劉龍龍,羅 鳴,陳傅曉,劉金葉
(1.海南熱帶海洋學(xué)院,熱帶海洋生物資源利用與保護(hù)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,三亞 572022;2.海南省海洋與漁業(yè)科學(xué)院,海口 571126)
鹽度是影響魚類生長(zhǎng)、發(fā)育和繁殖的重要環(huán)境因子[1]。廣鹽性硬骨魚可以通過(guò)有效的滲透壓調(diào)節(jié)維持體內(nèi)內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定,以適應(yīng)生活環(huán)境中鹽度的改變[2]。魚類的滲透壓調(diào)節(jié)作用是由一系列器官協(xié)同完成的,包括鰓、腸和腎[3]。鰓是魚類主要的滲透壓調(diào)節(jié)器官,位于鰓上皮富含線粒體的泌氯細(xì)胞是負(fù)責(zé)離子吸收和分泌的主要場(chǎng)所[4]。Na+/K+-ATPase是一種跨膜蛋白,是維持Na+和K+梯度的關(guān)鍵轉(zhuǎn)運(yùn)酶,在離子交換和滲透壓調(diào)節(jié)中起著至關(guān)重要的作用[5]。Na+/K+-ATPase由兩個(gè)亞基(α和β)組成,它們非共價(jià)配對(duì)形成αβ-異源二聚體。在硬骨魚中發(fā)現(xiàn)了3種α亞型(α1、α2和α3)和4種β亞型(β1、β2、β3、β4)[6-7],Na+/K+-ATPase活性不僅受物種不同和棲息地環(huán)境差異的影響,還受到α、β亞型組成比例轉(zhuǎn)換調(diào)節(jié)的影響[8],關(guān)于不同的α及β亞型對(duì)Na+/K+-ATPase活性的影響在不同硬骨魚研究中存在爭(zhēng)議[3]。
棕點(diǎn)石斑魚(Epinephelus fuscoguttatus)又稱為褐點(diǎn)石斑魚,俗稱老虎斑,隸屬硬骨魚綱(Osteichthyes),鱸形目(Perciformes),鱸亞目(Percoidei),鮨 科(Serranidae),石斑魚亞科(Epinephelinae),石斑魚屬。由于其肉味鮮美、生長(zhǎng)快、市場(chǎng)潛力大,養(yǎng)殖前景較好,近年來(lái)已經(jīng)成為福建、廣東、海南等地海水養(yǎng)殖的重要名優(yōu)品種。棕點(diǎn)石斑魚對(duì)鹽度耐受范圍大,在鹽度11‰~41‰水域都能生存,因此在不同鹽度水域都開展了養(yǎng)殖[9]。對(duì)棕點(diǎn)石斑魚的現(xiàn)有研究主要集中在生長(zhǎng)繁育[10]、飼料營(yíng)養(yǎng)[11-14]、養(yǎng)殖技術(shù)[15-16]、病害防治[17-18]等方面,關(guān)于鹽度對(duì)棕點(diǎn)石斑魚影響的研究相對(duì)較少,主要涉及鹽度的耐受性[9]、在鹽度22‰~28‰范圍內(nèi)生長(zhǎng)情況[19]及在不同鹽度下血清皮質(zhì)醇水平及存活率[20],關(guān)于低鹽環(huán)境下棕點(diǎn)石斑魚滲透壓調(diào)節(jié)機(jī)制尚未見報(bào)道。本研究通過(guò)測(cè)定棕點(diǎn)石斑魚在低鹽條件下血清滲透壓及離子水平、鰓Na+/K+-ATPase活性及相關(guān)基因表達(dá)、鰓組織學(xué)、耗氧率的影響,探討其在低鹽環(huán)境下的滲透壓調(diào)節(jié)機(jī)制,以期為棕點(diǎn)石斑魚在不同鹽度水體中養(yǎng)殖研究提供參考。
實(shí)驗(yàn)用棕點(diǎn)石斑魚幼魚在海南省海洋與漁業(yè)科學(xué)院瓊??蒲谢胤趸B(yǎng)殖,試驗(yàn)魚幼魚體質(zhì)量(56.8±3.5)g。暫養(yǎng)在體積為800 L的玻璃鋼圓筒內(nèi),養(yǎng)殖期間水溫(27.5±0.5)℃、養(yǎng)殖水體pH(8.0±0.1)、鹽度(32±1)‰,實(shí)驗(yàn)期間連續(xù)充氣,每天投喂人工配合飼料1次,投料1 h后吸凈養(yǎng)殖容器底部殘餌并接近全量換水。
1.2.1 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
實(shí)驗(yàn)在瓊??蒲谢厥覂?nèi)進(jìn)行,養(yǎng)殖容器與暫養(yǎng)期間一致,不同處理鹽度海水采用過(guò)濾后自來(lái)水稀釋自然海水配制而成。實(shí)驗(yàn)設(shè)置鹽度6‰、12‰、24‰、32‰ 4個(gè)梯度,每個(gè)梯度設(shè)3個(gè)重復(fù),每個(gè)重復(fù)10尾魚,實(shí)驗(yàn)時(shí)將棕點(diǎn)石斑魚從自然海水(鹽度32‰)直接轉(zhuǎn)移到調(diào)整好的鹽度為6‰、12‰、24‰、32‰(對(duì)照)圓桶中。根據(jù)前期研究,與棕點(diǎn)石斑魚幼魚適應(yīng)養(yǎng)殖環(huán)境鹽度變化相關(guān)的組織結(jié)構(gòu)、生化和生理反應(yīng)預(yù)計(jì)在遷移到新的鹽度條件后的10 d內(nèi)已經(jīng)發(fā)生[21-22],故實(shí)驗(yàn)共進(jìn)行10 d。在實(shí)驗(yàn)結(jié)束后測(cè)定耗氧率。每組隨機(jī)抽取3尾魚,用丁香酚麻醉,尾靜脈取血,4℃下靜置分層后,再經(jīng)冷凍離心機(jī)(4℃)6 000 r·min-1離心20 min,取無(wú)溶血血清用于測(cè)量血清滲透壓及離子濃度;同時(shí)取各鹽度組幼魚左側(cè)第二鰓弓上的0.1 g鰓絲經(jīng)生理鹽水潤(rùn)洗后置于2 mL凍存管經(jīng)液氮速凍后轉(zhuǎn)入-80℃冰箱保存,用于測(cè)定鰓 Na+/K+-ATPase活性及NKAα1、NKAβ1b、NKAα2a、NKAα3基因的表達(dá)。另取鹽度6‰、12‰、32‰組幼魚右側(cè)第二鰓弓中間部位腮絲用中性組織固定液(4%多聚甲醛,PB緩沖液)固定,用于鰓絲組織切片觀察;取魚體軀干部肌肉組織,剔除魚骨、魚皮,用紙巾擦凈肌肉上的水和血,用于測(cè)量魚體肌肉含水量。
1.2.2 海水和魚血清滲透壓及離子濃度
實(shí)驗(yàn)魚血清和海水滲透壓采用全自動(dòng)組織滲透壓儀(Osmo210,德國(guó))測(cè)定,血清Na+、Cl-、K+離子濃度采用全自動(dòng)生化分析儀(Chemray 240,中國(guó))測(cè)定。
1.2.3 肌肉含水量的測(cè)定
肌肉含水量的測(cè)定先稱取肌肉組織鮮重,再通過(guò)鼓風(fēng)干燥箱(DHG-9076A,中國(guó))100℃下連續(xù)烘烤48 h后稱取肌肉組織干重,計(jì)算獲得。
1.2.4 鰓Na+/K+-ATPase活性測(cè)定
鰓Na+/K+-ATPase活性采用南京建成生物工程研究所超微量Na+/K+-ATPase試劑盒測(cè)定。稱取實(shí)驗(yàn)魚鰓絲樣品0.1 g加入9倍體積生理鹽水,冰浴條件下勻漿,4℃離心(2 500 r·min-1,10 min),取上清液,按照試劑盒說(shuō)明書方法測(cè)定鰓 Na+/K+-ATPase活 性(超微量 Na+/K+-ATPase試劑盒,南京建成)。
1.2.5 總RNA提取及實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)
用總RNA抽提試劑盒(Invitrogen,美國(guó))根據(jù)Trizol法從鰓組織提取總RNA,用紫外分光光度計(jì)檢測(cè)樣品核酸質(zhì)量,用1.5%變性瓊脂糖膠測(cè)定RNA質(zhì)量和產(chǎn)率。用無(wú)RNA脫氧核糖核酸酶處理RNA(Takara,日本),逆轉(zhuǎn)錄合成cDNA第一鏈作為基因表達(dá)分析模板(Takara,日本)。以β-actin為內(nèi)參基因進(jìn)行棕點(diǎn)石斑魚鰓組織NKAα1、NKAβ1b、NKAα2a、NKAα3基因的實(shí)時(shí)定量RT-PCR測(cè)定(ABI StepOne PULS,美國(guó)),擴(kuò)增體系體積為20 μL,其中包含10 μL的SybrGreen qPCR Master Mix、0.8μL引物(10 μmol· L-1)、7.2μL的無(wú)核酸酶水和2μL的cDNA模板。實(shí)時(shí)定量RT-PCR的反應(yīng)程序如下:95℃3 min,然后95℃5 s,60℃30 s,共45個(gè)循環(huán),在最后一個(gè)PCR循環(huán)結(jié)束時(shí)制作溶解曲線,確認(rèn)產(chǎn)物的特異性。棕點(diǎn)石斑魚NKAα1、NKAβ1b、NKAα2a、NKAα3和內(nèi)參β-actin引物根據(jù)轉(zhuǎn)錄組序列用Primer Premier 5.0設(shè)計(jì)并驗(yàn)證(表1)。用5個(gè)不同稀釋度(每個(gè)稀釋度3個(gè)重復(fù))的cDNA樣品繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,并根據(jù)E=10(-1/slope)-1分析擴(kuò)增效率,確保擴(kuò)增效率在0.9~1.1之間。獲得CT值后代入2-ΔΔCT公式計(jì)算基因的相對(duì)表達(dá)量。
表1 基因NKAα1、NKAβ1b、NKAα2a、NKAα3和內(nèi)參β-actin基因qPCR引物序列Tab.1 Primers of NKAα1、NKAβ1b、NKAα2a、NKAα3 and internal reference geneβ-actin in quantitative PCR
1.2.6 泌氯細(xì)胞數(shù)量和長(zhǎng)徑
將用中性組織固定液固定的鰓組織樣品進(jìn)行酒精梯度脫水、石蠟包埋、切片(厚度4μm)、H.E染色、掃描(Pannoramic MIDI掃描儀,匈牙利)。用CaseViewer圖像分析軟件(3DHISTECH Ltd.)分別統(tǒng)計(jì)鹽度6‰、12‰、32‰組試驗(yàn)魚泌氯細(xì)胞數(shù)量和長(zhǎng)徑。泌氯細(xì)胞的計(jì)數(shù)參考UCHIDA[23]及趙峰等[24]方法,隨機(jī)選取鰓絲(包含鰓小葉基部)和鰓小葉各6個(gè)部位,統(tǒng)計(jì)每100 μm鰓絲或鰓小葉上的泌氯細(xì)胞個(gè)數(shù)。
1.2.7 耗氧率的測(cè)定
測(cè)定前將魚禁食12 h以上確保魚活動(dòng)減少,實(shí)驗(yàn)設(shè)置對(duì)照組用于計(jì)算不放魚時(shí)的耗氧率變化值,將各圓桶水面用透明塑料薄膜覆蓋封閉,分別測(cè)定初始和3 h后溶解氧濃度(In-Situ SMARTROLL MP便攜式多參數(shù)監(jiān)測(cè)儀,美國(guó)),耗氧率的計(jì)算公式為:RO=(Oi-Ot-Ob)V/(m·t),式中,RO為耗氧率[mg·g-1·h-1];Oi、Ot分別為初始、t時(shí)溶解氧含量(mg·L-1);Ob為空白組溶解氧含量變化值(mg·L-1);V是實(shí)驗(yàn)水體體積(L);m是魚體質(zhì)量(g);t為測(cè)量值之間的時(shí)間間隔(h)。
數(shù)據(jù)以平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(means±SD)形式表示。統(tǒng)計(jì)前對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行正態(tài)檢驗(yàn)和方差同質(zhì)性檢驗(yàn),用SPSS 19.0進(jìn)行單因素方差分析(oneway ANOVA)和Duncan多重比較進(jìn)行檢測(cè),顯著性水平為0.05。
經(jīng)過(guò)10 d的低鹽適應(yīng),各鹽度組棕點(diǎn)石斑魚血清滲透壓、血清Na+、Cl-、K+濃度及肌肉含水量如圖1所示。隨鹽度的降低,棕點(diǎn)石斑魚血清滲透壓呈降低趨勢(shì),其中鹽度6‰組血清滲透壓顯著低于其他組(P<0.05);血清Na+和K+濃度隨鹽度降低有降低趨勢(shì),其中鹽度6‰組Na+、K+濃度顯著低于對(duì)照組(P<0.05);各組間血清Cl-濃度無(wú)顯著性差異(P>0.05);肌肉含水量隨鹽度的降低有上升趨勢(shì),但各組間無(wú)顯著性差異(P>0.05)。
圖1 不同鹽度下棕點(diǎn)石斑魚幼魚血清滲透壓(A)、血清Na+、Cl-濃度(B)、血清K+濃度(C)、肌肉含水量(D)Fig.1 Serum osmolality(A),serum Na+and Cl-(B),serum K+(C),muscle water content(D)of juvenile Epinephelus fuscoguttatus at different salinities
線性回歸分析表明(圖2),血清滲透壓與環(huán)境水滲透壓呈線性相關(guān)(R2=0.82,P<0.05),回歸直線與等滲線交點(diǎn)為等滲點(diǎn)滲透壓343.73 mOsm·kg-1,所對(duì)應(yīng)海水鹽度為12.59‰。
圖2 棕點(diǎn)石斑魚幼魚在不同鹽度下血清滲透壓和環(huán)境滲透壓的關(guān)系Fig.2 Relationship between ambient water osmolality and serum osmolality of juvenile Epinephelus fuscoguttatus
經(jīng)10 d低鹽適應(yīng),棕點(diǎn)石斑魚鰓Na+/K+-ATPase活性如圖3所示,隨著鹽度的降低,鰓Na+/K+-ATPase活性先降低后上升,其中鹽度12‰組活性最低,顯著低于其他組(P<0.05)。
圖3 不同鹽度下棕點(diǎn)石斑魚幼魚鰓Na+/K+-ATPase活性Fig.3 Gill Na+/K+-ATPase activity of juvenile Epinephelus fuscoguttatus at different salinities
鹽度對(duì)鰓NKA基因表達(dá)影響如圖4所示,經(jīng)過(guò)10 d低鹽的適應(yīng),隨鹽度的降低NKAα1基因表達(dá)量無(wú)顯著變化(P>0.05)。NKAβ1b基因表達(dá)量隨鹽度的降低先降低后升高;鹽度12‰組基因表達(dá)量最低,顯著低于其他鹽度組(P<0.05);鹽度6‰組顯著低于24‰、32‰組(P<0.05)。NKAα2a基因表達(dá)量隨鹽度的降低先升高后降低,鹽度12‰基因表達(dá)量最高且顯著高于其他鹽度組(P<0.05);鹽度6‰、24‰與對(duì)照組無(wú)顯著性差異(P>0.05)。NKAα3基因表達(dá)量隨鹽度的降低而降低,其中鹽度6‰組最低且顯著低于其他鹽度組(P<0.05),鹽度32‰組最高且顯著高于其他組(P<0.05)。
圖4 不同鹽度下棕點(diǎn)石斑魚幼魚鰓NKAα1、NKAβ1b、NKAα2a、NKAα3基因表達(dá)Fig.4 Expressions of NKAα1,NKAβ1b,NKAα2a,NKAα3 genes in gill of juvenile Epinephelus fuscoguttatus at different salinities
如圖5所示,各鹽度組棕點(diǎn)石斑魚泌氯細(xì)胞在鰓絲及鰓小葉均有分布且主要分布在鰓絲及鰓小葉基部。不同鹽度組鰓組織泌氯細(xì)胞數(shù)量與長(zhǎng)徑如圖6所示,隨鹽度的降低,鰓絲泌氯細(xì)胞數(shù)量先減少后增加,在鹽度12‰時(shí)最少,且顯著低于鹽度6‰、32‰組(P<0.05);鰓小葉泌氯細(xì)胞數(shù)量在鹽度32‰時(shí)最多且顯著高于鹽度6‰組、12‰組(P<0.05)。各鹽度組鰓絲、鰓小葉泌氯細(xì)胞長(zhǎng)徑無(wú)顯著差異(P>0.05)。
圖5 不同鹽度下棕點(diǎn)石斑魚幼魚鰓泌氯細(xì)胞(箭頭)Fig.5 Gill chloride cells(arrows)of juvenile Epinephelus fuscoguttatus at different salinities
圖6 不同鹽度下棕點(diǎn)石斑魚幼魚鰓絲、鰓小葉泌氯細(xì)胞數(shù)量及長(zhǎng)徑Fig.6 Number and diameter of chloride cells in filaments and lamellae of juvenile Epinephelus fuscoguttatus at different salinities
不同鹽度組棕點(diǎn)石斑魚的耗氧率如圖7所示。經(jīng)過(guò)10 d的低鹽馴化,鹽度的降低導(dǎo)致棕點(diǎn)石斑魚耗氧率呈上升趨勢(shì),在鹽度32‰時(shí)最低,且顯著低于6‰組、24‰組(P<0.05);鹽度6‰組、12‰組、24‰組之間耗氧率無(wú)顯著性差異(P>0.05)。
圖7 不同鹽度下棕點(diǎn)石斑魚的耗氧率Fig.7 Oxygen consumption rate of Epinephelus fuscoguttatus at different salinities
當(dāng)機(jī)體處于低滲或高滲環(huán)境時(shí),血漿內(nèi)環(huán)境與外界水環(huán)境之間存在一定的滲透壓差,機(jī)體通過(guò)調(diào)節(jié)離子平衡來(lái)維持體內(nèi)滲透壓的穩(wěn)定[25]。不同廣鹽性硬骨魚的肌肉含水量通常在環(huán)境鹽度的耐受范圍內(nèi)發(fā)生較小變化,黑鯛(Mylio macrocephalus)從海水轉(zhuǎn)移到淡水后肌肉含水量增加[26],青鳉(Oryzias latipes)從淡水轉(zhuǎn)移到海水后肌肉含水量暫時(shí)下降,并在適應(yīng)7 d后恢復(fù)[27]。本研究中棕點(diǎn)石斑魚經(jīng)過(guò)10 d的適應(yīng),各鹽度組肌肉含水量并無(wú)顯著性差異,這表明在6‰~32‰鹽度條件下棕點(diǎn)石斑魚能夠?qū)w內(nèi)離子環(huán)境進(jìn)行有效的調(diào)控。
血漿Cl-濃度會(huì)影響血漿的酸堿平衡,在低鹽水體中,當(dāng)血漿Na+的降低速度高于血漿Cl-的降低速度時(shí),有可能導(dǎo)致魚類發(fā)生短暫的代謝性酸中毒[28],本研究中棕點(diǎn)石斑魚從鹽度32‰自然海水轉(zhuǎn)移到鹽度32‰、24‰、12‰、6‰環(huán)境中適應(yīng)10 d后,鹽度6‰組魚血清Cl-濃度并沒(méi)有隨血清Na+、K+濃度的降低而降低,這預(yù)示著在該鹽度下棕點(diǎn)石斑魚可能會(huì)發(fā)生輕微的代謝性酸中毒。環(huán)境鹽度的變化不僅會(huì)影響魚類的體內(nèi)離子平衡,并可能影響魚類的生理狀態(tài),如游泳、食欲等[29],在本研究中鹽度6‰組棕點(diǎn)石斑魚攝食幾乎停止,活動(dòng)量降低,這表明盡管在10 d時(shí)間內(nèi)棕點(diǎn)石斑魚能應(yīng)對(duì)鹽度6‰的水環(huán)境變化,但在該鹽度環(huán)境中已經(jīng)受到了低鹽脅迫影響,可以預(yù)測(cè),如果棕點(diǎn)石斑魚長(zhǎng)期暴露于鹽度6‰下可能會(huì)對(duì)血清滲透壓和離子平衡產(chǎn)生更嚴(yán)重的影響。
狹鹽性海洋硬骨魚的血漿滲透壓為370~480 mOsm·kg-1,而狹鹽性淡水硬骨魚的血漿滲透壓為260~330 mOsm·kg-1[30],本研究中棕點(diǎn)石斑魚血清滲透壓隨鹽度的降低而降低,其滲透壓變化范圍介于兩類之間,這表明棕點(diǎn)石斑魚具有廣鹽性,經(jīng)回歸分析估算棕點(diǎn)石斑魚等滲點(diǎn)343.73 mOsm· kg-1,所對(duì)應(yīng)海水鹽度為12.59‰,這與大部分廣鹽性硬骨魚類等滲點(diǎn)相似[21]。
鰓Na+/K+-ATPase是硬骨魚類適應(yīng)外界鹽度變化、進(jìn)行滲透壓調(diào)節(jié)的關(guān)鍵酶,鰓Na+/K+-ATPase活性能反映機(jī)體對(duì)離子轉(zhuǎn)運(yùn)相關(guān)的能量需求[31]。不同魚類鰓Na+/K+-ATPase活性與鹽度變化的關(guān)系不同,主要有兩種類型:1)一種是溯河性魚類存在的線性關(guān)系,即隨鹽度的升高Na+/K+-ATPase活性隨著增加[23];2)多數(shù)廣鹽性魚類存在“U”型關(guān)系,即鰓Na+/K+-ATPase在中等鹽度下活性較低,在低鹽和高鹽下活性較高。在本研究中,棕點(diǎn)石斑魚經(jīng)過(guò)10 d的適應(yīng),隨鹽度的降低,Na+/K+-ATPase酶活性先降低后上升,符合“U”型變化,且在等滲點(diǎn)附近時(shí)具有較低的酶活性,這與軍曹魚(Rachycentron canadum)[32]、褐牙鲆(Paralichthys olivaceus)[33]、珍珠龍膽石斑魚(E.lanceolatus×E.fuscoguttatus)[22]等相似,這是由于在等滲點(diǎn)環(huán)境細(xì)胞外液和環(huán)境水之間的離子梯度最小,保持離子平衡所需能量更少。
鰓Na+/K+-ATPase活性受基因表達(dá)變化的調(diào)控,許多研究表明,環(huán)境鹽度變化不僅影響魚鰓Na+/K+-ATPase活性,而且也影響NKA基因表達(dá)和蛋白的合成[34]。Na+/K+-ATPase具有復(fù)雜的分子異質(zhì)性,有α和β類多種亞型表達(dá)。經(jīng)10 d的低鹽馴化,4種NKA亞型(α1,β1b,α2a和α3)中有3種亞基對(duì)低鹽環(huán)境響應(yīng)存在差異:NKAβ1b基因表達(dá)量隨鹽度的降低先降低后升高;NKAα2a基因表達(dá)量隨鹽度的降低先升高后降低;NKAα3基因表達(dá)量隨鹽度的降低而降低,這表明不同鹽度環(huán)境下Na+/K+-ATPase分子結(jié)構(gòu)存在差異,并可能在不同的鹽度環(huán)境中發(fā)揮特定的作用[7]。有研究認(rèn)為,NKAα1是影響Na+/K+-ATPase活性關(guān)鍵基因,經(jīng)過(guò)一段時(shí)間適應(yīng)后NKAα1基因表達(dá)量的變化與Na+/K+-ATPase活性變化一致[35-36]。也有研究表明,NKAβ基因表達(dá)量變化與Na+/K+-ATPase活性變化相一致[37]。在本研究中,各鹽度組NKAα1基因表達(dá)量無(wú)明顯變化,不同鹽度Na+/K+-ATPase活性變化與NKAβ1b基因表達(dá)量變化趨勢(shì)相似。有研究認(rèn)為,魚鰓表達(dá)多種α和β亞型,多亞型異構(gòu)體可能會(huì)改變以適應(yīng)鹽度轉(zhuǎn)移過(guò)程中外界水環(huán)境離子的變化[7],并且β糖基化位點(diǎn)的突變可以改變酶的活性[38],后續(xù)研究將關(guān)注此方面的內(nèi)容。
鰓重構(gòu)是鰓組織的形態(tài)學(xué)變化,由細(xì)胞活動(dòng)所致,當(dāng)硬骨魚面臨外環(huán)境鹽度變化時(shí)經(jīng)常發(fā)生,其典型特征就是細(xì)胞數(shù)量或大小發(fā)生變化[39-40]。魚類在適應(yīng)鹽度變化過(guò)程中會(huì)引起泌氯細(xì)胞的改變或重塑,如中華鱘(Acipenser sinensis)幼魚在半咸水條件下與在淡水條件下相比,鰓上皮泌氯細(xì)胞數(shù)量和大小均顯著增加[24];珍珠龍膽石斑魚隨鹽度的降低,泌氯細(xì)胞長(zhǎng)徑變小,數(shù)量也略有減少[41]。這些改變對(duì)魚類適應(yīng)外界環(huán)境鹽度變化有重要意義[42-43],鰓Na+/K+-ATPase活性的變化可能受泌氯細(xì)胞數(shù)量或大小的變化影響而不僅是基因表達(dá)的變化[7]。在本研究中鰓泌氯細(xì)胞數(shù)量隨鹽度的降低先減少后增加,鰓小葉泌氯細(xì)胞在鹽度32‰時(shí)最多,而各鹽度組泌氯細(xì)胞的長(zhǎng)徑并無(wú)顯著差異,這表明泌氯細(xì)胞的數(shù)量可能是影響鰓Na+/K+-ATPase活性變化的重要因素。
耗氧率反映了魚類在靜息狀態(tài)所消耗的氧氣,包括用于維持離子和滲透壓調(diào)節(jié)、蛋白質(zhì)結(jié)構(gòu)轉(zhuǎn)換和基本的心肺功能等的消耗量[44]。滲透壓調(diào)節(jié)是一個(gè)耗能的過(guò)程,能量動(dòng)態(tài)變化與平衡能準(zhǔn)確反映魚類對(duì)不同環(huán)境條件的適應(yīng)性[45],大部分魚類總能量預(yù)算的20%~50%用于滲透壓調(diào)節(jié)[46]。許多研究通過(guò)不同鹽度下耗氧率來(lái)估算離子和滲透壓調(diào)節(jié)成本[47],但并沒(méi)有形成共識(shí)。ERN和ESBAUGH[47]對(duì)美國(guó)紅魚(Sciaenops ocellatus)研究后認(rèn)為,滲透調(diào)節(jié)的成本是基礎(chǔ)代謝的次要組成部分,滲透壓調(diào)節(jié)能量成本不能用全動(dòng)物耗氧量來(lái)檢測(cè)。在本研究中,隨鹽度的降低耗氧率有升高趨勢(shì),且在鹽度32‰時(shí)最低,而在等滲點(diǎn)附近(鹽度12‰)時(shí)耗氧率并沒(méi)有明顯降低,這表明在一定鹽度范圍內(nèi)鰓Na+/K+-ATPase進(jìn)行滲透壓調(diào)節(jié)所消耗能量可能只是棕點(diǎn)石斑魚總代謝的一個(gè)相對(duì)較小的組成部分。MUHAMMADAR等[19]通過(guò)研究棕點(diǎn)石斑魚在鹽度22‰、28‰、32‰水體中生長(zhǎng)速度,認(rèn)為棕點(diǎn)石斑魚在鹽度32‰條件生長(zhǎng)速度最佳;TAHIR等[20]研究認(rèn)為,與31‰鹽度相比,棕點(diǎn)石斑魚在5‰~15‰鹽度時(shí)血清皮質(zhì)醇水平及死亡率增加;MORGAN和IWAMA[48]研究認(rèn)為,魚類對(duì)鹽度變化的代謝反應(yīng),在很大程度上取決于其生活史階段,即物種在自然棲息地環(huán)境代謝率最低,比較適合其生長(zhǎng)。該批棕點(diǎn)石斑魚從孵化到養(yǎng)成一直生活在鹽度32‰自然海水中,且在鹽度32‰時(shí)耗氧率最低,這可能是長(zhǎng)期鹽度適應(yīng)的結(jié)果。
本實(shí)驗(yàn)通過(guò)對(duì)棕點(diǎn)石斑魚低鹽適應(yīng)10 d后血清滲透壓、血清Na+、Cl-、K+濃度、鰓Na+/K+-ATPase活性及相關(guān)基因表達(dá)、鰓組織學(xué)及耗氧率等變化綜合分析,在10 d時(shí)間內(nèi)棕點(diǎn)石斑魚能有效應(yīng)對(duì)鹽度6‰的水環(huán)境鹽度變化,但已經(jīng)受到了低鹽脅迫,長(zhǎng)期暴露于這種鹽度可能會(huì)對(duì)血清滲透壓和離子平衡產(chǎn)生更嚴(yán)重的影響。鰓Na+/K+-ATPase活性的變化不僅受NKA基因表達(dá)量影響,也受到了細(xì)胞數(shù)量變化的影響。研究同時(shí)發(fā)現(xiàn),棕點(diǎn)石斑魚在鹽度12‰時(shí)鰓Na+/K+-ATPase活性最低,但代謝率在鹽度32‰即自然棲息地鹽度環(huán)境時(shí)最低,這表明在一定鹽度范圍內(nèi),鰓Na+/K+-ATPase滲透壓調(diào)節(jié)所消耗能量可能只是棕點(diǎn)石斑魚總代謝的一個(gè)相對(duì)較小的組成部分。