馬 超，陳桐杰，劉 江，陳光賢，吳端普，徐二娟，王 瑞,

（1.貴陽學院，貴州貴陽 550003；2.貴州美味鮮竹蓀產(chǎn)業(yè)有限公司，貴州畢節(jié) 552102；3.貴陽市蔬菜技術(shù)推廣站，貴州貴陽 550081）

紅托竹蓀（Dictyophora rubrovalvata）為擔子菌門竹蓀屬紅托竹蓀種。因其味道鮮美，富含多糖、氨基酸、維生素等營養(yǎng)元素，也享有“草八珍”的美譽，近年來越來越受消費者喜愛[1-2]。近年來，貴州省大力發(fā)展食用菌產(chǎn)業(yè)，其中紅托竹蓀位居全國第一，但由于鮮紅托竹蓀質(zhì)地脆嫩，含水量高，并且易受病原菌侵染和機械損傷，從而導致采收后的紅托竹蓀出現(xiàn)失水、褐變、長霉等現(xiàn)象，直接影響了紅托竹蓀的銷售時間和銷售半徑，降低了其經(jīng)濟效益，抑制了紅托竹蓀產(chǎn)業(yè)的健康可持續(xù)發(fā)展[3-4]。因此，研究適宜紅托竹蓀的保鮮技術(shù)對其產(chǎn)業(yè)高質(zhì)量發(fā)展具有重要意義。

茉莉酸甲酯（methyl jasmonate，MeJA）作為天然植物體的內(nèi)源生長調(diào)節(jié)物質(zhì)，可調(diào)節(jié)果蔬的采后生理代謝，誘導其防御性相關(guān)基因表達，可有效控制果蔬的真菌性病害，并具有較好的保鮮效果[5-7]。Wang等[8]研究報道了茉莉酸甲酯能夠激活苯丙素類化合物合成途徑，從而誘導提高果實內(nèi)防御相關(guān)酶，增加藍莓果實的抗病性。羅冬蘭等[9]研究茉莉酸甲酯對藍莓貯藏品質(zhì)的影響發(fā)現(xiàn)，適宜濃度的茉莉酸甲酯能有效延緩果實的軟化，保持果實較好的貯藏品質(zhì)。氯化鈣能夠調(diào)節(jié)植物體內(nèi)酶活性、影響其代謝進程，降低病原菌對果蔬細胞壁和細胞膜的破壞，抑制果蔬水分的散失，維持果蔬的貯藏品質(zhì)[10-12]。潘曉玉等[13]研究氯化鈣處理對滑子菇采后貯藏品質(zhì)發(fā)現(xiàn)，氯化鈣處理可以抑制滑子菇營養(yǎng)品質(zhì)及失重率的下降，有效維持滑子菇的清除自由基能力。谷會等[14]研究發(fā)現(xiàn)，氯化鈣處理能夠提高菠蘿的抗氧化性，抑制酚類物質(zhì)的代謝水平，延緩菠蘿的劣變進程，提高菠蘿的貯藏品質(zhì)。針對紅托竹蓀采后出現(xiàn)失水、褐變、長霉等問題[3-4]，前期預實驗研究發(fā)現(xiàn)，0.3 mmol/L 茉莉酸甲酯和3%氯化鈣對采后紅托竹蓀貯藏保鮮均有良好的效果，并且目前還未見過茉莉酸甲酯結(jié)合氯化鈣處理在果蔬保鮮方面相關(guān)研究報道，而國內(nèi)關(guān)于紅托竹蓀保鮮方面的報道研究較少。因此，本研究以紅托竹蓀為試材，探究茉莉酸甲酯聯(lián)合氯化鈣處理對紅托竹蓀貯藏期間失重率、剪切力、營養(yǎng)品質(zhì)及抗氧化酶活性的影響，尋找適宜紅托竹蓀的保鮮技術(shù)，為其貯藏保鮮提供理論參考和技術(shù)支撐。

1 材料與方法

1.1 材料與儀器

紅托竹蓀于2022 年8 月13 日采收自貴州省美味鮮竹蓀產(chǎn)業(yè)有限公司基地；茉莉酸甲酯 上海源葉生物科技有限公司；氯化鈣 國藥集團化學試劑有限公司；聚乙烯保鮮膜（厚度20 μm）山西農(nóng)業(yè)大學。

TA.XT.PLUS 質(zhì)構(gòu)儀 英國SMS 公司；Check PiontⅡ便攜式殘氧儀 丹麥Dansensor 公司；UV-2550紫外分光光度計 日本Shimazhu 公司；Agilent1100液相色譜儀（配VWD 檢測器）Agilent 公司；TGL-16A 臺式高速冷凍離心機 長沙平凡儀器儀表有限公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 樣品處理 選擇8 成熟左右的紅托竹蓀分四組（采前噴施蒸餾水記為CK 處理組，采前噴施3%氯化鈣記為S1 處理組；采前噴施0.3 mmol/L 茉莉酸甲酯記為S2 處理組，采前噴施0.3 mmol/L 茉莉酸甲酯結(jié)合3%氯化鈣記為S3 處理組）進行采前當天處理，噴施以紅托竹蓀表面剛滴水為宜，處理結(jié)束后自然晾干進行采收，采收后立即運回實驗室對紅托竹蓀進行挑選，去掉蓀菌托和菌蓋后，選擇無機械損傷、無病蟲害的紅托竹蓀分別裝入PE20 保鮮膜內(nèi)，預冷24 h 后扎袋進行貯藏，貯藏溫度為1±0.5 ℃，每個處理3 個平行，每3 d 測定不同組紅托竹蓀相關(guān)指標，測定周期為12 d。

1.2.2 測定指標及方法

1.2.2.1 腐爛率 以表面流水、褐變、長霉或自溶等現(xiàn)象記為腐爛紅托竹蓀，采用計數(shù)法計算腐爛率[9]，公式為：腐爛率（%）=腐爛紅托竹蓀數(shù)量/紅托竹蓀總數(shù)量×100。

1.2.2.2 失重率 采用稱重法測定紅托竹蓀失重率[15]，每次實驗測定每個處理所有紅托竹蓀的失重率，公式為：失重率（%）=（紅托竹蓀初始質(zhì)量-紅托竹蓀貯藏期間的質(zhì)量）/紅托竹蓀初始質(zhì)量×100。

1.2.2.3 呼吸強度 呼吸強度采用靜置法[16]進行測定。稱取8 根紅托竹蓀置于常溫密閉容器中4 h，然后用便攜式殘氧儀測定其二氧化碳濃度，公式如下：

式中：X 為呼吸強度，mg CO2·h-1·kg-1；V 為容器體積（干燥器體積-果實體積），L；N 為二氧化碳體積分數(shù)，%；m 為樣品質(zhì)量，kg；t 為放置時間，h；1.894 g/L為常壓下二氧化碳的密度。

1.2.2.4 剪切力 剪切力采用夏紫茜等[17]報道的方法進行測定。采用2 mm TA/LKB 切刀探頭對紅托竹蓀剪切力進行測定，測中速率為3 mm/s，測前及測后速度均為2 mm/s。

1.2.2.5 游離氨基酸含量、蛋白質(zhì)含量、多糖含量及黃酮含量 游離氨基酸含量參照Guilherme 等[18]報道的方法進行測定：將1 g 紅托竹蓀組織研碎后加入離心管中，再向離心管中加入5 mL 0.01 mol/L 鹽酸，沸水浴40 min，10000 r/min 離心15 min。取上清液，沉淀物再加2 mL 0.01 mol/L 鹽酸懸浮，超聲5 min，離心，合并上清液，定容至10 mL。過0.22 μm濾膜后待測。游離氨基酸含量以mg/g 表示。

蛋白質(zhì)含量采用考馬斯亮藍法G-250[14]進行測定，準確稱取3.00 g 樣品，加入10 mL 蒸餾水進行研磨，4 ℃、10000 r/min 離心15 min，取上清液與考馬斯亮藍G-250 溶液混合，在波長595 nm 處測定吸光度值，蛋白質(zhì)含量單位為%。

多糖含量采用苯酚-硫酸法[19]進行測定：取樣品5 g，加入40 mL 蒸餾水，85 ℃旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)抽提4 h，用無水乙醇沉淀上清液中多糖10 h，離心后收集沉淀進行烘干，烘干后用蒸餾水溶解即得到樣品溶液，采用苯酚-硫酸法測定多糖。

黃酮含量參照吳敏等[20]報道的比色法略作修改進行測定。稱取3.0 g 樣品，加入10 mL 1%的HCl-甲醇溶液，在冰浴條件下進行充分研磨，最后定容至20 mL 刻度試管，于4 ℃避光提取30 min，取濾液在波長325 nm 處測定吸光值，黃酮含量單位為 mg·g-1。

1.2.2.6 丙二醛（MDA）含量 丙二醛（MDA）含量采用硫代巴比妥酸比色法[21]進行測定。稱取2.00 g 果肉加入10.00 mL 100 g/L 三氯乙酸溶液研磨，4 ℃、10000 r/min 離心20 min 后提取2.00 mL 上清液，加入2.00 mL 0.67 %（硫代巴比妥酸）TBA 混合，沸水浴15 min 后分別在波長450、532 和600 nm 處測定混合液的吸光度。MDA 含量以mmol/g 表示。

1.2.2.7 SOD 活性、CAT 活性和POD 活性 SOD活性采用鄰苯三酚自氧化法[21]進行測定。以鄰苯三酚自氧化速率實驗空白為參比，在25 ℃左右，在離心管中加入2.35 mL 0.1 mo1/L Tris-HCL，蒸餾水1.80 mL、水浴處理酶液30 μL、0.15 mL 4.5 mo1/L鄰苯三酚溶液、渦旋處理3 s。在吸光度為325 nm處測定單位時間內(nèi)的變化值。以鄰苯三酚抑制率達50%為1 個酶活單位 U。

CAT 活性采用曹建康等[22]報道的方法進行測定。取樣品3 g，加入預冷20 mL 0.05 mol·L-1的磷酸緩沖液（內(nèi)含1% PVPP，pH7.8），4 ℃ 10000 r/min離心15 min，上清液即粗酶液。反應液為3 mL 0.015 mol·L-1H2O2加入0.5mL 酶液，在吸光度240 nm 處測定單位時間內(nèi)吸光度的變化，以每分鐘變化0.01 為1 個酶活單位U。

POD 活性采用愈創(chuàng)木酚比色法進行測定[23]。粗酶液制備同CAT 測定中粗酶液制備方法，反應體系為2 mL 0.02 mmol/L 愈創(chuàng)木酚、0.5 mL 酶提取物和1 mL 0.04 mol/L 過氧化氫，在吸光度為470 nm處測單位時間內(nèi)吸光值，以每分鐘變化0.01 為1 個酶活單位U。

1.3 數(shù)據(jù)處理

采用OriginPro 2018 軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析；采用SPSS22.0 軟件的Duncan 法分析不同處理組間相關(guān)指標的差異顯著性（P＜0.05 表示顯著性差異；P＞0.05 表示無顯著性差異）。

2 結(jié)果與分析

2.1 紅托竹蓀外觀、腐爛率和失重率的變化

紅托竹蓀的外觀變化及腐爛率會影響其商品價值，失重率過高會導致紅托竹蓀萎蔫。圖1A 所示，隨著貯藏時間的延長，紅托竹蓀出現(xiàn)褐變、失水和腐爛等問題，與CK 組比較，處理組貯藏效果明顯更好；圖1B 所示，隨著貯藏時間的延長，紅托竹蓀腐爛率呈現(xiàn)上升的趨勢，在貯藏期6～12 d 內(nèi)，不同組腐爛率的大小關(guān)系為CK 組＞S1 組＞S2 組＞S3 組，在貯藏期12 d 時，CK 組、S1 組、S2 組和S3 組的紅托竹蓀腐爛率分別為32.56%、28.32%，19.85%，14.64%，并且不同組間均有顯著差異（P＜0.05）；由圖1C 可知，在整個貯藏期間，紅托竹蓀不同處理組的失重率均呈現(xiàn)上升的趨勢。在貯藏期3～6 d，CK 組、S1 組的失重率均顯著高于S2 組和S3 組（P＜0.05）。在貯藏期9～12 d 時，CK 組的失重率顯著高于其他組（P＜0.05）。在貯藏期12 d 時，CK 組、S1 組、S2 組和S3 組的紅托竹蓀失重率分別為5.62%、3.89%、2.89%、2.21%，并且不同組相互間均有顯著差異（P＜0.05）。由此可見，與CK 組比較，不同處理組均能夠降低紅托竹蓀貯藏期間的腐爛率、失重率，保持紅托竹蓀更好的外觀品質(zhì)，其中S3 組效果最好，這可能是茉莉酸甲酯能抑制果蔬侵染性病害而氯化鈣能較好維持果蔬細胞完整性的聯(lián)合作用導致的[7,10]。

2.2 紅托竹蓀呼吸強度的變化

呼吸強度反映采后果蔬貯藏期間代謝情況，呼吸強度越高，果蔬代謝速度越快，加速果蔬貯藏品質(zhì)的劣變進程，從而影響果蔬的貯藏期[24-25]。圖2 所示，紅托竹蓀在整個貯藏期的呼吸強度均呈現(xiàn)上升的趨勢，在貯藏初期，不同處理組無顯著差異（P＞0.05）。在貯藏期3 d 時，不同組的紅托竹蓀呼吸強度大小關(guān)系為CK 組＞S2 組＞S1 組＞S3 組，此時S1 組、S2 組和S3 組均無顯著差異（P＞0.05）。在貯藏期6～12 d 時，S3 組的呼吸強度顯著低于其他組（P＜0.05）。在貯藏期12 d 時，S1 組、S2 組和S3 組的呼吸強度分別比CK 組低11.87%、13.11%和28.20%，并且處理組均與CK 組有顯著差異（P＜0.05）。由此說明，不同處理組均能夠抑制貯藏期紅托竹蓀的呼吸強度，降低紅托竹蓀的呼吸代謝，抑制紅托竹蓀失重率的上升（圖1），綜合比較，S3 組對降低紅托竹蓀的呼吸強度效果最好，這可能是茉莉酸甲酯結(jié)合氯化鈣能夠更有效降低果實呼吸代謝導致的。

圖2 不同處理下紅托竹蓀呼吸強度的變化Fig.2 Changes of respiratory intensity of Dictyophora rubrovalvata under different treatments

2.3 紅托竹蓀剪切力的變化

剪切力反映貯藏期間紅托竹蓀質(zhì)地的變化，剪切力越低，說明紅托竹蓀質(zhì)地越好[26]。圖3 所示，在整個貯藏期間，不同組的紅托竹蓀剪切力均呈現(xiàn)上升的趨勢。在貯藏期前6 d，不同組的剪切力差異不明顯。在貯藏期9～12 d，不同組的紅托竹蓀剪切力大小關(guān)系為CK 組＞S1 組＞S2 組＞S3 組，并且與CK 組比較，處理組均有顯著差異（P＜0.05）。在貯藏期12 d時，CK 組、S1 組、S2 組和S3 組的紅托竹蓀剪切力分別為1869.52、1724.43、1654.25 和1465.23 g。由此說明，不同處理組均能顯著降低紅托竹蓀貯藏后期的剪切力上升，綜合比較，S3 組對紅托竹蓀的剪切力保持效果最好，這與S3 組對紅托竹蓀失重率作用效果一致（圖1）。

圖3 不同處理下紅托竹蓀剪切力的變化Fig.3 Changes of shearing force of Dictyophora rubrovalvata under different treatments

2.4 紅托竹蓀營養(yǎng)品質(zhì)的變化

游離氨基酸、蛋白質(zhì)、多糖及黃酮含量是反映紅托竹蓀貯藏貯藏過程中營養(yǎng)品質(zhì)變化的重要指標[27]。圖4 所示，在整個貯藏期，采收后的紅托竹蓀營養(yǎng)品質(zhì)呈現(xiàn)下降的趨勢，其主要原因是采收后的紅托竹蓀仍然進行旺盛的呼吸代謝，從而造成營養(yǎng)品質(zhì)下降[3]。圖4A 所示，CK 組的游離氨基酸含量從貯藏期開始就快速下降，而處理組則緩慢下降。在貯藏期 3～12 d，CK 組的游離氨基酸含量顯著低于其他處理組（P＜0.05）。在貯藏期9～12 d 時，不同組的紅托竹蓀游離氨基酸含量大小關(guān)系為CK 組＜S1 組＜S2 組＜S3組。在貯藏期12 d 時，CK 組、S1 組、S2 組和S3 組的紅托竹蓀游離氨基酸含量分別為8.68、10.18、11.84、13.14 mg·g-1。圖4B 所示，在貯藏期6～12 d時，不同組的紅托竹蓀蛋白質(zhì)含量大小關(guān)系為CK 組＜S1 組＜S2 組＜S3 組。在貯藏期12 d 時，S1 組、S2組和S3 組的蛋白質(zhì)含量比CK 組高4.79%、13.67%和18.71%，并且S2 組、S3 組與CK 組均有顯著差異（P＜0.05），而S1 組與CK 組無顯著差異（P＞0.05）。圖4C 所示，在整個貯藏期，CK 組、S1 組、S2 組和S3 組的多糖含量分別降低了0.56%、0.44%、0.42%、0.33%。在貯藏期12 d 時，不同組的紅托竹蓀多糖含量大小關(guān)系為CK 組＜S1 組＜S2 組＜S3 組。圖4D所示，在貯藏期9～12 d 時，CK 組的黃酮含量顯著低于處理組（P＜0.05）。在貯藏期12 d 時，S1 組、S2 組和S3 組的黃酮含量分別比CK 組高16.67%、25%和41.67%。Alicia 等[28]報道食用菌沒有黃酮，但本研究發(fā)現(xiàn)紅托竹蓀存在黃酮，并且相關(guān)研究也表明紅托竹蓀存在黃酮[27,29]，但還需要進一步從分子生物學方面分析及討論紅托竹蓀存在黃酮的機制。綜上所述，與對照組相比，不同處理組均能夠維持紅托竹蓀游離氨基酸含量、蛋白質(zhì)含量、多糖含量、黃酮含量，其中S3 組能夠更好地抑制紅托竹蓀品質(zhì)的下降。這與前人研究茉莉酸甲酯能夠保持藍莓貯藏品質(zhì)和氯化鈣能夠保持滑子菇貯藏品質(zhì)結(jié)果一致[9,13]，關(guān)于二者結(jié)合處理對紅托竹蓀品質(zhì)下降的抑制效果最好，這可能由于S3 處理顯著降低紅托竹蓀的呼吸強度，從而抑制貯藏品質(zhì)代謝速度，至于相關(guān)機理還需要進一步研究。

圖4 不同處理下紅托竹蓀游離氨基酸含量（A）、蛋白質(zhì)含量（B）、多糖含量（C）、黃酮含量（D）的變化Fig.4 Changes of free amino acid content (A),protein content(B),polysaccharide content (C) and flavonoids content (D) of Dictyophora rubrovalvata under different treatments

2.5 紅托竹蓀MDA 含量的變化

丙二醛含量屬于膜脂過氧化作用的次要終產(chǎn)物，能夠反映紅托竹蓀貯藏期間衰老情況[30]。圖5所示，紅托竹蓀的丙二醛含量在整個貯藏期呈現(xiàn)上升的趨勢，在貯藏期3 d 時，S3 組的丙二醛含量顯著低于CK 組（P＜0.05），但S1 組和S2 組與CK 組均無顯著差異（P＞0.05）。貯藏期6～12 d 時，不同組的紅托竹蓀丙二醛含量大小關(guān)系為CK 組＞S1 組＞S2 組＞S3 組。在貯藏期12 d 時，S1 組、S2 組和S3 組的丙二醛含量分別比CK 組低15.57%、19.56%和32.55%。由此可見。不同處理組均能夠抑制紅托竹蓀貯藏后期丙二醛含量的上升，其中S3 組在整個貯藏期對丙二醛含量上升的抑制效果最好。

圖5 不同處理下紅托竹蓀丙二醛含量的變化Fig.5 Changes of malondialdehyde content of Dictyophora rubrovalvata under different treatments

2.6 紅托竹蓀抗氧化酶活性的變化

超氧化物歧化酶（SOD）、過氧化氫酶（CAT）和過氧化物酶（POD）均是食用菌重要的抗氧化酶，抗氧化酶會加劇食用菌膜脂過氧化的衰老進程，但也會抵御食用菌逆境脅迫對果蔬造成的傷害[31]。圖6 表明，在整個貯藏期間，不同的抗氧化酶活性均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢。圖6A 所示，在貯藏期3 d 時，與CK 組SOD 活性比較，S3 組有顯著差異（P＜0.05），但S1 和S2 無顯著差異（P＞0.05）。貯藏期6～12 d時，不同組的紅托竹蓀SOD 活性大小關(guān)系為CK 組＜S1 組＜S2 組＜S3 組。在貯藏期12 d 時，S1 組、S2組和S3 組的SOD 活性分別比CK 組高9.79%、17.55%和23.34%。圖6B 所示，在貯藏期3 d 時，S2 組、S3 組的CAT 活性均顯著高于CK 組（P＜0.05），但S1 組與CK 無顯著差異（P＞0.05）。貯藏期9 d 時，CK 組均顯著低于處理組（P＜0.05）。在貯藏期12 d時，CK 組、S1 組、S2 組和S3 組的紅托竹CAT 活性分別為10.62、12.56、12.85、13.89 U·g-1。圖6C所示，從貯藏期開始至貯藏期3 d，不同組間的POD 活性無顯著差異（P＞0.05）。貯藏期6～12 d時，不同組的紅托竹蓀POD 活性大小關(guān)系為CK 組＜S1 組＜S2 組＜S3 組。在貯藏期12 d 時，S1 組、S2 組和S3 組的POD 活性分別比CK 組高10.28%、20.56%和28.35%，并且S2 和S3 組與CK 組均有顯著差異（P＜0.05）。由此可見，不同的處理組均能夠不同程度地保持紅托竹蓀SOD 活性、CAT 活性和POD 活性。綜合比較，S3 組對紅托竹蓀抗氧化酶活性的保持效果最好，這可能由于外源噴施茉莉酸甲酯結(jié)合氯化鈣促進紅托竹蓀內(nèi)源茉莉酸甲酯含量、鈣離子濃度上升的結(jié)果導致的[7,10]。

圖6 不同處理下紅托竹蓀SOD 活性（A）、CAT 活性（B）和POD 活性（C）的變化Fig.6 Changes of SOD activity (A),CAT activity (B) and POD activity (C) of Dictyophora rubrovalvata under different treatments

3 討論與結(jié)論

貯藏期竹蓀的品質(zhì)變化反映其衰老進程[3,32]。本研究表明，不同的采前處理均能夠降低紅托竹蓀的失重率、呼吸強度，抑制紅托竹蓀游離氨基酸含量、蛋白質(zhì)含量、多糖含量及黃酮含量的下降和剪切力的上升。Liu 等[33]發(fā)現(xiàn)茉莉酸甲酯處理能夠保持番茄果實更好的貯藏品質(zhì)，抑制營養(yǎng)品質(zhì)的下降。張瑜瑜等[34]研究發(fā)現(xiàn)氯化鈣處理可以降低采后藍莓果實的生理代謝，保持果實貯藏品質(zhì)。這與本文研究的茉莉酸甲酯和氯化鈣均能較好保持果實品質(zhì)結(jié)果一致。本文還發(fā)現(xiàn)不同的采前處理可以更好地保持紅托竹蓀SOD 活性、CAT 活性和POD 活性，降低丙二醛含量的積累。呂靜祎等[35]報道茉莉酸甲酯能夠調(diào)節(jié)蘋果的抗氧化活性改變活性氧消耗速率，進而有效提高了果實的抗氧化活性。谷會等[14]研究表明氯化鈣可以提高菠蘿的抗氧化酶活性，從而提高果實的抗病性。本研究結(jié)果與前人研究茉莉酸甲酯和氯化鈣均能較好保持果實酶活性結(jié)果一致。綜合比較發(fā)現(xiàn)，茉莉酸甲酯結(jié)合氯化鈣處理優(yōu)于單一處理，至于相關(guān)機理還需要進一步研究。

綜上所述，不同處理組均能夠抑制紅托竹蓀失重率和呼吸強度的上升，降低紅托竹蓀剪切力和丙二醛含量，保持紅托竹蓀游離氨基酸含量、蛋白質(zhì)含量、多糖含量和黃酮含量，維持紅托竹蓀SOD 活性、CAT 活性和POD 活性。其中茉莉酸甲酯結(jié)合氯化鈣采前處理對紅托竹蓀的保鮮效果最好，能夠顯著推遲采后紅托竹蓀的劣變進程，更好地維持紅托竹蓀營養(yǎng)品質(zhì)和抗氧化酶活性。該研究可為紅托竹蓀的貯藏保鮮提供新思路。