馬 納,秦莉莉,尚冰冰,2,齊寶平,2?
1. 湖北民族大學生物資源保護與利用湖北省重點實驗室,湖北恩施445000;2. 湖北民族大學化學與環(huán)境工程學院,湖北恩施445000
納米酶(nano-enzyme) 是具有類酶活性的納米催化材料,與天然酶和傳統(tǒng)人工酶相比,具有穩(wěn)定性好、成本低、可重復利用、便于修飾等優(yōu)點[1~3]。納米酶已經成功模擬了包括氧化酶、過氧化物酶、過氧化氫酶、超氧化物歧化酶和水解酶等天然酶,在生物傳感、癌癥診斷、組織工程、環(huán)境保護等多個領域得到應用[4~9]。碳質納米材料作納米酶具有穩(wěn)定性好、廉價易得、生物毒性低以及易于化學修飾等特點,受到廣泛的關注[10]。1996 年,Dugan 等[11]首次報道富勒烯及其衍生物具有類似超氧化物歧化酶(SOD) 的活性[11],隨后越來越多的碳質納米材料,包括 碳 納 米 管[12,13]、石 墨 烯 量 子 點(GQDs)[14,15]、氮 化碳[16,17]等相繼被發(fā)現(xiàn)具有類酶活性。Zheng 等[18]報道了GQDs 具有高效的類過氧化物酶催化活性,其活性遠遠高于大尺寸氧化石墨烯。Sun 等[15]通過選擇性失活特定的含氧官能團,探究了GQDs 表面官能團對GQDs 衍生物作為過氧化物酶模擬物的催化活性,發(fā)現(xiàn)GQDs 表面的羰基(—C=O) 是催化活性位點,羧基(—COOH) 可作為底物的結合位點,羥基(—OH) 對催化反應起到抑制作用。Nirala等[14]研究了外界因素對GQDs 作為類過氧化物酶的催化活性的影響,發(fā)現(xiàn)GQDs 的催化活性與催化劑的用量、底物的濃度、檢測液的pH 值和溫度密切相關。目前,GQDs 的過氧化物酶性質研究還處于初期階段,尚缺乏深入的基礎研究。因此,如何提高GQDs 作過氧化物酶的活性以促進GQDs 在催化領域的應用,具有重要意義。
本文采用超聲剝離法與化學氧化法分別制備了含氧量較低的GQDs 與含氧量較高的GOQDs,用于3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺(TMB)與過氧化氫(H2O2) 體系(TMB/H2O2)的催化,探討了GQDs 表面的含氧量對其類過氧化物酶催化活性的影響,并在此基礎上構建的一種基于GOQDs 的H2O2分析方法。
試劑:石墨納米顆粒(GNPs,純度高于93%,平均直徑為3~4 nm)購自SkySpring 納米材料公司;C2H5OH、H2SO4、K4[Fe(CN)6]?3H2O、K3[Fe(CN)6]、KMnO4、H2O2(30%)、HCl等試劑均購自上海阿拉丁生化科技股份有限公司;3,3′,5,5′-四甲基聯(lián)苯胺購自上海麥克林生化科技有限公司;實驗室用水均為超純水。
儀器:JEM-2100F 型高辨透射電子顯微鏡(TEM, JEOL 公司)、Autolab PGSTAT302N 型 電化學工作站(Metrohm 公司)、Avatar 360 型Fourier變換紅外光譜儀(FT-IR, Thermo Nicolet 公司)、RF-6000 型 熒光分光光度計(Shimadzu 公司)、TU-1901 (UV-Vis)型雙光束紫外-可見光光度計(北京普析通用儀器有限責任公司)。
1.2.1 GQDs 的制備
將30 mg GNPs 加入到100 mL 圓底燒瓶中,加入30 mL 乙醇/水(體積比1∶1),在冰浴中超聲振蕩6 h,所得懸濁液以10 000 r/min 轉速離心20 min,收集上層清液,旋轉蒸發(fā)去除溶劑,重新分散到超純水中,所得淺棕色分散液記為GQDs。
1.2.2 GOQDs 的制備
將0.5 g GNPs 加入到含17 mL H2SO4與0.38 g NaNO3的250 mL 圓底燒瓶中,置于冰浴中,劇烈攪拌下緩慢加入2.5 g KMnO4,反應2 h 后,向反應體系中加入50 mL 超純水。然后,向上述溶液中滴加2 mL 30% 的H2O2,將反應體系轉入到250 mL HCl/H2O(體積比為1∶10)溶液中,以20 000 r/min轉速離心20 min,去除上清液,反復加入超純水洗滌,直至懸浮液接近中性。將上述懸浮液在冰浴中超聲3 h,以10 000 r/min 轉速離心30 min,收集上層棕色清液,記為GOQDs。
1.2.3 修飾電極的制備
采用粒徑為0.3 mm 和0.05 mm Al2O3粉末依次對玻碳電極(GCE,直徑3.0 mm) 進行拋光,超聲清洗后,用N2吹干電極表面。電極倒置,將5 μL GQDs 溶液滴在GCE 表面,室溫風干,得到GQDs修飾的GCE 電極,記為GQDs/GCE。
同上述步驟,制備GOQDs 修飾的GCE 電極,記為GOQDs/GCE。
循環(huán)伏安法(CV)、電化學阻抗法(EIS)與電流-時間曲線(I-t)測試均在電化學工作站上進行。以飽和甘汞電極作參考電極、鉑絲作對電極、GCE及其修飾電極(GQDs/GCE、GOQDs/GCE)作工作電極,組成三電極體系。
CV 測試在0.2 mol/L pH 3.8 的檸檬酸-磷酸鹽緩沖溶液(CPBS)中進行,電勢掃描范圍為-1.0~+0.2 V,掃描速率為50 mV/s,測試過程中采用N2保護。 EIS 測試在含10 mmol/L K3Fe(CN)6/K4Fe(CN)6(摩爾比1∶1)的0.1 mol/L KCl溶液中。在0.2 mol/L pH 3.8 CPBS 中,連續(xù)加入不同濃度的H2O2,采集GOQDs/GCE 修飾電極的I-t數(shù)據(jù)。
以TMB/H2O2體系的顯色反應考察GQDs 和GOQDs 的類過氧化物酶活性,操作步驟如下:依次將10 μL GQDs (0.2 mg/mL)、100 μL H2O2(50 mmol/L)、100 μL TMB (0.8 mmol/L) 和1 mL 乙酸鹽緩沖液(0.2 mol/L, pH 3.5) 加入到離心管中,置于50 ℃水浴中反應10 min,測試反應后的溶液在500~800 nm 波長范圍內的吸收光譜。
同上述步驟,考察GOQDs 的類過氧化物酶活性。
2.1.1 TEM 分析
采用TEM 對GQDs 與GOQDs 的粒徑與形貌進行表征,結果如圖1 所示。由圖1 可知,所制備的GQDs 與GOQDs 粒徑較均一,形狀接近圓形,且具有較好的分散性。分別對200 顆左右的GQDs 與GOQDs進行粒徑統(tǒng)計,GQDs 與GOQDs 的平均粒徑分別為(3.3±0.2)nm 與(3.4±0.5)nm,兩種碳質納米顆粒的粒徑接近。
圖1 GQDs (a)與GOQDs (b)的TEM 表征Fig.1 TEM images of GQDs (a)and GOQDs (b)
2.1.2 FT-IR 分析
采用FT-IR 對GQDs 與GOQDs 表面的官能團進行表征,結果如圖2 所示。由圖2 可知,位于3 440、1 610、1 110 cm-1處的吸收峰分別歸屬于GQDs 與GOQDs 表面上羥基(—OH)伸縮振動、羰基(C=O) 伸縮振動及(C—O—C)醚鍵伸縮振動。而GOQDs 譜圖在1 740、1 242 cm-1處有羧基中的C=O 伸縮振動和C—O 伸縮振動。由此可知,與GQDs 相比,GOQDs 表面具有更豐富的含氧官能團,這歸因于GOQDs 制備過程中采用了強氧化反應體系。
圖2 GQDs 與GOQDs 的FT-IR 圖Fig.2 FT-IR spectra of GQDs and GOQDs
2.1.3 XPS 分析
采用XPS 技術對GQDs 與GOQDs 的組成進行表征,結果如圖3 所示。由圖3 可知,GQDs 與GOQDs 均 由C 和O 組 成,位 于284. 2 eV 和534.5 eV 的特征峰分別歸屬于C 1s 與O 1s。對目標元素C 1s 和O 1s 的峰面積進行積分,采用相對靈敏度因子法[19]得到各目標元素的百分含量,GQDs 與GOQDs 中O/C 的含量之比分別為0.11 與0.52。由此可以得出,與GQDs 相比較,GOQDs 表面具有更豐富的含氧官能團,與FT-IR 測試結果一致。
圖3 GQDs 與GOQDs 的XPS 圖Fig.3 XPS spectra of GQDs and GOQDs
2.1.4 熒光分析
采用熒光分光光度計,在240~500 nm 波長范圍內,以20 nm 幅度改變激發(fā)波長,觀察GQDs 與GOQDs 的水溶液發(fā)射波長的變化,結果如圖4 所示。由圖4 可知,GQDs 與GOQDs 的熒光發(fā)射波長隨激發(fā)波長的改變而改變,其熒光性能表現(xiàn)出激發(fā)依賴性;GQDs 的最佳發(fā)射波長位于390 nm,GOQDs 的最佳發(fā)射波長位于536 nm;在365 nm 紫外燈照射下,GQDs 水溶液呈現(xiàn)藍色熒光,而GOQDs 水溶液呈現(xiàn)藍綠色熒光。與GQDs 相比較,GOQDs 的熒光發(fā)射波長有比較明顯的紅移,這歸因于GOQDs表面含氧官能團的增加[19,20]。
圖4 GQDs (a)與GOQDs (b)水溶液的熒光發(fā)射光譜插圖:GQDs(a)與GOQDs(b)水溶液在365 nm 紫外燈照射下的照片F(xiàn)ig.4 Fluorescence emission spectra of GQDs (a)and GOQDs (b)dispersed in water Inset:photos of GQDs (a)and GOQDs (b)under 365 nm UV lamp excitation
2.2.1 GQDs/GCE 與GOQDs/GCE 修飾電極的CV分析
將GQDs 與GOQDs 分別修飾到GCE 電極上,在含6 mmol/L H2O2的0.2 mol/L pH 3.8 CPBS 中采用CV 測試考察GQDs 與GOQDs 作為類過氧化物酶對底物H2O2的催化能力,結果如圖5 所示。由圖5 可知,在相同實驗條件下,相對于裸電極GCE,GQDs/GCE 與GOQDs/GCE 對 底 物H2O2均 有 較大的響應電流,這歸因于GQDs 與GOQDs 的類過氧化物酶催化活性[14,15];相 對 于GQDs/GCE,GOQDs/GCE 上的響應電流增加顯著,在-0.92 V附近,GQDs/GCE 與GOQDs/GCE 對H2O2的還原電流峰值分別為0.38、1.65 mA,GOQDs 展現(xiàn)出更好的催化活性。CV 測試結果表明,GQDs 與GOQDs 均對H2O2展現(xiàn)出類過氧化物酶活性,含氧量較高的GOQDs 展現(xiàn)出更好的催化活性。
圖5 GCE、GQDs/GCE 及GOQDs/GCE 在含6 mmol/L H2O2的0.2 mol/L pH 3.8 CPBS 中的CV 曲線Fig.5 CV curves of GCE, GQDs/GCE, and GOQDs/GCE in 0.2 mol/L pH 3.8 CPBS containing 6 mmol/L H2O2
2.2.2 GQDs/GCE 與GOQDs/GCE 修飾電極的EI S分析
采用EIS 技術測試GQDs/GCE 與GOQDs/GCE 在含10 mmol/L K3Fe(CN)6/K4Fe(CN)6(1∶1)的0.1 mol/L KCl 溶液中對電子的轉移能力[21],結果如圖6 所示。由圖6 可知,以[Fe(CN)6]3-/4-作探針的交流阻抗圖譜中,裸電極GCE 的電子轉移阻礙常數(shù)(Ret) 為780 Ω;修飾電極GQDs/GCE 的Ret幾乎為0,表明GQDs 碳質納米材料具有良好的導電性能;修飾電極GOQDs/GCE 的Ret增加至8 780 Ω,表明GOQDs 對探針具有較強的排斥作用,這歸因于GOQDs 表面豐富的含氧官能團降低了碳質納米材料的導電性能,抑制了電極表面的電子傳遞。
圖6 GCE、GQDs/GCE 及GOQDs/GCE 在0.1 mol/L KCl 溶液(含10 mmol/L K3Fe(CN)6/K4Fe(CN)6(1∶1))中的EIS 曲線Fig.6 EIS curves of GCE, GQDs/GCE and GOQDs/GCE in 0.1 mol/L KCl solution (containing 10 mmol/L K3Fe(CN)6/K4Fe(CN)6 (1∶1))
2.2.3 GQDs 與GOQDs 的類過氧化物酶活性
采用TMB/H2O2體系的顯色反應考察GQDs和GOQDs 的類過氧化物酶活性。如圖7(a)(b)所示,GQDs 和GOQDs 均可通過催化H2O2的反應,將溶液中的TMB 氧化為氧化態(tài)TMB (oxTMB),溶液由無色變?yōu)樗{色,oxTMB 在652 nm 處具有特征吸收峰(曲線e 與f)[22];當GQDs 或者GOQDs 單獨與TMB 反應時,溶液仍然為無色,無法被氧化(曲線c與d),從而證實GQDs 與GOQDs 具有類過氧化物酶活性。圖7(b)顯示了GOQDs 催化H2O2氧化TMB 顯色的過程。
采用酶動力學實驗探究GQDs 與GOQDs 的類過氧化物酶活性,在保持TMB 或H2O2濃度不變的條件下,通過改變另一底物的濃度,進行酶促反應[22]。如圖7(c)~(f)所示,底物TMB 的濃度在0~0.12 mmol/L 或底物H2O2的濃度在0~300 mmol/L的范圍內,GQDs 或GOQDs 與TMB/H2O2體系的催化反應遵循Michaelis-Menten 動力學模型[23],即滿足1/v=Km/(vmax[S])+1/vmax,其中,v為不同底物濃度下的初始反應速率;[S]為底物的濃度;Km為米氏常數(shù)(為反應速度達到最大速度一半時的底物濃度,通常用于表示酶與底物的親和力,Km數(shù)值越小,酶與底物的親和力越強);vmax為最大初始反應速率。通過方程式的斜率和截距可以得出Km和vmax。
圖7 (a)TMB、TMB+H2O2、TMB+GQDs、TMB+GOQDs、TMB/H2O2+GQDs 和TMB/H2O2+GOQDs(曲線a~f)的吸收光譜及對應顏色變化;(b)GOQDs 催化H2O2氧化TMB 顯色的示意圖;GQDs(c)與GOQDs(d)以TMB 為底物時的Michaelis-Menten動力學;GQDs (e)與GOQDs (f)以H2O2為底物時的Michaelis-Menten 動力學Fig.7 (a)Absorption spectra and the corresponding color changes of the TMB, TMB+H2O2, TMB+GQDs, TMB+GOQDs,TMB/H2O2+GQDs and TMB/H2O2+GOQDs (a-f)solutions;(b)Schematic diagram of GOQDs catalyzed oxidation of TMB into oxidized TMB (oxTMB)in the presence of H2O2;Michaelis-Menten kinetics of GQDs (c)and GOQDs(d)towards TMB;Michaelis-Menten kinetics of GQDs (e)and GOQDs(f)towards H2O2
GQDs 的類過氧化物酶活性:對于TMB,Km=0.040 mmol/L,vmax=3.69×10-8mol/(L·s);對 于H2O2,Km=26.19 mmol/L,vmax=30.92×10-8mol/(L·s)。GOQDs 的類過氧化物酶活性:對于TMB,Km=0.011 mmol/L,vmax=3.11×10-8mol/(L·s);對于H2O2,Km=15.880 mmol/L,vmax=13.64×10-8mol/(L·s)。 GOQDs 的Km值低于GQDs,說明GOQDs 對于底物H2O2具有更好的親和力。與目前報道的其他碳質納米材料的類過氧化物酶活性相比(見表1),本文中GOQDs 的Km值更低,具有更高的催化活性[15]。
表1 GQDs、GOQDs 與其他碳質納米材料作為類過氧化物酶的動力學常數(shù)Table 1 Enzymatic kinetic constants of GQDs and GOQDs in this work with other carbon nanomaterials as peroxidase
2.2.4 GOQDs/GCE 的I-t曲 線 分 析
通過施加-0.92 V 外加電場,在0.2 mol/L CPBS (pH 3.8) 中連續(xù)加入H2O2,測試GOQDs/GCE 對目標物H2O2的響應電流。如圖8(a)所示,加入低至0.002 mmol/L H2O2時,催化電流有明顯的增加,隨著H2O2的連續(xù)加入,相應電流呈階梯式增加。如圖8(b)所示,在0.002~2.4 mmol/L 范圍內,GOQDs/GCE 的電流響應與H2O2的濃度有較好的線性關系,線性擬合方程為I(mA)=-0.357 3c(mmol/L) -0.120 9 (R2=0.995),檢 出 限 為0.4 μmol/L (信噪比S/N=3)。在H2O2濃度低至0.002 mmol/L 時,響應電流在3 s 內能達到穩(wěn)態(tài),表明GOQDs/GCE 對小分子有較好的響應,歸因于GOQDs 表面上存在類過氧化物酶的活性位點[15]。
圖8 (a)GOQDs/GCE 對連續(xù)加入H2O2的電流響應;(b)GOQDs/GCE 的穩(wěn)態(tài)電流響應信號對H2O2濃度的線性關系Fig.8 (a)Amperometric response of GOQDs/GCE to continuous addition of H2O2;(b)the linear relationship between the steady-state current GOQDs/GCE and the different concentrations of H2O2
本文以GNPs 為原料,制備了含氧量低的GQDs 與含氧量高的GOQDs,探究了含氧量對GQDs 類過氧化物酶活性的影響。實驗結果表明,相對于修飾電極GQDs/GCE,GOQDs/GCE 對電子具有較大排斥作用,但對小分子H2O2具有更大響應電流;GQDs 與GOQDs 均具有類過氧化物酶活性,相對于GQDs,GOQDs 的Km數(shù)值更小,對底物具有更好的親和力;含氧量高的GOQDs 展現(xiàn)出更好的類過氧化物酶活性,證實豐富含氧官能團對GQDs 的類過氧化物酶活性具有重要作用,為提高GQDs 過氧化物酶催化活性提供了思路。在此基礎上,構建GOQDs/GCE 的檢測平臺對H2O2的檢出限為0.4 μmol/L (S/N=3),在0.002~2.4 mmol/L范圍內具有較好的線性關系,為H2O2檢測提供了一種簡便有效的方法。