吳松林,李學(xué)欣,關(guān)發(fā)升,馮建國,賈靜,李京,劉力
西南醫(yī)科大學(xué)1附屬醫(yī)院麻醉科,2麻醉與重癥醫(yī)學(xué)中心實(shí)驗(yàn)室,四川瀘州 646000
膿毒癥相關(guān)膈肌功能障礙(SIDD)是由膿毒癥引起的膈肌功能障礙和無力[1]。在重癥監(jiān)護(hù)病房需要插管的危重癥患者中膈肌功能障礙的患病率超過60%,是導(dǎo)致患者脫機(jī)困難,延長(zhǎng)住院時(shí)間,增加患者死亡率的重要原因[1,2]。關(guān)于SIDD的發(fā)生制目前尚不清楚。有研究結(jié)果表明SIDD的發(fā)生與炎癥反應(yīng)、氧化應(yīng)激、代謝失衡、線粒體功能障礙、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激、肌肉凋亡和萎縮有關(guān)[3-5]。RyR1是細(xì)胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)上鈣離子(Ca2+)釋放通道,在骨骼肌興奮-收縮偶聯(lián)中發(fā)揮重要作用,骨骼肌收縮時(shí)所需要的游離Ca2+大部分是由內(nèi)質(zhì)網(wǎng)通過RyR受體釋放到胞漿中,引起肌肉收縮[6]。研究表明,急性膿毒癥引起的膈肌無力可能與RyR表達(dá)水平有關(guān)[7]。膿毒癥可以改變心肌細(xì)胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)RyR2的磷酸化水平導(dǎo)致心肌收縮功能障礙[8]。對(duì)于膿毒癥引起的RyR1受體表達(dá)及其磷酸化修飾的改變是否參與SIDD的發(fā)生發(fā)展目前尚缺乏研究。因此,本實(shí)驗(yàn)通過動(dòng)物模型,研究不同病程階段的膿毒癥對(duì)膈肌內(nèi)質(zhì)網(wǎng)RyR1受體表達(dá)及其磷酸化水平的影響,通過干預(yù)表達(dá)調(diào)控,闡明RyR1的表達(dá)量變化及其磷酸化在SIDD發(fā)生發(fā)展中的作用,為臨床治療相關(guān)膈肌功能障礙提供理論基礎(chǔ)。
8~12周齡SPF級(jí)SD雄性大鼠(成都達(dá)碩實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限公司),體質(zhì)量200~220 g,飼料、水源和墊料由西南醫(yī)科大學(xué)提供。本實(shí)驗(yàn)經(jīng)過西南醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物倫理委員會(huì)倫理審核(動(dòng)物倫理審批編號(hào):20220927-006)。
1.2.1 動(dòng)物分組 根據(jù)前期盲腸結(jié)扎穿孔術(shù)(CLP)建模成功率設(shè)置樣本量,按隨機(jī)數(shù)字表法將SD大鼠分成5組。假手術(shù)組(Sham組):行開腹盲腸探查術(shù),在相應(yīng)觀察點(diǎn)進(jìn)行指標(biāo)檢測(cè)及標(biāo)本取材;CLP-6 h組、CLP-12 h組、CLP-24 h 組:通過CLP 構(gòu)建膿毒癥模型,分別于6、12、24 h 后進(jìn)行指標(biāo)檢測(cè)及標(biāo)本取材;KN-93 組(CLP-24 h+KN-93組):CLP建模手術(shù)完后立即腹腔注射KN-93 3.327×10-3mmol/kg[9],于24 h后進(jìn)行指標(biāo)檢測(cè)及標(biāo)本取材。
1.2.2 動(dòng)物模型構(gòu)建 參照Susanne Drechsler[10]方法,采用CLP構(gòu)建膿毒癥大鼠模型,具體步驟如下:將大鼠以仰臥位固定于動(dòng)物實(shí)驗(yàn)操作臺(tái)上。大鼠術(shù)前禁食12 h,可自由飲水。于腹腔注射戊巴比妥鈉50 mg/kg麻醉大鼠,沿腹中線中下部向左旁0.5~1 cm,作長(zhǎng)約1.5~2 cm的縱行切口,探查盲腸,于回盲瓣到盲腸末端距離的1/2處結(jié)扎,避免結(jié)扎腸系膜血管以及回盲部,以保證腸道通暢避免腸梗阻壞死。用18號(hào)針頭分別在盲腸結(jié)扎處遠(yuǎn)端和盲腸末端橫貫穿孔2個(gè),最后將盲腸回納入腹腔,逐層縫合切口。皮下注射0.9%N.S 40 mL/kg,防止循環(huán)衰竭。
1.2.3 膈肌CMAP 檢測(cè) 參照Martin 等方法[11],通過RM6240系統(tǒng)記錄CMAP。將SD大鼠仰臥位固定在手術(shù)板,使用脫毛膏去除肋下緣及腹部皮膚的毛發(fā),使用聚維酮碘消毒。將電極片貼于右側(cè)肋下緣,作為記錄電極;將2根同心圓針電極垂直插入右側(cè)鎖骨上方,氣管旁0.5 cm,深度為1 cm,2根同心圓針電極距離0.5 cm,作為刺激電極;刺激模式采用正電壓?jiǎn)未碳ぃ◤?qiáng)度12 V,波寬1 ms,延時(shí)1 ms)。此時(shí)顯示屏顯示的波形即為CMAP,重復(fù)刺激3次,每次間隔30 s。
1.2.4 膈肌肌條收縮功能檢測(cè) 在相應(yīng)時(shí)間點(diǎn)處死大鼠,切除的隔肌條被安裝到預(yù)先氧合的Krebs-Henseleit溶液中(1L主要包含:NaCl 118 mmol/L、KCl 4.7 mmol/L、MgSO41.2 mmol/L、KH2PO41.1 mmol/L、NaHCO325 mmol/L、CaCl22.4 mmol/L、葡萄糖5.5 mmol/L PH:7.4)[12]。使用脈沖方波(強(qiáng)度15 V,波寬0.5 ms,延時(shí)20 ms)對(duì)肌肉進(jìn)行刺激,重復(fù)刺激3次,刺激間隔1 min。然后通過以10、20、30、50、60、80、100和120 Hz連續(xù)刺激肌肉600 ms,每個(gè)刺激訓(xùn)練間隔1 min以確定頻率收縮曲線關(guān)系。在測(cè)量收縮特性后,測(cè)量肌肉的初長(zhǎng)度Lo(肌肉產(chǎn)生最大等距張力的長(zhǎng)度)和稱重。然后另取一塊膈肌修剪成條,以50 Hz連續(xù)刺激肌肉2 min確定膈肌的疲勞指數(shù)。膈肌力的產(chǎn)生按總肌條橫截面積歸一化,并以N·cm-2表示。用肌肉質(zhì)量除以長(zhǎng)度和組織密度(1.056 g/cm3)來確定總肌條截面積。
1.2.5 蛋白質(zhì)印跡分析 取50 mg膈肌標(biāo)本,用預(yù)冷的雙蒸水稱量修剪。加入蛋白酶裂解液(含1%蛋白酶抑制劑PMSF和1%磷酸酶抑制劑),低溫離心后取上清提取總蛋白。用BCA蛋白定量試劑盒(beyotime,上海碧云天生物技術(shù)有限公司)檢測(cè)肌肉蛋白的濃度。加入上樣緩沖液,于沸水中進(jìn)行蛋白變性10 min,置于-20 ℃冰箱保存?zhèn)溆谩H缓髮悠芳尤隣mni-PAGE?預(yù)制膠Hepes 4%~20%(LK206,雅酶,中國)中進(jìn)行電泳分離后、采用濕轉(zhuǎn)法于Omni-Flash免冰浴快速轉(zhuǎn)膜緩沖液(10×)(PS201S,雅酶)中進(jìn)行轉(zhuǎn)膜5 h,將蛋白轉(zhuǎn)移到NC膜上。用5%的脫脂牛奶進(jìn)行封閉1 h(P-RyR1使用5%BSA進(jìn)行封閉),洗膜后用相對(duì)應(yīng)的一抗孵育過夜:RyR1 抗體(1∶1000)(Abcam)、P-RyR1 抗體(1∶500)(Affinity)、CaMKⅡ抗體(1∶1000)(SignalwayAntibody),以羊抗小鼠單克隆抗體β-actin(Santa Cruz Biotechnology)作為內(nèi)參。用與一抗相匹配的二抗室溫孵育1 h:辣根過氧化物酶標(biāo)記山羊抗小鼠lgG(H+L)(beyotime,上海碧云天生物技術(shù)有限公司)、辣根過氧化物酶標(biāo)記羊抗兔lgG(H+L)(Proteintech group)。采用Image J進(jìn)行灰度值分析,以目的蛋白的灰度值與內(nèi)參灰度值的比值反應(yīng)目的蛋白的表達(dá)水平。
采用GraphPad8.3.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。符合正態(tài)分布的數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示。實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Levene 檢驗(yàn)方差齊性,方差齊下各組之間比較采用ANOVA分析,檢驗(yàn)水準(zhǔn)α=0.05。
2.1.2 CMAP 各組CMAP電位見圖1。CLP-24 h組較Sham組CMAP幅值明顯下降(1.88±0.26 mVvs4.62±0.23 mV,P<0.05);CLP-24 h+KN-93組較CLP-24 h組的CMAP幅值明顯上升(4.98±0.15 mvvs1.88±0.26 mV,P<0.05)。CLP-6 h組、CLP-12 h組和Sham組之間差異沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,圖1)。
CLP-24 h 組CMAP 的時(shí)程較Sham 組明顯延長(zhǎng)(9.91±1.13 msvs6.35±1.07 ms,P<0.05),CLP-24 h+KN-93 組較CLP-24 h 組明顯縮短(6.42±0.11 msvs9.91±1.13 ms,P<0.05);CLP-6 h 組、CLP-12 h 組和Sham組之間差異沒有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,圖1)。
圖1 各組大鼠膿毒癥建模后CMAP幅值和時(shí)程比較Fig.1 Changes in amplitude and duration of compound muscle action potential (CMAP) of the diaphragm in rats after sepsis(Mean±SD).*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001.
2.1.3 膈肌疲勞指數(shù) CLP-12 h組和CLP-24 h組的疲勞指數(shù)較Sham組明顯增大(0.53±0.04vs0.69±0.05 vs 0.13±0.06,P<0.05),CLP-24 h+KN-93組與CLP-24 h組膈肌疲勞指數(shù)差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(0.55±0.06vs0.69±0.05,P>0.05,圖2)。
圖2 各組大鼠膿毒癥建模后疲勞指數(shù)比較Fig.2 Fatigue index after sepsis modeling in each group (Mean±SD, n=6).A:Representative graph of diaphragmatic fatigue index.B:Effect of sepsis on diaphragmatic fatigue index in each group.**P<0.01.
2.1.4 膈肌頻率-收縮曲線 CLP-6 h組、CLP-12 h組、CLP-24 h組較Sham組的收縮力明顯下降,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。CLP-24 h+KN-93組較CLP-24 h組的收縮力明顯升高(P<0.05),CLP-24 h組較CLP-6 h組和CLP-12 h組收縮力明顯降低(P<0.05,圖3)。
圖3 各組大鼠膈肌頻率-收縮曲線比較Fig.3 Diaphragm frequency-contraction curves in each group (Mean ± SD).A:Representative graph of the diaphragm frequency contraction curve.B:Effect of sepsis on diaphragmatic frequency-contraction curves in each group.***P<0.001 vs Sham group;&P<0.05 vs CLP-24 h group.
CLP-24 h組較Sham組的RyR1蛋白表達(dá)水平下降(P<0.05),而CLP-24 h+KN-93組與CLP-24 h組相比差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。CLP-6 h組、CLP-12 h組與Sham組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。各組大鼠膈肌P-RyR1蛋白表達(dá)水平差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與Sham組比較,CLP-6 h組、CLP-12 h組和CLP-24 h組的P-RyR1蛋白表達(dá)水平明顯升高(P<0.05),CLP-24 h+KN-93組的P-RyR1蛋白表達(dá)水平相比于CLP-24 h組明顯降低(P<0.05,圖4)。
圖4 各組大鼠膈肌RyR1蛋白表達(dá)及其磷酸化水平比較Fig.4 Expression and phosphorylation of RyR1 in the diaphragm of rats in each group(Mean±SD).A,B:Effect of sepsis on RyR1 expression in the diaphragm.C,D:Effect of sepsis on P-RyR1 expression in the diaphragm.*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001.
與Sham組比較,CLP-24 h組大鼠膈肌CaMKⅡ蛋白表達(dá)水平明顯升高(P<0.05),CLP-24 h+KN-93組的CaMKⅡ蛋白表達(dá)水平相比于CLP-24 h組明顯降低,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖5)。
圖5 各組大鼠膈肌CaMKⅡ蛋白表達(dá)水平比較Fig.5 Expression of CaMK II in the diaphragm of rats in each group detected by Western blotting(Mean±SD).*P<0.05,**P<0.01.
膿毒癥是由宿主對(duì)感染的反應(yīng)失調(diào)所引起的危及生命的器官功能障礙[13],常導(dǎo)致多器官功能衰竭和死亡。本研究采用盲腸結(jié)扎穿孔的經(jīng)典方法構(gòu)建SIDD大鼠模型,觀察膿毒癥對(duì)大鼠膈肌功能的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組相比,膿毒癥大鼠膈肌功能明顯降低,具體體現(xiàn)在膈肌CMAP幅值降低,時(shí)程延長(zhǎng),疲勞指數(shù)明顯升高以及不同頻率刺激下膈肌收縮力下降。這與以往的研究結(jié)果相同[14-16]。隨著膿毒癥時(shí)間的延長(zhǎng),膈肌RyR1 受體表達(dá)水平降低,CaMKⅡ和P-RyR1 水平升高。施加干預(yù)以后,膈肌CaMKⅡ和P-RyR1水平降低,膈肌功能改善。
RyR是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)上釋放鈣離子的一種大型配體門控通道,Ca2+通過肌質(zhì)網(wǎng)上的RyR受體快速釋放到胞漿中,啟動(dòng)興奮-收縮耦聯(lián),引起肌肉收縮[6,17]。RyR受體改變與多種疾病的發(fā)生有關(guān)。有研究研究慢性膿毒癥對(duì)大鼠危重癥神經(jīng)肌病快肌的影響中發(fā)現(xiàn),在建立膿毒癥模型10 d后,趾長(zhǎng)伸肌收縮功能下降,RyR1的表達(dá)上升,雖然RyR1受體表達(dá)升高,但并不能排除RyR1受體的升高受其本身肌病的影響[18]。本研究發(fā)現(xiàn),雖然膿毒癥6 h和12 h組大鼠表現(xiàn)出明顯的膈肌功能障礙,但其RyR1受體蛋白的表達(dá)水平并沒有顯著性的差異。但在膿毒癥24 h組RyR1受體表達(dá)表現(xiàn)出了明顯的差異,并且膈肌功能受損明顯,其也不能排除RyR1受體表達(dá)量減少對(duì)膈肌功能的影響。研究表明,就調(diào)節(jié)內(nèi)質(zhì)網(wǎng)Ca2+釋放而言,RyR蛋白的水平不如通道的活性重要[19,20],因此膿毒癥導(dǎo)致膈肌功能障礙可能是RyR1表達(dá)下降與RyR1活性改變共同作用的結(jié)果。
磷酸化以及去磷酸化是重要的細(xì)胞內(nèi)的傳導(dǎo)途徑。研究表明RyR過度磷酸化可以增加其對(duì)鈣離子敏感性,引起Ca2+紊亂,與心臟功能有著密切關(guān)系[21]。有研究在心力衰竭的患者中發(fā)現(xiàn),RyR1 受體過度磷酸化使結(jié)構(gòu)發(fā)生重塑,導(dǎo)致RyR1功能障礙,引起內(nèi)質(zhì)網(wǎng)Ca2+泄露,最終心肌收縮無力[22];在膿毒癥休克大鼠心肌中,隨著膿毒癥病情的發(fā)展,RyR受體磷酸化水平逐漸升高,心肌功能受損[8]。室性心律失常與心房顫動(dòng)與RyR2受體磷酸化水平升高所致的心肌舒張期Ca2+泄露有關(guān)[23,24],抑制CaMKⅡ,能夠減輕心房顫動(dòng)的易感性[23]。本研究發(fā)現(xiàn),隨著膿毒癥病程的發(fā)展,RyR1受體的磷酸化水平逐漸升高,膈肌功能障礙逐漸加重,通過干預(yù)抑制鈣調(diào)蛋白依賴性蛋白激酶II(CaMKⅡ)的表達(dá),RyR1的磷酸化水平下降,膈肌功能改善。研究發(fā)現(xiàn),CaMKII是一種多功能蛋白激酶,能導(dǎo)致RyR受體磷酸化導(dǎo)致其功能發(fā)生改變[8,25],而KN-93能夠抑制CaMKII,能降低RyR受體磷酸化水平,改善脂多糖介導(dǎo)的心臟重塑及心功能障礙[26]。因此,本實(shí)驗(yàn)采用KN-93進(jìn)行干預(yù)后,RyR1受體的磷酸化水平降低,膈肌功能明顯的改善。研究發(fā)現(xiàn)蛋白激酶A(PKA)激活,介導(dǎo)的RyR2磷酸化對(duì)心臟的收縮功能也非常重要[27],因此PKA 介導(dǎo)的RyR1受體磷酸化也是本研究的局限性所在,SIDD期間PKA與RyR1之間的關(guān)系也需要進(jìn)一步研究。
綜上所述,膿毒癥引起的膈肌功能障礙的機(jī)制是由于CaMKII的表達(dá)水平的升高,導(dǎo)致了RyR1受體磷酸化,磷酸化的RyR1受體結(jié)構(gòu)功能發(fā)生改變,使Ca2+發(fā)生泄漏,進(jìn)而導(dǎo)致膈肌的結(jié)構(gòu)功能發(fā)生改變。而針對(duì)RyR1受體的磷酸化做出有效干預(yù),有望成為臨床新的治療靶點(diǎn)。