理則對(duì)細(xì)胞生長(zhǎng)能力略有促進(jìn)(P<0.01),推測(cè)與聚乳酸微囊載藥量較大及釋放量較高有關(guān)。右圖為48 h各樣品的處理結(jié)果,顯示各處理與對(duì)照相比較其細(xì)胞生存能力無(wú)明顯差異??梢?jiàn),各種微囊對(duì)細(xì)胞無(wú)毒性。
圖11 MTT細(xì)胞毒性檢測(cè)結(jié)果
本研究分別以藥用明膠、乙基纖維素及聚乳酸為囊材制備蛹蟲(chóng)草肽微囊,并對(duì)其性能及生物學(xué)效應(yīng)進(jìn)行了檢測(cè)。研究結(jié)果表明,從包封率、載藥量及48 h的釋藥量三個(gè)主要指標(biāo)比較,聚乳酸微囊的性能最優(yōu)。
本項(xiàng)研究在篩選了載肽微囊不同囊材的基礎(chǔ)上,獲得且優(yōu)化了蛹蟲(chóng)草肽聚乳酸微囊的制備工藝。由該模型得到的最佳條件為包封率87.2%,PVA質(zhì)量分?jǐn)?shù)為3.56%,溫度為40.8 ℃,PLA質(zhì)量分?jǐn)?shù)為8.11%,油水比為1:8。在此條件下重復(fù)進(jìn)行3次試驗(yàn),得到包封率為87.2%±0.02%。
在此工藝條件下,蛹蟲(chóng)草肽聚乳酸微囊具備如下性能。一是靶向性。體外釋藥過(guò)程研究表明,在含有胃蛋白酶的酸性環(huán)境中,聚乳酸微囊未被水解,而在含有胰蛋白酶的堿性環(huán)境中,聚乳酸微囊裂解并釋放蛹蟲(chóng)草肽,證明聚乳酸微囊具有明顯的靶向性。二是控釋性。聚乳酸微囊作為藥物載體具有良好的緩控釋性能。蛹蟲(chóng)草肽微囊穩(wěn)定性研究的結(jié)果,冷藏條件下各種蛹蟲(chóng)草肽微囊很穩(wěn)定;蛹蟲(chóng)草肽微囊在人工胃液中穩(wěn)定性,聚乳酸微囊具有較好的的抗胃酸及胃蛋白酶穩(wěn)定性。
本研究以明膠、乙基纖維素、聚乳酸(PLA)為囊材制備的3種納米蛹蟲(chóng)草活性肽微囊經(jīng)試驗(yàn)驗(yàn)證,對(duì)細(xì)胞無(wú)毒性。