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異鉤藤堿對(duì)癲癇大鼠SIRT1/p53/caspase-3通路及海馬神經(jīng)元凋亡的影響

2022-11-16 03:16朱婷鴿何進(jìn)偉陜西師范大學(xué)學(xué)府醫(yī)院內(nèi)科西安710119
中國(guó)免疫學(xué)雜志 2022年18期
關(guān)鍵詞:苯妥英鈉海馬癲癇

雷 琦 朱婷鴿 何進(jìn)偉 趙 琳(陜西師范大學(xué)學(xué)府醫(yī)院內(nèi)科,西安 710119)

癲癇是一種致人衰弱的常見神經(jīng)系統(tǒng)疾病,大腦中異常的電活動(dòng)可導(dǎo)致自發(fā)性癲癇反復(fù)發(fā)作[1]。癲癇發(fā)作有各種病因,從遺傳和先天性到神經(jīng)元異常,這些異??捎扇毖?、感染和炎癥引起[2]。神經(jīng)元凋亡在癲癇的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮極其重要的作用,藥物干預(yù)可能成為治療癲癇的一條新途徑[3]。異鉤藤堿(isorhynchophylline,IRN)為鉤藤屬植物的主要生物堿成分,用于治療心血管和中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病[4]。SIRT1在神經(jīng)退行性疾病中發(fā)揮內(nèi)源性凋亡抑制因子作用。p53可調(diào)節(jié)細(xì)胞生長(zhǎng)和凋亡,SIRT1可通過催化p53去乙?;{(diào)節(jié)細(xì)胞凋亡。在癲癇發(fā)生過程中通過上調(diào)SIRT1表達(dá)可降低p53乙?;?,減輕癲癇發(fā)作[5]。然而,關(guān)于IRN是否可通過調(diào)控SIRT1/p53/caspase-3信號(hào)通路抑制神經(jīng)細(xì)胞凋亡,減輕癲癇的發(fā)作尚未見報(bào)道。因此,本研究擬通過制備癲癇大鼠模型,探究SIRT1/p53/caspase-3信號(hào)通路發(fā)揮的作用,為癲癇的預(yù)防及治療提供新思路。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 雌雄SD大鼠,體質(zhì)量180~200 g,購(gòu)自南方醫(yī)科大學(xué),許可證號(hào):SCXK(粵)2016-0041。實(shí)驗(yàn)遵循“3R”原則。

1.1.2 主要試劑與儀器IRN(純度≥98%,S18310)、苯妥英鈉(純度≥98%,SD9350)購(gòu)自北京索萊寶公司;IL-6 ELISA試劑盒(ab178013)、IL-1β ELISA試 劑 盒(ab197742)、TNF-αELISA試 劑 盒(ab181421)均購(gòu)自美國(guó)Abcam公司;SIRT1一抗(8469)、Acetyl-p53一抗(2525)、cleaved caspase-3一抗(9661)購(gòu)自美國(guó)Cell Signaling公司。蛋白電泳儀、半干轉(zhuǎn)膜儀購(gòu)自美國(guó)Bio-Rad公司;凝膠成像儀購(gòu)自杭州Miulab公司;水迷宮分析系統(tǒng)購(gòu)自上海欣軟信息科技有限公司。

1.2 方法

1.2.1 癲癇大鼠模型制備 采用氯化鋰-毛果蕓香堿經(jīng)典方法制備癲癇大鼠模型[5]。每只大鼠在注射毛果蕓香堿前18~20 h腹腔注射125 mg/kg的氯化鋰。毛果蕓香堿注射(25 mg/kg,腹腔注射)前30 min給予東莨菪堿預(yù)處理(1 mg/kg,腹腔注射)。大鼠癲癇發(fā)作根據(jù)Racine分級(jí)[6],分級(jí)達(dá)到4級(jí)以上表明癲癇大鼠模型建立成功。注射毛果蕓香堿90 min后,給予10%水合氯醛(3 ml/kg)終止癲癇發(fā)作。對(duì)照組大鼠注射等量生理鹽水代替毛果蕓香堿。

1.2.2 動(dòng)物分組及處理 將制備成功的60只癲癇大鼠隨機(jī)分為模型組、IRN低、中、高劑量組和苯妥英鈉組,每組12只。另取12只大鼠為對(duì)照組。根據(jù)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物劑量換算,IRN低、中、高劑量組大鼠分別按照15、30、60 mg/kg劑量腹腔注射。苯妥英鈉組按照30 mg/kg劑量腹腔注射[7]。1次/d,連續(xù)21 d。模型組和對(duì)照組腹腔注射生理鹽水作為對(duì)照。

1.2.3 大鼠癲癇發(fā)作情況檢測(cè) 末次給藥24 h后觀察大鼠癲癇發(fā)作情況,記錄大鼠1 d的發(fā)作次數(shù)和持續(xù)時(shí)間,并進(jìn)行Racine分級(jí)評(píng)分。

1.2.4 大鼠腦電圖檢測(cè) 利用生理信號(hào)采集處理系統(tǒng)記錄各組大鼠腦電波形,分析各組大鼠腦電波的頻率和波幅。

1.2.5 大鼠認(rèn)知能力的檢測(cè)[8]利用Morris水迷宮系統(tǒng)檢測(cè)各組大鼠的認(rèn)知能力,記錄大鼠逃避潛伏期及1 min內(nèi)穿越平臺(tái)原位置的次數(shù)。

1.2.6 樣本采集 麻醉大鼠,尾靜脈取血,血清置于-80℃冰箱保存。斷頭取腦,在4℃下分離雙側(cè)海馬組織,一側(cè)海馬組織置于4%多聚甲醛中固定,另一側(cè)海馬組織液氮速凍保存。

1.2.7 血清炎癥因子含量的檢測(cè) 采用ELISA試劑盒檢測(cè)血清中IL-6、IL-1β、TNF-α水平。

1.2.8 HE染色檢測(cè)海馬組織的病理變化 取出固定的海馬組織,脫水透明,浸蠟包埋,切片,采用HE試劑盒染色,光學(xué)顯微鏡觀察,分析各組大鼠海馬組織的病理變化。

1.2.9 TUNEL法檢測(cè)海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡率 利用TUNEL細(xì)胞凋亡檢測(cè)試劑盒檢測(cè)海馬組織中神經(jīng)細(xì)胞的凋亡情況。每個(gè)實(shí)驗(yàn)組分別隨機(jī)選取5張切片,每張切片選擇5個(gè)具有代表性的高倍視野(×400)。細(xì)胞凋亡率(%)=凋亡細(xì)胞數(shù)/細(xì)胞總數(shù)×100%。

1.2.1 0大鼠海馬組織中SIRT1、p53、caspase-3相關(guān)蛋白表達(dá)水平測(cè)定 取出凍存的海馬組織,研磨加入蛋白裂解液制成勻漿,提取總蛋白,BCA法測(cè)定蛋白含量,SDS-PAGE電泳分離蛋白,轉(zhuǎn)膜,封閉,加入SIRT1、p53、Acetyl-p53、caspase-3、cleaved caspase-3一抗,4℃過夜,清洗后加二抗,37℃孵育40 min。曝光顯色,以β-actin為內(nèi)參蛋白,使用凝膠成像系統(tǒng)分析蛋白的相對(duì)表達(dá)量。

1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS22.0軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì),計(jì)量資料以±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 IRN對(duì)癲癇大鼠癲癇發(fā)作情況的影響 與對(duì)照組相比,模型組大鼠癲癇發(fā)作次數(shù)、持續(xù)時(shí)間及Racine評(píng)分顯著升高(P<0.05);與模型組相比,IRN各劑量組和苯妥英鈉組大鼠癲癇發(fā)作次數(shù)、持續(xù)時(shí)間及Racine評(píng)分降低(P<0.05)。見圖1。

圖1 各組大鼠癲癇發(fā)作情況Fig.1 Epileptic seizures of rats in each group

2.2 IRN對(duì)癲癇大鼠腦電圖的影響 與對(duì)照組相比,模型組癲癇大鼠腦電頻率降低(P<0.05),波幅明顯升高(P<0.05);經(jīng)IRN和苯妥英鈉處理后,明顯逆轉(zhuǎn)癲癇大鼠的腦電圖變化(P<0.05)。見圖2。

圖2 各組大鼠腦電圖分析Fig.2 Electroencephalogram analysis of rats in each group

2.3 IRN對(duì)癲癇大鼠認(rèn)知能力的影響 與對(duì)照組相比,模型組大鼠逃避潛伏期明顯延長(zhǎng)(P<0.05),穿越平臺(tái)原位置次數(shù)明顯減少(P<0.05);經(jīng)IRN和苯妥英鈉處理后,明顯改善癲癇大鼠的認(rèn)知能力(P<0.05)。見圖3。

圖3 各組大鼠認(rèn)知能力比較Fig.3 Comparison of cognitive ability of rats in each group

2.4 IRN對(duì)癲癇大鼠血清中炎癥因子含量的影響 與對(duì)照組相比,模型組大鼠血清IL-6、IL-1β、TNF-α含量顯著增多(P<0.05);經(jīng)IRN和苯妥英鈉處理后,明顯下調(diào)癲癇大鼠的炎癥因子水平(P<0.05)。見圖4。

圖4 各組大鼠炎癥因子水平比較(pg/ml)Fig.4 Comparison of levels of inflammatory factors of rats in each group(pg/ml)

2.5 IRN對(duì)癲癇大鼠海馬組織病理變化的影響對(duì)照組大鼠海馬組織細(xì)胞排列整齊,細(xì)胞膜完整,核仁清晰,染色質(zhì)分布均勻;模型組大鼠海馬組織細(xì)胞排列紊亂稀松,體積腫大,邊緣模糊,大量神經(jīng)元變性壞死,胞核固縮溶解;IRN各劑量組和苯妥英鈉組大鼠海馬組織細(xì)胞損傷程度減輕,排列較為松散,神經(jīng)元變性不明顯。見圖5。

圖5 各組大鼠海馬組織HE染色結(jié)果圖(×200)Fig.5 HE staining results of hippocampus of each group of rats(×200)

2.6 IRN對(duì)癲癇大鼠海馬神經(jīng)細(xì)胞凋亡率的影響 與對(duì)照組相比,模型組大鼠海馬神經(jīng)元凋亡率升高(P<0.05);經(jīng)IRN和苯妥英鈉處理后,明顯減少了癲癇大鼠海馬神經(jīng)元凋亡(P<0.05)。見圖6。

圖6 各組大鼠海馬組織細(xì)胞凋亡率比較Fig.6 Comparison of apoptosis rate of hippocampus of rats in each group

圖8 各組大鼠海馬組織中蛋白表達(dá)水平比較Fig.8 Comparison of protein expression levels in hippocampus of rats in each group

2.7 IRN對(duì)癲癇大鼠海馬組織中SIRT1、p53、caspase-3相關(guān)蛋白表達(dá)水平的影響 與對(duì)照組相比,模型組大鼠海馬組織中Acetyl-p53/p53、cleaved caspase-3/caspase-3蛋白表達(dá)量增多(P<0.05),SIRT1蛋白表達(dá)量減少(P<0.05);經(jīng)IRN和苯妥英鈉處理后,明顯逆轉(zhuǎn)癲癇大鼠蛋白表達(dá)水平(P<0.05)。見圖7、8。

圖7 各組大鼠海馬組織Western blot檢測(cè)結(jié)果Fig.7 Western blot results of rat hippocampus in each group

3 討論

癲癇是一種神經(jīng)科常見病,與腦內(nèi)神經(jīng)元放電的異常同步性有關(guān)[9]。全世界有多達(dá)5 000萬人受到影響,嚴(yán)重危害人類健康,然而其發(fā)病機(jī)制目前尚不明確[10]。鋰廣泛應(yīng)用于精神病學(xué),其潛在用途包括治療躁狂癥和老年癡呆癥等。據(jù)報(bào)道,鋰對(duì)人類的不良影響包括降低癲癇閾值和顳葉癲癇的沉淀[11]。因此,本研究采用氯化鋰-毛果蕓香堿經(jīng)典方法制備癲癇大鼠模型,結(jié)果顯示,造模大鼠海馬組織細(xì)胞排列紊亂稀松,大量神經(jīng)元變性壞死,細(xì)胞凋亡率升高,表明造模大鼠海馬組織出現(xiàn)明顯損傷。且造模后大鼠腦電波頻率降低,波幅升高,認(rèn)知能力減弱,提示模型構(gòu)建成功。

IRN有獨(dú)特的抗阿爾茨海默病活性。LI等[12]研究發(fā)現(xiàn),IRN可減輕氯化鋁誘導(dǎo)的學(xué)習(xí)和記憶障礙。本研究中在IRN的藥效作用下,癲癇大鼠海馬組織細(xì)胞損傷程度減輕,癲癇發(fā)作次數(shù)減少,持續(xù)時(shí)間明顯縮短,腦電頻率升高,波幅降低,認(rèn)知和學(xué)習(xí)能力增強(qiáng),提示IRN可改善癲癇大鼠的海馬組織結(jié)構(gòu)損傷和認(rèn)知能力,減少癲癇發(fā)作。在評(píng)估IRN對(duì)小鼠認(rèn)知缺陷和淀粉樣蛋白病理的預(yù)防作用中發(fā)現(xiàn),IRN可顯著降低IL-6、IL-1β、TNF-α水平,減輕神經(jīng)炎癥反應(yīng)[13]。本研究中,IRN處理后,大鼠血清中IL-6、IL-1β、TNF-α水平顯著下調(diào),結(jié)果與其一致,表明IRN可下調(diào)癲癇大鼠炎癥因子水平。

研究發(fā)現(xiàn),SIRT1/p53/caspase-3信號(hào)通路與大腦神經(jīng)系統(tǒng)密切相關(guān)。腦缺血/再灌注大鼠模型中SIRT1過表達(dá)可減少梗死面積,降低p53蛋白乙?;郊癱aspase-3活性,減少細(xì)胞凋亡和炎癥反應(yīng)。在研究miR-128在癲癇中的功能和分子作用時(shí)發(fā)現(xiàn),抗miR-128可能通過SIRT1/p53/Bax/細(xì)胞色素C/caspase信號(hào)通路發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[14]。本研究中,Acetyl-p53、cleaved caspase-3蛋白表達(dá)升高,SIRT1蛋白表達(dá)降低,神經(jīng)細(xì)胞凋亡率升高,提示SIRT1/p53/caspase-3信號(hào)通路可影響神經(jīng)細(xì)胞凋亡。而IRN處理后,明顯逆轉(zhuǎn)了癲癇大鼠海馬組織中的蛋白表達(dá),表明IRN可能通過調(diào)節(jié)SIRT1/p53/caspase-3信號(hào)通路減輕細(xì)胞凋亡,緩解癲癇癥狀。

綜上所述,IRN可通過SIRT1/p53/caspase-3信號(hào)通路減少海馬組織神經(jīng)元凋亡,抑制大鼠癲癇發(fā)作。然而,癲癇的發(fā)病機(jī)制比較復(fù)雜,IRN對(duì)于癲癇的治療作用仍有待于進(jìn)一步研究。

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