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綠蘿組織培養(yǎng)和遺傳轉(zhuǎn)化條件優(yōu)化

2023-01-16 15:11陸玉建李雪晗袁新惠許悅朱麗暉田夢菲田玉雪邱欣欣
山西農(nóng)業(yè)科學(xué) 2023年1期
關(guān)鍵詞:綠蘿葉柄侵染

陸玉建,李雪晗,袁新惠,許悅,朱麗暉,田夢菲,田玉雪,邱欣欣

(1.濱州學(xué)院 生物與環(huán)境工程學(xué)院,山東 濱州 256603;2.山東省黃河三角洲野生植物資源開發(fā)利用工程技術(shù)研究中心,山東 濱州 256603;3.山東省黃河三角洲生態(tài)脆弱帶工程技術(shù)研究中心,山東 濱州 256603)

綠蘿為天南星科綠蘿屬常綠觀葉植物,具有較強的吸收甲醛的能力,主要通過扦插的方式進行繁殖[1-2]。綠蘿扦插繁殖時生長速度慢,繁殖系數(shù)低,難以進行優(yōu)良品種的選育。而植物組織培養(yǎng)技術(shù)則可彌補上述不足。為此,郭英等[3]以莖段為外植體進行組織培養(yǎng),結(jié)果表明,愈傷組織誘導(dǎo)最適培養(yǎng)基為MS+3.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA+0.4 mg/L 2,4-D,分化培養(yǎng)基為MS+3.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA,生根培養(yǎng)基為1/2 MS+0.2 mg/L NAA。范俊崗[4]以綠蘿葉片為外植體進行離體培養(yǎng),結(jié)果顯示,愈傷組織誘導(dǎo)最適培養(yǎng)基為MS+0.2 mg/L TDZ+ 0.5 mg/L NAA,不定芽誘導(dǎo)培養(yǎng)基為MS+0.1 mg/L NAA+1.0 mg/L 6-BA和MS+0.5 mg/L NAA+2.0 mg/L 6-BA,生根誘導(dǎo)培養(yǎng)基為1/2 MS+0.1 mg/L NAA+0.2 mg/L IBA。陳廣玉[5]研究發(fā)現(xiàn),綠蘿葉片愈傷組織誘導(dǎo)最適培養(yǎng)基為MS+2.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA+0.5 mg/L 2,4-D,分化培養(yǎng)基為MS+2.0 mg/L 6-BA+0.5 mg/L NAA,生根培養(yǎng)基為1/2 MS+0.1 mg/L NAA?,F(xiàn)階段,綠蘿高效穩(wěn)定的再生體系尚未建立,轉(zhuǎn)基因方面的研究還較少。為提高外源基因的轉(zhuǎn)化效率,有必要繼續(xù)優(yōu)化綠蘿組織培養(yǎng)條件。

甲醛是一種易揮發(fā),帶有強烈刺激性氣味的氣體[6]。植物凈化法去除甲醛,不僅具有簡單、經(jīng)濟、科學(xué)的優(yōu)點,又有美學(xué)價值與生態(tài)功能,已成為備受青睞的綠色修復(fù)技術(shù)[7]。高等植物去除甲醛與甲醛脫氫酶(FALDH)密切相關(guān),在FALDH的參與下,甲醛方可進入植物組織并最終轉(zhuǎn)化為CO2[8]。目前已經(jīng)擬南芥、玉米、綠蘿等多種植物中分離獲得了FALDH[9-11]。擬南芥中AtFALDH過表達,擬南芥甲醛吸收能力明顯增強[12]。將綠蘿FALDH基因轉(zhuǎn)入擬南芥,擬南芥甲醛吸收效率同樣提高[11,13]。雖然綠蘿吸收甲醛的能力較強,但仍有待于進一步提高,而通過基因工程技術(shù)提高綠蘿吸收甲醛的能力無疑是一種非常有效的途徑。目前,有關(guān)FALDH基因轉(zhuǎn)化綠蘿的研究尚未見相關(guān)報道,本試驗在建立綠蘿高頻再生體系的基礎(chǔ)上,將AtFALDH導(dǎo)入綠蘿中,試圖實現(xiàn)外源基因的高效表達,進而增強綠蘿吸收甲醛的能力。

1 材料和方法

1.1 試驗材料

供試材料為小葉綠蘿(Eipremnum aureum),大腸桿菌DH5α和根癌農(nóng)桿菌GV3101。

1.2 試驗方法

1.2.1 綠蘿離體再生 以綠蘿葉片和葉柄為外植體,分別用70%酒精消毒30 s,用0.1%升汞處理15 min,無菌水沖洗5~6次。將外植體接入愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基(表1,共9個處理),30 d后觀察愈傷組織的誘導(dǎo)情況,統(tǒng)計葉片和葉柄愈傷組織誘導(dǎo)率。將葉片或葉柄誘導(dǎo)產(chǎn)生的愈傷組織接種入分化培養(yǎng)基(表2,共9個處理),30 d后觀察不定芽的分化情況,統(tǒng)計愈傷組織不定芽誘導(dǎo)率。將不定芽插入生根培養(yǎng)基中(表3,共6個處理),30 d后統(tǒng)計不定芽的生根率。

1.2.2 目的基因的克隆和表達載體構(gòu)建 擬南芥甲醛脫氫酶基因AtFALDH引物序列(下劃線代表酶切位點的位置)如下,AtFALDHLP:5'-GGGGAG CTCATGGCGACTCAAGGTCAGGTTATCA-3'(SacⅠ),AtFALDHRP:5'-GGGTCTAGATTT GCTGGTATCGAGGACACAACG-3'(XbaⅠ)。提取擬南芥RNA,高保真PCR擴增AtFALDH基因。

將PCR擴增的AtFALDH基因插入pMD18-T載 體,用SacⅠ-XbaⅠ分 別 酶 切pMD18-TAtFALDH和p2300-gfp,將回收產(chǎn)物進行連接,從而構(gòu)建p2300-AtFALDH-gfp表達載體。

1.2.3 綠蘿遺傳轉(zhuǎn)化 培養(yǎng)含p2300-AtFALDHgfp表達載體的農(nóng)桿菌,使其OD600值分別為0.2、0.5和1.0,離心后用MS培養(yǎng)基重懸浮,將綠蘿葉柄愈傷組織置于菌液中侵染5、10 min或15 min,共培養(yǎng)1、2 d或3 d;然后轉(zhuǎn)入含抗生素的培養(yǎng)基中進行篩選,誘導(dǎo)抗性芽。根據(jù)綠蘿愈傷組織的分化率確定適宜的轉(zhuǎn)化條件。切取抗性不定芽,誘導(dǎo)生根,進而獲得轉(zhuǎn)基因綠蘿。

1.3 數(shù)據(jù)處理

利用Excel 2007進行數(shù)據(jù)統(tǒng)計,通過SPSS 17.0軟件中單因素方差分析對數(shù)據(jù)之間的差異性進行比較。

2 結(jié)果與分析

2.1 綠蘿再生體系優(yōu)化

2.1.1 植物生長物質(zhì)對外植體愈傷組織誘導(dǎo)的影響 統(tǒng)計分析結(jié)果表明(表1),綠蘿葉片在AC3、AC4、AC6、AC8和AC9培養(yǎng)基中均可誘導(dǎo)產(chǎn)生愈傷組織,其愈傷組織誘導(dǎo)率介于9.1%~61.5%。其中,AC9的效果最好,葉片產(chǎn)生愈傷組織的量也較多,與其他培養(yǎng)基相比,愈傷組織誘導(dǎo)率差異顯著。葉柄在9種愈傷組織誘導(dǎo)培養(yǎng)基中均可產(chǎn)生愈傷組織,其中效果最好的為AC4,愈傷組織的誘導(dǎo)率達到97.8%,不僅產(chǎn)生愈傷組織的量較多,而且生長比較旺盛;其次是AC3和AC9,愈傷組織的誘導(dǎo)率也在90%以上,這3種培養(yǎng)基中愈傷組織誘導(dǎo)率和其他大部分培養(yǎng)基相比,存在較顯著的差異;再次為AC6,其愈傷組織的誘導(dǎo)率接近90%;其他幾種培養(yǎng)基的誘導(dǎo)效果則稍差。

表1 綠蘿葉片和葉柄愈傷組織誘導(dǎo)率變化Tab.1 Callus induction rate change of leaves and petioles of Eipremnum aureum

2.1.2 植物生長物質(zhì)對綠蘿不定芽誘導(dǎo)的影響 統(tǒng)計分析結(jié)果表明(表2),葉片誘導(dǎo)產(chǎn)生的愈傷組織只有在A4、A8、A9中方可誘導(dǎo)產(chǎn)生明顯的不定芽,其中,A8中不定芽生長良好,分化率可以接近100%,和其他8種培養(yǎng)基中不定芽誘導(dǎo)率之間存在顯著的差異;其次為A4和A9,分化率約為67%,其余培養(yǎng)基中無明顯不定芽產(chǎn)生。葉柄誘導(dǎo)產(chǎn)生的愈傷組織在這9種培養(yǎng)基中都有不定芽的分化,其 中,A2、A3、A4、A6、A8、A9的 分 化 率 均 接 近100%,和其他3種培養(yǎng)基中不定芽誘導(dǎo)率之間存在顯著的差異。其次為A5、A7,其芽的分化率也在50%~70%,芽分化明顯,但分化率較低。較差的為A1,芽分化率30%左右??傮w來說,A9的效果最佳,不僅不定芽分化率較高,而且不定芽數(shù)量較多,生長旺盛;葉柄愈傷組織誘導(dǎo)不定芽效果明顯要優(yōu)于葉片。

表2 綠蘿葉片和葉柄愈傷組織分化率變化Tab.2 Callus differentiation rate change of leaves and petioles of Eipremnum aureum

2.1.3 植物生長物質(zhì)對綠蘿不定芽生根的影響 將葉片或葉柄誘導(dǎo)產(chǎn)生的不定芽切下,進行生根培養(yǎng),30 d后統(tǒng)計不定芽的生根情況。結(jié)果表明,在6種培養(yǎng)基中均有根的生成,而且根的長勢較好,生根率都為100%,其中R2生根效果最好,根粗壯,長度合適,須根數(shù)量適宜,利于移栽成活(表3)。

表3 綠蘿不定芽生根率變化Tab.3 Rooting rate change of adventitious buds of Eipremnum aureum

2.2 綠蘿的離體再生

將綠蘿葉片接種到培養(yǎng)基AC9中,30 d后可誘導(dǎo)產(chǎn)生少量乳白色的愈傷組織(圖1-A)。繼代培養(yǎng)14 d后,愈傷組織的量明顯增加(圖1-B)。將愈傷組織轉(zhuǎn)入A8中進行分化培養(yǎng),7 d左右即可有不定芽產(chǎn)生(圖1-C),30 d后可誘導(dǎo)產(chǎn)生明顯的不定芽,繼代培養(yǎng)后生長較壯(圖1-D)。將葉柄接種到培養(yǎng)基AC4中,30 d后可誘導(dǎo)出較多的愈傷組織,繼代培養(yǎng)14 d后愈傷組織的量明顯增加(圖1-E)。將愈傷組織轉(zhuǎn)入A9 中7 d后,愈傷組織開始分化;經(jīng)14 d左右的分化培養(yǎng),愈傷組織開始產(chǎn)生肉眼可見的不定芽(圖1-F)。增殖培養(yǎng)后,不定芽的數(shù)量明顯增多(圖1-G)。將不定芽轉(zhuǎn)入R2中誘導(dǎo)生根,經(jīng)30 d培養(yǎng)可以獲得試管苗(圖1-H)。

圖1 綠蘿離體再生的過程Fig.1 The regeneration of Eipremnum aureum in vitro

2.3 p2300-AtFALDH-gfp表達載體的構(gòu)建

為了轉(zhuǎn)化綠蘿,首先要進行表達載體p2300-AtFALDH-gfp的構(gòu)建(圖2-A)。提取擬南芥RNA,反轉(zhuǎn)錄為cDNA,通過PCR擴增AtFALDH基因(圖2-B)。將回收的AtFALDH基因連入pMD18-T載體。通過PCR和酶切對重組質(zhì)粒進行鑒定,顯示AtFALDH已插入pMD18-T(圖2-C、D)。分別酶切p2300-gfp和pMD18-T-AtFALDH,回收連接目的片段。PCR和酶切鑒定結(jié)果表明,AtFALDH基因已插入p2300-gfp,從而實現(xiàn)p2300-AtFALDHgfp載體的構(gòu)建(圖2-E、F)。

圖2 p2300-AtFALDH-gfp表達載體的構(gòu)建Fig.2 Construction of p2300-AtFALDH-gfp expression vector

2.4 轉(zhuǎn)化條件的優(yōu)化

不同處理條件下綠蘿的轉(zhuǎn)化率如表4所示。

表4 不同處理條件下綠蘿的轉(zhuǎn)化率變化Tab.4 Transformation rate change of Eipremnum aureum under different treatment conditions

為了提高綠蘿的轉(zhuǎn)化效率,需對轉(zhuǎn)化條件進行優(yōu)化,結(jié)果表明(表4),當(dāng)農(nóng)桿菌的OD600值為0.5時,葉柄愈傷組織的分化率較高,抗性芽較多,但和OD600值為1.0時區(qū)別并不顯著。侵染時間為5 min時,轉(zhuǎn)化率較低;侵染時間為10 min時,轉(zhuǎn)化率明顯提高;侵染時間為15 min時,轉(zhuǎn)化率有所降低,外植體污染率提高。綠蘿愈傷組織和農(nóng)桿菌共培養(yǎng)2 d時,愈傷組織分化率較高,轉(zhuǎn)化效果較好,和共培養(yǎng)1 d時存在顯著的差異。

3 結(jié)論與討論

甲醛是室內(nèi)裝修的主要環(huán)境污染物,具有強烈的致癌和促癌作用[14]。微生物應(yīng)對甲醛毒性可歸納為2種機制:利用同化途徑固定甲醛以及通過異化途徑氧化甲醛最終生成CO2[15]。甲基營養(yǎng)細菌通過3種甲醛同化途徑去除甲醛,分別為核酮糖單磷酸途徑、絲氨酸途徑和核酮糖二磷酸途徑[16-17]。而在甲基營養(yǎng)酵母中,甲醛可與谷胱甘肽結(jié)合產(chǎn)生S-羥甲基谷胱甘肽,然后經(jīng)依賴谷胱甘肽的氧化途徑形成CO2[6]。該途徑需FALDH、S-甲酰谷胱甘肽水解酶(FGH)和甲酸脫氫酶(FDH)共同參與完成[18]。高等植物去除甲醛高度依賴FALDH,在甲醛進入植物組織以及轉(zhuǎn)化為CO2的過程中FALDH都具有重要作用[8]。一些觀葉植物具有高效凈化甲醛污染的效果,因此,通過綠色植物清除甲醛成為人們首選的生態(tài)治理手段[7,19]。即便如此,綠色植物吸收甲醛的能力依然有限。因此,如何更有效的增強植物去除甲醛的能力受到了越來越多的關(guān)注。而通過基因工程技術(shù)將FALDH基因?qū)胫参铮翘岣呤荏w植物去除甲醛能力的重要途徑之一。高頻離體再生體系的建立是植物遺傳轉(zhuǎn)化的基礎(chǔ),本研究以綠蘿葉片和葉柄為外植體,優(yōu)化綠蘿離體再生條件。試驗結(jié)果顯示,葉片、葉柄都均可誘導(dǎo)產(chǎn)生愈傷組織,但葉柄形成愈傷組織的效果更佳,其中培養(yǎng)基添加0.5 mg/L TDZ和0.5 mg/L NAA有利于葉柄愈傷組織的誘導(dǎo),這和郭英等[3]、范俊崗[4]、陳廣玉[5]的研究結(jié)果存在一定的差異,很可能是由于外植體不同造成的。影響愈傷組織分化最主要的植物生長物質(zhì)是6-BA和NAA。當(dāng)二者比例合適時,愈傷組織分化產(chǎn)生的不定芽數(shù)量較多,生長旺盛;反之,愈傷組織誘導(dǎo)產(chǎn)生的不定芽數(shù)量較少,生長遲緩。綠蘿葉片和葉柄誘導(dǎo)產(chǎn)生的愈傷組織均可分化為不定芽,但不定芽的分化效果葉柄愈傷組織明顯優(yōu)于葉片。因此,不定芽的誘導(dǎo)率不僅與植物生長物質(zhì)的比例有關(guān),同時也與愈傷組織的來源有一定的關(guān)系。綠蘿葉柄愈傷組織分化最適培養(yǎng)基為MS+3.0 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA。綠蘿比較容易生根,當(dāng)培養(yǎng)基為1/2 MS,生根效果較好。添加一定濃度的NAA,可有效促進生根。由于綠蘿葉柄離體再生的頻率比較高,因此,本研究采用葉柄愈傷組織作為遺傳轉(zhuǎn)化的受體。在農(nóng)桿菌介導(dǎo)的植物遺傳轉(zhuǎn)化中,菌液濃度、侵染時間和共培養(yǎng)時間等條件均會影響到受體的轉(zhuǎn)化效率[20-21]。本研究的結(jié)果表明,當(dāng)農(nóng)桿菌OD600值為0.5時,易和受體細胞接觸,侵染能力強,轉(zhuǎn)化率較高。農(nóng)桿菌侵染葉柄愈傷組織10 min效果較好,侵染5 min時抗性芽分化率過低;侵染時間15 min時,葉柄愈傷組織容易褐化,污染比較嚴重。葉柄和農(nóng)桿菌共培養(yǎng)2 d時效果較好,轉(zhuǎn)化效率高而污染率低。

本研究的結(jié)果表明,綠蘿葉片在MS+0.5 mg/L TDZ+0.5 mg/L NAA+1.0 mg/L 6-BA+1.0 mg/L KT培養(yǎng)基中愈傷組織誘導(dǎo)率為61.5%,葉柄在MS+0.5 mg/L TDZ+0.5 mg/L NAA培養(yǎng)基中愈傷組織的誘導(dǎo)率達到97.8%,并且產(chǎn)生愈傷組織的量較多。將葉片誘導(dǎo)產(chǎn)生的愈傷組織在MS+3.0 mg/L 6-BA+0.2 mg/L NAA中芽分化較明顯,而葉柄誘導(dǎo)產(chǎn)生的愈傷組織在MS+3.0 mg/L 6-BA+0.3 mg/L NAA中芽分化效果最佳,且葉柄愈傷組織誘導(dǎo)不定芽的效果要優(yōu)于葉片。不定芽生根最適培養(yǎng)基為1/2 MS+0.05 mg/L NAA。用含p2300-AtFALDH質(zhì)粒農(nóng)桿菌轉(zhuǎn)化綠蘿,當(dāng)農(nóng)桿菌OD600值為0.5,侵染10 min,共培養(yǎng)2 d時,綠蘿愈傷組織分化抗性芽的效率較高,轉(zhuǎn)化效果較好。在最適轉(zhuǎn)化條件下,將AtFALDH基因?qū)刖G蘿細胞中,經(jīng)抗生素篩選,初步獲得了具有抗性的轉(zhuǎn)基因植株,但其吸甲醛功效還有待進一步驗證。

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