黃艷梅，周菲菲，羅立民，黃海濤，葛志偉，楊江帆，屠幼英，吳媛媛*

（1.浙江大學(xué)農(nóng)業(yè)與生物技術(shù)學(xué)院茶學(xué)系，杭州 310058；2.杭州市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院茶葉研究所，杭州 310024；3.浙江大學(xué)農(nóng)生環(huán)測(cè)試中心，杭州 310058；4.福建農(nóng)林大學(xué)園藝學(xué)院/茶學(xué)福建省高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，福州 350002）

在自然界中，多種植物都含有?；S酮苷，如沙棘[1]、人參[2]、黃芪[3]、銀杏[4]、西藍(lán)花[5]、卷心菜[6]、菠菜[7]、絨藜[8]、紫云英[9]、葡萄[10]、茶樹(shù)[11]等。研究表明，?；S酮苷不僅在植物體內(nèi)具有增強(qiáng)對(duì)紫外線B段（ultraviolet ray B,UV-B）吸收能力的特性[12]，而且在體外具有抗炎[13]、清除1，1-二苯基-2-三硝基苯肼（1, 1-diphenyl-2-picrylhydrazyl, DPPH）自由基[11,14]、抑制乙醇脫氫酶活性[14]、降脂減肥[15]、抑制卟啉單胞菌和聚合梭桿菌[16]、降低血糖水平[17-18]、預(yù)防骨骼肌萎縮[19]、抑制惡性細(xì)胞增殖[20]、影響神經(jīng)遞質(zhì)釋放水平[21]等活性功能，因此具有重要的研究意義。

目前，對(duì)茶葉中?；S酮苷物質(zhì)的研究主要集中在提取、分離和純化及其生物活性功能研究方面。關(guān)于2種?；S酮苷quercetin-3-O-[(E)-pcoumaroyl-(1→2)][α-L-arabinopyranosyl-(1→3)]-[β-D-glucopyranosyl-(1→3)-α-L-rhamnopyranosyl(1→6)]-β-D-glucopyranoside[22]（F1，分子量為1 050）和kaempferol-3-O-[(E)-p-coumaroyl-(1→2)]-[α-L-arabinopyranosyl-(1→3)]-[β-D-glucopyranosyl-(1→3)-α-L-rhamnopyranosyl-(1→6)]-β-D-gluco‐pyranoside[23]（F2，分子量為1 034）在茶樹(shù)的組織、葉位和品種中的分布及其受光照影響的情況，以及此2種物質(zhì)在烏龍茶加工過(guò)程中的變化情況尚未見(jiàn)報(bào)道。本研究從茶葉中分離純化得到2 種?；S酮苷單體，通過(guò)自主建立的高效液相色譜（high per‐formance liquid chromatography,HPLC）定量檢測(cè)方法，對(duì)茶樹(shù)不同組織、葉位、品種，是否遮陰處理，烏龍茶各加工工序樣的F1和F2含量進(jìn)行測(cè)定和分析，了解其分布規(guī)律，以期從資源學(xué)、加工學(xué)等角度為茶樹(shù)酰基化黃酮苷化合物的進(jìn)一步綜合利用提供一些理論和參考依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 樣品處理

1.1.1 茶樹(shù)空間分布樣

于2021年5月，在浙江大學(xué)茶學(xué)系潘板試驗(yàn)基地，取茶樹(shù)品種‘福建水仙’當(dāng)年新生1～4葉以及老葉、莖、根，采樣后立即保存于液氮中，帶回實(shí)驗(yàn)室于－80 ℃冰箱中保存，備用。

1.1.2 茶樹(shù)品種樣

于2021年5月，在杭州市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院茶葉研究所進(jìn)行采樣，共選取42 個(gè)茶樹(shù)品種：‘綠芽佛手’‘清新奇蘭’‘政和大白’‘云瑰’‘黃金桂’‘中黃1 號(hào)’‘春萱’‘龍井1 號(hào)’‘龍井43’‘金面奇蘭’‘奇蘭’‘福鼎大白’‘大葉烏龍’‘春閨’‘春蘭’‘梅占’‘白雞冠’‘春雨2 號(hào)’‘景白2 號(hào)’‘菜茶’‘北斗’‘景白1號(hào)’‘黃棪’‘黃金芽’‘桃源大葉’‘福建水仙’‘中黃2 號(hào)’‘水金’‘金谷綠’‘本山’‘鐵觀音’‘鐵羅漢’‘金玫瑰’‘黃金菊’‘東陽(yáng)木禾種’‘肉桂’‘毛蟹’‘雀舌’‘金羅漢’‘中茶108’‘碧云’‘大蓬茶’。依次按照N1～N42編號(hào)。選取當(dāng)年新生2～4葉，微波固樣（0.7 kW，分2 次，每次1 min），而后將樣品置于60 ℃烘箱中，烘干4 h至完全干燥。

1.1.3 遮陰處理樣

于2020 年3—5 月，在杭州市茶葉試驗(yàn)場(chǎng)用遮陽(yáng)網(wǎng)（雙層黑色尼龍布）對(duì)‘福建水仙’‘龍井1 號(hào)’‘政和大白’進(jìn)行遮陰處理，以未遮陰處理的樣品作為對(duì)照。選取當(dāng)年新生2～4 葉，存入液氮罐，冷凍干燥48 h，隨后置于－80 ℃冰箱中保存，備用。

1.1.4 烏龍茶加工樣

于2020 年11 月，在浙江大學(xué)茶學(xué)系潘板試驗(yàn)基地采取‘福建水仙’當(dāng)年新生一芽2～4 葉。將所采鮮葉進(jìn)行2 h日光萎凋，每小時(shí)翻動(dòng)1次。待鮮葉變得稍軟、表面顏色變暗時(shí)，結(jié)束曬青。將曬青葉置于室內(nèi)適度攤涼，準(zhǔn)備做青。做青環(huán)節(jié)分4次，做青和等青交替進(jìn)行。其中，第1 次搖青5 min，等青60 min；第2次搖青10 min，等青75 min；第3次搖青10 min，等 青75 min；第4 次 搖 青15 min，等 青90 min。做青結(jié)束后立即進(jìn)行微波殺青（0.7 kW，30 s），使殺青葉青氣散盡、葉質(zhì)變得柔軟，揉可成團(tuán)、松手可散。殺青結(jié)束后趁熱揉捻，使茶汁溢于茶葉表面，形成較好的外形。然后在80 ℃烘箱中干燥2 h。分別在萎凋、做青、殺青、揉捻、干燥等工藝結(jié)束后進(jìn)行取樣。樣品一部分用于含水率的測(cè)定，一部分置于密封袋中，放入－40 ℃冰箱中保存，待測(cè)。

1.2 主要試劑與儀器

HPLC 級(jí)甲醇和乙腈（美國(guó)Tedia 公司）、HPLC級(jí)甲酸［阿拉丁試劑（上海）有限公司］、液氮（杭州今工特種氣體有限公司）、色譜純乙酸和色譜純甲醇（上海市國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司）、2 種?；S酮苷F1和F2（自制）。

AL104 電子天平［梅特勒-托利多儀器（上海）有限公司］、KQ-500E超聲儀（江蘇省昆山市超聲儀器有限公司）、島津LC-2010A 高效液相色譜儀、C18 色譜柱（150 mm×4.6 mm，5 μm，美國(guó)Agilent 公司）、9070A 烘箱（成都瑞派斯科技有限公司）、R134a 離心機(jī)（德國(guó)Eppendorf 公司）、干燥器、EasyPureⅡUV 超純水機(jī)（美國(guó)Barnstead 公司）、EG720KG3-NR1 微波爐（中國(guó)香港美的集團(tuán)有限公司）。

1.3 分析方法

1.3.1 樣品前處理

茶樹(shù)品種樣、遮陰處理樣和未遮陰的對(duì)照樣用粉碎機(jī)粉碎，茶樹(shù)空間分布樣和烏龍茶加工樣用液氮研磨成粉末狀。

1.3.2 茶樣提取方法

以70%甲醇（含0.1%乙酸）作為溶劑，按照m（茶樣）∶V（溶劑）=1∶15超聲提取30 min。提取結(jié)束后，置于高速離心機(jī)以5 000 r/min離心10 min，取上清液，過(guò)0.45 μm有機(jī)膜，用于液相檢測(cè)。

1.3.3 樣品含水率的測(cè)定

取潔凈、已編號(hào)的鋁質(zhì)烘盒及盒蓋，放入120 ℃烘箱中，恒溫預(yù)烘1 h 后取出放入干燥器中冷卻至室溫，稱量盒質(zhì)量（m0）。稱取1.5 g茶樣于已知質(zhì)量的鋁盒中，放入120 ℃的烘箱中，以烘箱溫度升至120 ℃開(kāi)始計(jì)算，加熱1 h 后取出，于干燥器內(nèi)冷卻至室溫稱量（m1）。實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次，計(jì)算平均值。含水率計(jì)算公式如下：

1.3.4 ?；S酮苷含量的測(cè)定

參考顧瑩婕[16]的HPLC法并進(jìn)行改進(jìn)。流動(dòng)相A［V（甲酸）∶V（水）=0.1∶99.9］和B［V（甲酸）∶V（乙腈）=0.1∶99.9］，流速1 mL/min，進(jìn)樣量10 μL，檢測(cè)波長(zhǎng)分別為280、360 nm，溫度為35 ℃。HPLC洗脫梯度見(jiàn)表1，2種?；S酮苷的分子結(jié)構(gòu)、HPLC圖譜（檢測(cè)波長(zhǎng)為360 nm）見(jiàn)圖1。

圖1 2種酰基化黃酮苷的分子結(jié)構(gòu)及HPLC圖譜Fig.1 Molecular structures and HPLC chart of two acylated flavonol glycosides

表1 HPLC洗脫梯度Table 1 Elution gradients of HPLC

1.4 標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作

準(zhǔn)確稱取F1、F2對(duì)照品各1.00 mg，溶解于甲醇溶液，配制成質(zhì)量濃度為1.00 mg/mL的儲(chǔ)備液。再將1.00 mg/mL 對(duì)照品母液稀釋成不同質(zhì)量濃度的系列對(duì)照品溶液（表2）。

表2 對(duì)照品F1和F2溶液質(zhì)量濃度Table 2 Contents of F1 and F2 reference solutions mg/mL

以對(duì)照品濃度（X）為橫坐標(biāo)，峰面積（Y）為縱坐標(biāo)，進(jìn)行線性回歸，得到F1、F2的線性回歸方程分別為Y=11 495 190X－117 039（R2=0.995 9）和Y=8 866 955X－114 126（R2=0.998 2）。從圖2 中可知：F1在0.001 95～1.00 mg/mL 質(zhì)量濃度范圍內(nèi)與峰面積呈良好的線性關(guān)系，F(xiàn)2在0.015 6～0.50 mg/mL質(zhì)量濃度范圍內(nèi)與峰面積呈良好的線性關(guān)系。

圖2 2種?；S酮苷的標(biāo)準(zhǔn)曲線Fig.2 Standard curves of two acylated flavonol glycosides

1.5 數(shù)據(jù)處理與分析

數(shù)據(jù)采用3次測(cè)定的平均值，表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差。采用SPSS 26.0 進(jìn)行3 組及以上樣品的組間差異比較分析，并用Duncan新復(fù)極差法進(jìn)行多重比較，以P＜0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義，同時(shí)用獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)比較2組樣本間的差異。用TBtools軟件作熱圖，其余用GraphPad Prism 8.2.0作圖。

2 結(jié)果與分析

2.1 2 種?；S酮苷在不同組織和葉位中的分布情況

為研究2種?；S酮苷在茶樹(shù)不同組織中的分布情況，以‘福建水仙’的根、莖、葉（當(dāng)年新生2～4葉）為試驗(yàn)材料，采用自主建立的HPLC方法，對(duì)F1和F2的含量進(jìn)行了準(zhǔn)確測(cè)定，結(jié)果如表3 所示。從中可知：F1的含量在葉中最高，為1.43 mg/g，而在根中未檢測(cè)到，F(xiàn)1含量表現(xiàn)為葉＞莖＞根，且在根與莖、葉中的含量存在顯著差異（P＜0.05）；F2僅存在于葉中，質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1.04 mg/g，與莖、根中的差異顯著。在葉中，F(xiàn)1含量約為F2的1.38倍。綜上所述，F(xiàn)1和F2主要在葉中分布。

表3 2種酰基化黃酮苷在茶樹(shù)不同組織部位的含量分布Table 3 Content distributions of two acylated flavonol glycosides in different tissues of Camellia sinensis mg/g

為進(jìn)一步探明2種?；S酮苷在不同葉位中的分布情況，對(duì)‘福建水仙’不同葉位的F1、F2含量進(jìn)行了檢測(cè)和分析，結(jié)果如圖3所示。從中可知：F1在第3葉中含量最高，為1.48 mg/g，且F1含量表現(xiàn)為第3葉＞第2葉＞第4葉＞老葉＞第1葉。F2在第2葉中含量最高，為1.09 mg/g，且F2含量表現(xiàn)為第2葉＞第3葉＞老葉＞第4葉＞第1葉。兩者均在第1葉中含量最低。在所有葉位中，F(xiàn)1的含量均高于F2，其中兩者在第4 葉中的含量差距最大，其F1的含量是F2的1.51倍；在第1葉中差距最小，兩者的含量比僅為1.06。

圖3 2種?；S酮苷在不同葉位中的含量分布及含量比值Fig.3 Content distributions and content ratios of two acylated flavonol glycosides in different leaf positions

整體而言，隨著葉片成熟度的增加，F(xiàn)1與F2的含量呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì)。

2.2 2 種?；S酮苷在42 個(gè)茶樹(shù)品種中的分布情況

以42 個(gè)茶樹(shù)品種的2～4 葉為試驗(yàn)材料，采用HPLC 法準(zhǔn)確測(cè)定42 個(gè)品種中F1和F2的含量，得到的結(jié)果如圖4和表4所示。從中可知：42個(gè)茶樹(shù)品種鮮葉中，F(xiàn)1和F2的質(zhì)量分?jǐn)?shù)范圍分別為0～2.31、0～1.56 mg/g。其 中，‘黃 金 菊’的F1含 量 最 高，為2.31 mg/g，而‘本山’和‘綠芽佛手’中未檢出F1?！S金菊’的F2含量最高，為1.56 mg/g，而‘綠芽佛手’‘金面奇蘭’‘中黃2號(hào)’和‘本山’中未檢出F2。

表4 2種?；S酮苷的含量分組及組間變異系數(shù)Table 4 Groups of contents of two acylated flavonol glycosides and coefficients of variation among groups

圖4 2種?；S酮苷在不同茶樹(shù)品種中的含量分布Fig.4 Content distributions of two acylated flavonol glycosides in the leaves of different tea cultivars

根據(jù)F1含量高低，將42個(gè)茶樹(shù)品種分為4組，第1組F1的質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0～0.50 mg/g，在此區(qū)間的品種有19個(gè)，占所測(cè)品種的45.24%，包括‘綠芽佛手’‘本山’‘金面奇蘭’‘黃棪’‘奇蘭’‘福鼎大白’‘中黃2號(hào)’‘大蓬茶’‘清新奇蘭’‘景白2 號(hào)’‘碧云’‘春閨’‘云瑰’‘東陽(yáng)木禾種’‘龍井43’‘春蘭’‘黃金芽’‘北斗’‘金谷綠’，該組的組間變異系數(shù)為4 組中最大（47.50%），說(shuō)明大部分品種包含在此區(qū)間內(nèi)，且區(qū)間內(nèi)品種間F1含量有著較大的差異；第2組F1質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.51～1.00 mg/g，在此區(qū)間的品種有16個(gè)，占所測(cè)品種數(shù)量的38.10%，包括‘鐵觀音’‘白雞冠’‘桃源大葉’‘水金’‘春雨2號(hào)’‘梅占’‘大葉烏龍’‘毛蟹’‘景白1號(hào)’‘肉桂’‘中茶108’‘菜茶’‘金玫瑰’‘福建水仙’‘春萱’‘政和大白’，該組的組間變異系數(shù)在4組中排名第2，為21.29%；第3組為1.01～1.50 mg/g，在此區(qū)間的品種有4 個(gè)，占所測(cè)品種數(shù)量的9.52%，包括‘金羅漢’‘雀舌’‘龍井1號(hào)’‘中黃1號(hào)’，該組的組間變異系數(shù)在4組中排名第4，僅為10.63%；第4組為1.51～2.50 mg/g，在此區(qū)間的品種有3 個(gè)，占所測(cè)品種數(shù)量的7.14%，包括‘鐵羅漢’‘黃金桂’‘黃金菊’，該組的組間變異系數(shù)在4組中排名第3，為15.78%。

根據(jù)F2含量高低，將42 個(gè)茶樹(shù)品種分為3 組，第1組F2質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0～0.50 mg/g，在此區(qū)間的品種有31 個(gè)，占所測(cè)品種的73.81%，包括‘綠芽佛手’‘本山’‘金面奇蘭’‘黃棪’‘奇蘭’‘福鼎大白’‘中黃2號(hào)’‘大蓬茶’‘清新奇蘭’‘景白2號(hào)’‘碧云’‘春閨’‘云瑰’‘東陽(yáng)木禾種’‘龍井43’‘春蘭’‘黃金芽’‘金谷綠’‘鐵觀音’‘白雞冠’‘水金’‘春雨2 號(hào)’‘梅占’‘大葉烏龍’‘毛蟹’‘景白1號(hào)’‘中茶108’‘金玫瑰’等，該組的組間變異系數(shù)在3 組中最大，為49.97%，說(shuō)明大部分品種的F2含量在此區(qū)間，且區(qū)間內(nèi)品種的差異較大；第2組F2質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.51～1.00 mg/g，在此區(qū)間的品種有9 個(gè)，占所測(cè)品種的21.43%，包括‘中黃1號(hào)’‘菜茶’‘肉桂’‘福建水仙’‘桃源大葉’‘北斗’‘春萱’‘政和大白’‘黃金桂’，該組的組間變異系數(shù)在3 組中排名第2，為22.69%；第3 組F2質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1.01～2.00 mg/g，在此區(qū)間的品種有2個(gè)，占所測(cè)品種的4.76%，包括‘鐵羅漢’和‘黃金菊’，該組的組間變異系數(shù)在3 組中最小，為7.64%。結(jié)果表明，2種?；S酮苷的含量分布具有品種特異性。

2.3 遮陰處理對(duì)2 種酰基化黃酮苷含量的影響

為研究光照對(duì)2 種?；S酮苷含量的影響，以F1和F2含量相對(duì)較高的‘福建水仙’‘龍井1 號(hào)’‘政和大白’品種為試驗(yàn)對(duì)象，進(jìn)行田間遮陰處理，采用HPLC 法測(cè)定F1和F2含量，結(jié)果如圖5～6 所示。結(jié)果表明：在遮陰處理后，‘福建水仙’‘龍井1號(hào)’‘政和大白’中F1的含量均顯著降低，降低幅度分別為62.41%、54.27%、70.70%；F2的含量變化存在品種差異，‘福建水仙’‘龍井1 號(hào)’中F2含量降低幅度均在10%范圍內(nèi)，且處理前后不存在顯著差異，而‘政和大白’中F2含量有17.92% 的增幅（P＜0.05）。

圖5 遮陰處理對(duì)2種?；S酮苷含量的影響Fig.5 Effects of shading treatment on the contents of two flavonol glycosides

綜上可知，除個(gè)別品種中F2含量在遮陰處理后有所升高外，遮陰處理會(huì)顯著降低茶樹(shù)鮮葉中F1的含量，且降幅均超過(guò)了50%，F(xiàn)2的含量變化存在品種差異性。

2.4 2 種?；S酮苷在烏龍茶加工過(guò)程中含量的動(dòng)態(tài)變化

以‘福建水仙’鮮葉為原料，基于自主建立的HPLC檢測(cè)方法，對(duì)不同加工階段樣品中F1和F2的含量進(jìn)行測(cè)定，研究2 種?；S酮苷在烏龍茶加工過(guò)程中含量的動(dòng)態(tài)變化，結(jié)果如圖7和表5所示。

由圖7可知：鮮葉中F1和F2含量最高，干燥后F1和F2含量最低，成品茶中F1和F2的含量分別僅為鮮葉中含量的12.66%、20.16%。此外，由表5 可知：各個(gè)工序的樣品分別與前一加工工序的樣品相比，F(xiàn)1和F2含量在殺青時(shí)降幅最大，分別為58.10%、49.44%，F(xiàn)1和F2含量在干燥時(shí)降幅其次，分別為53.97%、40.91%。F1和F2含量在做青階段降幅最小，分別為3.73%、1.11%。

圖6 2種?；S酮苷遮陰處理后的含量變化率Fig.6 Content change rates of two acylated flavonol glycosides after shading treatment

圖7 2種酰基化黃酮苷含量在烏龍茶加工過(guò)程中的動(dòng)態(tài)變化Fig.7 Dynamic changes of two acylated flavonol glycosides contents during the processing of oolong tea

表5 2種?；S酮苷在烏龍茶加工過(guò)程中的含量降低幅度Table 5 Decreasing proportions in the contents of two acylated flavonol glycosides during the processing of oolong tea %

綜上可知，在烏龍茶加工過(guò)程中，2種?；S酮苷含量總體呈下降趨勢(shì)，且不同加工工序?qū)烧叩暮看嬖诓煌潭鹊挠绊憽?/p>

3 討論

本研究基于HPLC 方法，對(duì)茶葉中2 種?；S酮苷F1與F2進(jìn)行了定量分析，研究了茶葉中2 種主要的?；S酮苷在不同組織、葉位、品種中的含量分布規(guī)律，結(jié)果表明：以槲皮素為苷元的F1主要在葉和莖中分布，以山柰酚為苷元的F2僅在葉中分布。此外，F(xiàn)1在第3 葉中含量最大，而F2在第2 葉中含量最大。這與MONOBE等[24]和FORREST等[25]研究中黃酮醇苷在葉片中富集的分布規(guī)律一致。本研究選取的42個(gè)茶樹(shù)品種中，并非在所有品種中都能檢測(cè)到F1和F2，F(xiàn)1、F2含量最高的品種均為福建品種，這表明2 種?；S酮苷的積累規(guī)律存在品種特異性。我們推測(cè)，這可能與茶樹(shù)品種的基因差異以及酰基化黃酮苷合成酶的活性有關(guān)。目前，TOHGE 等[12]已在擬南芥中鑒定出一種黃酮苷酰基化酶2（flavonol-phenylacyltransferase 2, FPT2），但關(guān)于這種酶在茶樹(shù)中是否存在尚不清楚，茶樹(shù)品種中?；S酮苷的含量差異是否與此類酶的活性相關(guān)尚待進(jìn)一步的研究。

通過(guò)田間遮陰處理可見(jiàn)‘福建水仙’‘龍井1號(hào)’‘政和大白’中的F1含量顯著降低，說(shuō)明與大多數(shù)黃酮苷[26-27]相似，這類化合物的合成與光照密切相關(guān)，其受光照調(diào)控的機(jī)制待進(jìn)一步的研究和闡明。

同時(shí)，與FANG等[28]的研究結(jié)果一致，在烏龍茶加工過(guò)程中，F(xiàn)1和F2的含量呈下降趨勢(shì)，其含量均在殺青時(shí)降幅最大，在做青時(shí)降幅最小。由此推測(cè)，殺青時(shí)強(qiáng)烈的濕熱作用有可能促使?；S酮苷發(fā)生降解、轉(zhuǎn)化或聚合形成其他物質(zhì)，導(dǎo)致F1和F2含量大幅降低。

4 結(jié)論

本研究結(jié)果表明：2 種?；S酮苷quercetin-3-O- [(E) -p-coumaroyl- (1→2)] [α-L-arabinopy‐ranosyl-(1→3)]-[β-D-glucopyranosyl-(1→3)-α-Lrhamnopyranosyl-(1→6)]-β-D-glucopyranoside、kaempferol-3-O- [(E) -p-coumaroyl-(1→2)]-[α-Larabinopyranosyl-(1→3)]-[β-D-glucopyranosyl-(1→3)-α-L-rhamnopyranosyl-(1→6)]-β-D-glucopyran‐oside 主要在葉中分布，在根、莖中含量較低，此外，F(xiàn)1主要在成熟度較高的葉中分布；2 種?；S酮苷含量分布具有品種特異性，可能與其合成相關(guān)的酰基化酶合成基因及活性有關(guān)；光照對(duì)茶樹(shù)中2 種酰基化黃酮苷的合成有顯著影響；F1和F2的含量在烏龍茶加工過(guò)程中呈下降趨勢(shì)，在殺青階段降幅最大，在做青階段降幅最小，不同加工工序?qū)Σ铇?shù)中2 種?；S酮苷的含量存在不同程度的影響。?；S酮苷因其多樣的生物學(xué)功能而具有很大的應(yīng)用潛力，在未來(lái)，可根據(jù)?；S酮苷的特性，將其作為一種茶樹(shù)的新資源進(jìn)行開(kāi)發(fā)和利用，以實(shí)現(xiàn)茶葉資源的最大化利用。