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具有抗炎和促干細(xì)胞活性雙效應(yīng)評價功能的新型結(jié)腸炎小鼠模型的構(gòu)建及應(yīng)用

2022-12-21 05:59:18鮑維廉尤科淵馮桂澤曹心悅沈曉燕
關(guān)鍵詞:沙拉結(jié)腸炎結(jié)腸

鮑維廉 尤科淵 馮桂澤 曹心悅 沈曉燕

(復(fù)旦大學(xué)藥學(xué)院藥理學(xué)教研室 上海 201203)

實驗和臨床證據(jù)表明,腸黏膜屏障功能受損是炎癥性腸?。╥nflammatory bowel disease,IBD)的驅(qū)動因素[1-3]。研究已將黏膜愈合作為IBD治療的關(guān)鍵目標(biāo),意味著患者腸黏膜結(jié)構(gòu)和功能可完全修復(fù),預(yù)示著患者臨床癥狀持續(xù)緩解和手術(shù)風(fēng)險降低[4]。目前治療IBD的藥物[5-6]主要用于控制免疫炎癥,對于黏膜損傷的修復(fù)非常有限,在以黏膜愈合為主要終點的臨床試驗中,藥效仍不能令人滿意[7-9]。因此,尋找既能控制炎癥又能促進(jìn)黏膜愈合的新靶標(biāo),并在此基礎(chǔ)上開發(fā)治療IBD的新藥物成為迫切需要解決的醫(yī)學(xué)問題。

在腸隱窩底部的Lgr5+細(xì)胞群具有成體干細(xì)胞潛能的腸干細(xì)胞(intestinal stem cell,ISC),可以在黏膜受損的情況下完成上皮系統(tǒng)的更新。在IBD患者中,Lgr5+ISCs的減少與疾病活動相關(guān)[10-13]。ISCs的丟失和功能異常是IBD慢性、反復(fù)發(fā)作性炎癥的重要因素[14]。而將ISCs移植到實驗性結(jié)腸炎動物的黏膜損傷部位,可以加速黏膜愈合[15-17]。Lgr5-EGFP-IRES-creERT2小鼠可以完成對ISCs的示蹤和分選。該小鼠攜帶Lgr5-EGFP-IRESCreERT2基因敲入型等位基因,破壞了內(nèi)源Lgr5(Gpr49)基因功能,并表達(dá)來自Lgr5啟動子/增強(qiáng)子驅(qū)動的EGFP和CreERT2融合蛋白。該轉(zhuǎn)基因小鼠純合子不能存活,但是Lgr5-EGFP-IRESCreERT2雜合小鼠可存活且可繁育。在該種小鼠的腸隱窩基底柱狀細(xì)胞(即ISCs)中可觀察到EGFP熒光。Cre-ERT2融合蛋白由Cre重組酶和三重突變形式的人雌激素受體組成,該受體可與熱休克蛋白90(heat shock protein 90,HSP90)結(jié)合。由于HSP90的阻擋,雌激素受體結(jié)合的融合蛋白無法進(jìn)入細(xì)胞核。雌激素和雌激素受體結(jié)合使融合蛋白擺脫HSP90,進(jìn)入細(xì)胞核內(nèi)發(fā)揮Cre酶活性。生理濃度下,受體與其天然配體(17β-雌二醇)不發(fā)生結(jié)合,但會與合成的雌激素受體配體4-羥基他莫昔芬或他莫昔芬結(jié)合,故可以通過注射他莫昔芬實現(xiàn)對Cre酶系統(tǒng)的控制。Lgr5-EGFP-IRES-creERT2小鼠與攜帶loxP側(cè)翼序列的小鼠雜交獲得的雙基因敲除小鼠受他莫昔芬誘導(dǎo)后,Cre酶介導(dǎo)的重組導(dǎo)致后代中表達(dá)Lgr5的細(xì)胞中l(wèi)oxP位點間的基因序列被敲除。如果沒有flox基因片段的存在,Lgr5-EGFP-IRES-creERT2僅 發(fā) 揮 對Lgr5陽 性細(xì)胞的熒光示蹤功能,其熒光強(qiáng)度在一定程度上可以表征小鼠腸黏膜屏障的自我修復(fù)能力。

Il10基因敲除小鼠是一種廣泛使用的結(jié)腸炎模型[18]。Il10-/-小鼠通常在8~12周齡開始發(fā)生漸進(jìn)的、不連續(xù)的透壁型炎癥,炎癥從右結(jié)腸開始,隨著疾病進(jìn)展向遠(yuǎn)端延伸,可累積小腸;同時出現(xiàn)明顯的IBD癥狀,如體質(zhì)量下降、稀便、便血、脫肛等。發(fā)病機(jī)制與人類IBD相似,病情呈漸進(jìn)式發(fā)展,可用于早期干預(yù)研究,是研究IBD的理想模型。

本研究中,我們用Il10-/-小鼠和Lgr5-EGFP小鼠雜交得到Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠。該基因型小鼠經(jīng)誘導(dǎo)形成慢性結(jié)腸炎模型,可以同時評價藥物對炎癥活動和干細(xì)胞活性的影響。成功建立這一模型可為結(jié)腸炎潛在藥物/治療手段的體內(nèi)實驗提供一個可靠的雙靶點驗證的動物模型。

材料和方法

實驗動物L(fēng)gr5-EGFP-IRES-creERT2(Lgr5-EGFP)和B6.129P2-Il10tm1Cgn/J(Il10-/-)小鼠均引進(jìn)自美國Jackson實驗室,引進(jìn)后擴(kuò)群繁殖,并將兩種基因型小鼠雜交繁殖。繁殖過程中所有小鼠均飼養(yǎng)于復(fù)旦大學(xué)藥學(xué)院實驗動物中心SPF級動物房,實驗動物使用許可證號:SCXK(滬)2014-0002。溫度(25±2)℃,濕度50%~60%,無菌飲水,自由進(jìn)食和飲水,保持12 h光-暗循環(huán)。經(jīng)鑒定得到目標(biāo)基因型小鼠Il10-/-;Lgr5-EGFP及其對照基因型小鼠WT;Lgr5-EGFP。進(jìn)行體內(nèi)實驗的小鼠均為雄性,8~10周齡,體質(zhì)量18~22 g,實驗過程中飼養(yǎng)條件同上。本研究通過復(fù)旦大學(xué)藥學(xué)院動物倫理委員會審批(批準(zhǔn)號:2019-03-YL-SXY-01)。

小鼠的基因鑒定取3周齡小鼠,按性別分籠并剪鼠耳標(biāo)記,剪3~5 mm鼠尾,提取DNA,對小鼠基因型進(jìn)行PCR鑒定。對于Lgr5-EGFP,根據(jù)待測樣 品 數(shù),將 表1中 的3種 引 物 以 每 份0.6、0.5和0.8 μL的體積混合,加入5×樣本體積的2×PCR Mix和1.1×樣本體積的DEPC水,制成鑒定工作液。將8 μL鑒定工作液加入2 μL DNA樣本中,得到完整的鑒定反應(yīng)體系,置入PCR儀中,按照表2中的程序進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng),得到鑒定產(chǎn)物1。對于Il10,根據(jù)待測樣品數(shù),將表3中的3種引物以每份1.0、0.5和0.5 μL的體積混合,加入5×樣本體積的2×PCR Mix和1×樣本體積的DEPC水,制成鑒定工 作液。將8 μL鑒定 工 作液 加 入2 μL DNA樣 本中,得到完整的鑒定反應(yīng)體系,置入PCR儀中,按照表4中的程序進(jìn)行擴(kuò)增反應(yīng),得到鑒定產(chǎn)物2。對鑒定產(chǎn)物1和2進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳,根據(jù)最終條帶所對應(yīng)的Marker判斷分子量,進(jìn)而判斷基因型。每只小鼠的DNA樣本將進(jìn)行3次以上獨立的PCR及凝膠電泳,確保結(jié)果可靠。

表1 Lgr5-EGFP小鼠DNA鑒定引物序列Tab 1 Primers for DNA identification of Lgr5-EGFP mice

表2 Lgr5-EGFP小鼠DNA鑒定的擴(kuò)增反應(yīng)Tab 2 Amplification reaction for DNA identification of Lgr5-EGFP mice

表3 Il10-/-小鼠鑒定PCR引物Tab 3 Primers for DNA identification of Il10-/-mice

表4 Il10-/-小鼠鑒定的擴(kuò)增反應(yīng)Tab 4 Amplification reaction for DNA identification of Lgr5-EGFP mice

體內(nèi)實驗取6只8周齡雄性WT;Lgr5-EGFP基因型小鼠作為對照組;Il10-/-;Lgr5-EGFP基因型小鼠共計18只,采用隨機(jī)數(shù)字表法分為3組:模型組、美沙拉嗪低劑量組和高劑量組,每組6只。模型組及給藥組給予飲用水配制的3% DSS溶液4天,在SPF環(huán)境下誘導(dǎo)結(jié)腸炎,每2天換一次DSS溶液,對照組小鼠正常飲水。美沙拉嗪采用0.5%羧甲基纖維素鈉配置成混懸液,發(fā)病后開始灌胃給藥,低劑量組為50 mg·kg-1·d-1,高劑量組為150 mg·kg-1·d-1,每周記錄小鼠體質(zhì)量,觀察并記錄小鼠稀便、血便、脫肛和體質(zhì)量減輕等情況,根據(jù)表5進(jìn)行評分。7周后實驗結(jié)束,分離各實驗樣本,進(jìn)行檢測。

表5 疾病活動指數(shù)評分標(biāo)準(zhǔn)Tab 5 Criteria of disease activity index scoring

ELISA檢測小鼠炎癥因子使用水合氯醛麻醉小鼠,壓迫眼球,使眼球突出,用鑷子或止血鉗迅速摘除眼球并處死。獲得的外周血在室溫靜置2 h后,4℃下3 000×g離 心15 min,上 清 即 為 血 清,-80℃冰箱儲存。使用商品化的ELISA試劑盒檢測炎癥因子,并根據(jù)制造商提供的說明書進(jìn)行實驗。通用步驟按濃度梯度稀釋標(biāo)準(zhǔn)品;根據(jù)實驗孔(包括空白和標(biāo)準(zhǔn)品)數(shù)量,確定所需的板條數(shù)目;每孔加入不同稀釋度的標(biāo)準(zhǔn)品或待測樣品100 μL,空白孔為稀釋液;加入一抗工作液或直接用膜封板,37℃孵育2 h;加入洗滌液洗滌,在濾紙上倒扣去除殘留液體,重復(fù)3次。加入酶標(biāo)記二抗,37℃孵育30 min;每孔加入漂洗液150 μL,洗板,扣去殘留液體,重復(fù)3次;加入現(xiàn)配的TMB顯色液,37℃孵育10~30 min,加入終止液,停止反應(yīng);反應(yīng)終止后10 min內(nèi),用酶標(biāo)儀在對應(yīng)波長處測得OD值;根據(jù)稀釋標(biāo)準(zhǔn)品擬合標(biāo)準(zhǔn)曲線,將待測樣品吸光度值代入標(biāo)準(zhǔn)曲線,計算樣品濃度。

RT-qPCR檢測小鼠結(jié)腸組織mRNA分離獲得小鼠結(jié)腸樣本,用無菌PBS沖洗結(jié)腸,去除腸腔內(nèi)糞便。剪碎結(jié)腸組織,用組織勻漿機(jī)打碎,加入Trizol,離心取上清,室溫靜置10 min。向完成裂解的樣本中加入200 μL(Trizol體積的1/5)氯仿,劇烈振搖15 s,靜置2~3 min;分層后,4℃下12 000×g離心15 min,吸取最上層水相(400~500 μL),轉(zhuǎn)移至無RNase的EP管中。加入等體積(400~500 μL)異丙醇,輕柔顛倒,靜置10 min,可見白色絮狀物。4℃下2 000×g離心10 min,棄去上清。加入1 mL DEPC水和無水乙醇現(xiàn)配的75%乙醇,槍頭吹打混勻,洗滌沉淀,7 500×g離心5 min,棄上清,用移液槍吸盡殘留液體。通風(fēng)櫥內(nèi)室溫干燥5~10 min,根據(jù)沉淀體積加入適量DEPC水溶解RNA。使用Nano Drop 2000(美 國ThermoFisher公 司)檢 測RNA濃度,調(diào)整各樣本至同一濃度范圍。使用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒和SYBR-qPCR試劑盒[翌圣生物科技(上海)股份有限公司]進(jìn)行RT-qPCR檢測炎癥因子的表達(dá),qPCR的引物如表6所示。

表6 qPCR引物序列Tab 6 Primer sequences for qPCR

冰凍切片的制作和DAPI染色去除小鼠結(jié)腸的內(nèi)糞便,置于4%多聚甲醛中固定24 h以上。將組織先后置于15%和30%的蔗糖溶液內(nèi),在4℃冰箱中脫水。濾紙濾干脫水的組織,將目的部位修平,切面朝上放于樣本托中,OCT包埋劑滴至周圍,置于冰凍切片機(jī)的速凍臺上,直至OCT凝固,切片,切片厚度8~10 μm,于-20℃保存。載玻片用PBS(pH=7.4)洗滌3次。晾干,DAPI染色10 min,滴加含抗熒光淬滅劑的封片劑,封片。于Zeiss 710熒光共聚焦顯微鏡下觀察并采集圖像。

統(tǒng)計學(xué)處理用GraphPad Prism 8.0軟件對數(shù)據(jù)進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析及制圖,所有數(shù)據(jù)用±s表示。血清炎癥因子、結(jié)腸炎癥因子mRNA表達(dá)和結(jié)腸部位Lgr5+ISCs觀察的定量數(shù)據(jù)比較采用單因素方差分析,并采用Bonferroni法進(jìn)行組間比較;小鼠體質(zhì)量比較采用兩因素重復(fù)測量方差分析,并采用Bonferroni法進(jìn)行組間比較;小鼠疾病活動指數(shù)的比較采用Kruskal-Wallis分析,并采用Dunn’s法進(jìn)行組間比較。P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

結(jié) 果

Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠基因鑒定對小鼠鼠尾提取的基因組DNA,使用特定的引物序列進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并對產(chǎn)物進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳。根據(jù)所示條帶(圖1)判斷小鼠的基因型。Lgr5-EGFP基因在174和298 bp處都有清晰條帶,為Lgr5-EGFP雜合子小鼠。Il10基因僅在137 bp處有清晰條帶,為WT小鼠;Il10基 因 僅 在312 bp處有清晰條帶,為Il10-/-純合子小鼠。①~⑥號小鼠的基因鑒定結(jié)果(圖1):③號(泳道3和9)和⑤號(泳道5和11)為WT;Lgr5-EGFP小鼠,②號(泳道2和8)為Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠。

圖1 小鼠基因型鑒定Fig 1 Genotype identification of mice

美沙拉嗪有效緩解Il10-/-;Lgr5-EGFP模型的體質(zhì)量下降和疾病評分對Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠進(jìn)行持續(xù)4天的3% DSS誘導(dǎo),可在SPF環(huán)境下形成慢性結(jié)腸炎模型。為驗證該模型,我們設(shè)置了WT;Lgr5-EGFP小鼠的對照組和長期給予50或150 mg·kg-1·d-1美沙拉嗪的治療組。實驗過程中發(fā)現(xiàn),正常對照組小鼠體質(zhì)量平穩(wěn),飲食、飲水正常,精神狀態(tài)佳,活動頻繁,糞便形態(tài)未見明顯異常;以開始給予DSS誘導(dǎo)為第0周,模型組小鼠在誘導(dǎo)后前2周體質(zhì)量驟降,第3周體質(zhì)量略有恢復(fù),第4周開始體質(zhì)量再次持續(xù)下降,飲食少,食欲差,精神狀態(tài)萎靡,出現(xiàn)腹瀉、肉眼血便、膿便等癥狀。而相比于模型組,治療組體質(zhì)量下降減緩,小鼠稀便和血便情況明顯減少,各項癥狀得到明顯改善。結(jié)果顯示(圖2),在體質(zhì)量變化和疾病活動評分上,全程模型組和對照組都存在顯著差異;美沙拉嗪低劑量組在第2、5、6和7周體質(zhì)量降低顯著改善,在第2、6和7周疾病活動評分顯著改善;美沙拉嗪高劑量組在第1、2、4、5、6和7周體質(zhì)量降低顯著改善,在第2~7周疾病活動評分顯著改善。

圖2 DSS誘導(dǎo)的Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠體質(zhì)量和疾病活動指數(shù)變化Fig 2 Body weight and disease activity index changes of DSS-induced Il10-/-;Lgr5-EGFP mice

美沙拉嗪有效抑制Il10-/-;Lgr5-EGFP模型的炎癥因子的表達(dá)和組織病變對小鼠的血清炎癥因子進(jìn)行ELISA檢測(圖3),和對照組相比,模型組小鼠血清中IL-12/23 p40、IL-17A、TNF-α和IFN-γ等炎癥因子含量顯著增加(P<0.001)。50和150 mg·kg-1·d-1的美沙拉嗪均可顯著抑制Il10-/-;Lgr5-EGFP模型組血清中各炎癥因子水平(P<0.001)。150 mg·kg-1·d-1美沙拉嗪對血清中IL-12/23 p40和TNF-α的 抑 制效果優(yōu)于50 mg·kg-1·d-1美沙拉嗪(P<0.01)。

圖3 DSS誘導(dǎo)的Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠血清炎癥因子Fig 3 Inflammatory cytokines in serum of DSS-induced Il10-/-;Lgr5-EGFP mice

我們通過RT-qPCR定量檢測了各組小鼠結(jié)腸組織中炎癥因子的mRNA表達(dá)水平。和對照組相比,模型組小鼠結(jié)腸組織中Il12/23 p40、Il17a、Tnf-a和Ifng的mRNA表達(dá)水平顯著上升(P<0.001),50和150 mg·kg-1·d-1美沙拉嗪均可顯著抑制模型組各炎癥 因子的mRNA表達(dá)水平,150 mg·kg-1·d-1美沙拉 嗪 對Il12/23 p40、Tnf-a和IfngmRNA表 達(dá) 的 抑制作用顯著優(yōu)于50 mg·kg-1·day-1美沙拉嗪(圖4)。

圖4 DSS誘導(dǎo)的Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠結(jié)腸炎癥因子mRNA表達(dá)Fig 4 Colonic inflammatory cytokine mRNA expression of DSS-induced Il10-/-;Lgr5-EGFP mice

病理組織學(xué)觀察結(jié)果顯示,模型組小鼠結(jié)腸出現(xiàn)嚴(yán)重潰瘍、隱窩結(jié)構(gòu)破壞和嚴(yán)重的炎癥細(xì)胞浸潤,而美沙拉嗪組的炎癥細(xì)胞浸潤明顯減少,有大量完整隱窩結(jié)構(gòu)保留,表明該模型引起的慢性炎癥對上皮屏障產(chǎn)生了明顯破壞,且可被陽性藥緩解。

這些結(jié)果表明,Il10-/-;Lgr5-EGFP模型小鼠具有明顯的炎癥和上皮屏障損失的表型,且可以被美沙拉嗪顯著抑制。

美沙拉嗪有效挽救Il10-/-;Lgr5-EGFP模型的ISCs丟失對小鼠結(jié)腸的冰凍切片進(jìn)行DAPI染色,在熒光共聚焦顯微鏡下觀察Lgr5-EGFP的表達(dá)情況。對照組小鼠結(jié)腸隱窩底部存在一定數(shù)量的Lgr5-EGFP陽性細(xì)胞,而模型組小鼠結(jié)腸隱窩底部的Lgr5-EGFP陽性細(xì)胞數(shù)明顯減少(圖5)。美沙拉嗪可以在一定程度上恢復(fù)小鼠結(jié)腸隱窩底部的Lgr5-EGFP陽性細(xì)胞數(shù)量。這些結(jié)果表明,Il10-/-;Lgr5-EGFP模型表現(xiàn)出類似CD患者Lgr5+ISCs丟失的表型,而美沙拉嗪可以修復(fù)ISCs丟失(圖6)。

圖5 DSS誘導(dǎo)的Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠結(jié)腸切片的HE染色圖片F(xiàn)ig 5 HE staining images of colon sections in DSS-induced Il10-/-;Lgr5-EGFP mice

圖6 DSS誘導(dǎo)的Il10-/-;Lgr5-EGFP小鼠結(jié)腸部位Lgr5+ISCs觀察Fig 6 Observation of Lgr5+ISCs in colon of DSS-induced Il10-/-;Lgr5-EGFP mice

討 論

ISCs在上皮屏障恢復(fù)過程中扮演著重要角色,被認(rèn)為是炎性腸病潛在治療靶點[10-16]。目前對于ISCs在IBD中作用的研究采用的是7天DSS誘導(dǎo)的急性結(jié)腸炎模型。急性DSS結(jié)腸炎更適用于研究上皮破壞后黏膜內(nèi)穩(wěn)態(tài)的暫時性喪失以及初始損傷后黏膜愈合的機(jī)制,但該模型并不能體現(xiàn)人類IBD特有的慢性和復(fù)發(fā)性特征,其作為IBD藥物篩選模型的合理性仍存在爭議[19]。因此,我們選擇了和人類IBD更為接近的Il10-/-小鼠和干細(xì)胞示蹤的Lgr5-EGFP小鼠雜交,獲得可以通過綠色熒光蛋白觀察ISCs數(shù)量的慢性結(jié)腸炎模型小鼠。在SPF級飼養(yǎng)環(huán)境中,每只Il10-/-小鼠自發(fā)出現(xiàn)結(jié)腸炎表型的周齡并不相同,這可能會提升其作為藥物評價模型的不可控性。因此,我們對相同周齡的Il10-/-小鼠采用3% DSS連續(xù)誘導(dǎo)4天,造成小鼠腸黏膜的初始損傷,之后恢復(fù)正常飲水,使小鼠產(chǎn)生持續(xù)的慢性結(jié)腸炎。我們觀察到在誘導(dǎo)7周后,Il10-/-小鼠出現(xiàn)明顯的Lgr5+ISCs耗竭,這和在人類CD中觀察到的ISCs減少相一致[10]。但是,我們也發(fā)現(xiàn),不經(jīng)DSS初始誘導(dǎo)的Il10-/-小鼠會自發(fā)產(chǎn)生輕度結(jié)腸炎癥狀,并出現(xiàn)明顯的隱窩增生異常。這種上皮細(xì)胞過度增殖的表現(xiàn)提示,IL-10缺失在上皮屏障未遭到破壞的情況下,可能并不會造成ISCs耗竭。這種模型上的差異同樣體現(xiàn)在藥物干擾上。有研究報道,美沙拉嗪對于DSS誘導(dǎo)的大鼠腸炎模型中的Lgr5+ISCs并沒有顯著的保護(hù)作用[20]。而在本模型中,美沙拉嗪有效促進(jìn)了Lgr5+ISC的恢復(fù)。推測原因可能是:DSS模型的作用機(jī)制源于DSS對上皮細(xì)胞的毒性,進(jìn)而破壞黏膜屏障,導(dǎo)致共生菌的易位,引發(fā)急性炎癥;而本模型盡管使用了DSS作為初始誘導(dǎo)劑,但之后形成的慢性腸炎更接近IL-10缺失導(dǎo)致的免疫缺陷型腸炎,主要由Treg下調(diào)導(dǎo)致的免疫耐受受損引起[21]。有研究指出,美沙拉嗪通過芳香烴受體增加結(jié)腸中TGF-β1活性形式的水平,從而促進(jìn)CD4+Treg細(xì)胞分化[22],且TGF-β1已經(jīng)被證明是ISCs自我更新的必要信號途徑[23]。這樣就解釋了美沙拉嗪在Treg缺失主導(dǎo)Il10-/-小鼠模型表現(xiàn)出更好的ISCs恢復(fù)效果。

綜上所述,我們開發(fā)了一種具有炎癥免疫和ISCs雙靶向效應(yīng)評價功能的新型炎癥性腸病小鼠模型,并用美沙拉嗪治療證明了該模型的可行性,對于篩選新型IBD藥物具有重要意義。但本文在對照組設(shè)置上存在一些缺陷,缺少野生型小鼠的DSS誘導(dǎo)組作為對照。據(jù)文獻(xiàn)報道,野生型小鼠給予DSS足以誘導(dǎo)急性結(jié)腸炎模型,但會在2周內(nèi)開始逐步恢復(fù)至接近正常體質(zhì)量水平,理論上來說,不會像Il10-/-小鼠給予DSS模型一樣形成慢性炎癥。出于完整的實驗設(shè)計考慮,應(yīng)當(dāng)設(shè)置一組野生基因型小鼠給予4天DSS誘導(dǎo)作為完整模型的對照。

作者貢獻(xiàn)聲明鮑維廉實驗設(shè)計和執(zhí)行,數(shù)據(jù)收集和分析,論文撰寫和修改。尤科淵,馮桂澤,曹心悅實驗執(zhí)行,數(shù)據(jù)收集。沈曉燕論文構(gòu)思和審閱,基金申請,技術(shù)支持。

利益沖突聲明所有作者均聲明不存在利益沖突。

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