黃慧芹,徐友強(qiáng),2, ,李微微,2,張成楠,2,朱 華,王紅安,李秀婷,2
(1.北京工商大學(xué)食品營養(yǎng)與人類健康高精尖創(chuàng)新中心,北京 100048;2.北京市食品添加劑工程技術(shù)研究中心,北京 100048;3.北京華都釀酒食品有限責(zé)任公司,北京 102212)
傳統(tǒng)發(fā)酵白酒是中國特色蒸餾酒,生產(chǎn)歷史悠久[1]。由于自然環(huán)境、原料、發(fā)酵劑的種類和生產(chǎn)工藝不同,白酒形成了許多風(fēng)格獨(dú)特的香型[2]。隨著白酒研究的不斷深入,人們也認(rèn)識到不同香型白酒風(fēng)味的形成與發(fā)酵微生物的組成和演替變化是緊密相關(guān)的。作為三大基本香型之一,醬香型白酒以優(yōu)雅獨(dú)特的醬香味著稱[3],發(fā)酵過程需要一年時(shí)間,期間需要經(jīng)歷7 輪次取酒[4]。普遍認(rèn)為,第一輪、第二輪的基酒澀味大,這很可能是由于原料高粱中的化學(xué)物質(zhì)單寧和多酚引起的,這些化學(xué)物質(zhì)可以通過蒸餾遷移到基酒中,第三、第四和第五輪的基酒質(zhì)量較好[5],又稱為“大回酒”,而第六輪和第七輪基酒質(zhì)量再度變差,有苦味和焦糊的味道[6]。綜合比較,第四輪次的基酒風(fēng)味最為突出[7-8],作為醬香型白酒勾調(diào)過程中最重要的組成部分,具有較高的研究價(jià)值。
微生物的代謝是醬香型白酒釀造過程物料轉(zhuǎn)化的內(nèi)在動力[9],在整個(gè)釀造周期中,微生物種類和豐度處于動態(tài)變化之中,影響最終風(fēng)味化合物的形成。醬香型白酒釀造工藝復(fù)雜,條件獨(dú)特,釀造過程的微生物來源主要包括大曲、酒醅和環(huán)境微生物三部分。在堆積發(fā)酵的整個(gè)過程中,酒醅暴露在開放式環(huán)境中,富集了許多環(huán)境中的微生物,這些微生物參與到后續(xù)入窖發(fā)酵過程中,賦予輪次酒獨(dú)特風(fēng)味[10]。例如,王琳等[11]對茅臺鎮(zhèn)醬香型白酒的七個(gè)輪次發(fā)酵的釀造環(huán)境進(jìn)行細(xì)菌菌群分析,在第四輪次中發(fā)現(xiàn)特殊菌屬Corynebacterium(棒狀桿菌屬),可利用環(huán)境中的碳源發(fā)酵產(chǎn)生賴氨酸改善酒的風(fēng)味;張春林等[12]對第二輪次堆積發(fā)酵酒醅進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)對風(fēng)味形成影響最大的微生物為Bacillus(芽孢桿菌屬)、Emericella(裸胞殼屬)、Oceanobacillus(海洋芽孢桿菌屬);胡小霞等[13]對堆積和窖池發(fā)酵過程的細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),入窖發(fā)酵過程中細(xì)菌多樣性和豐度均低于堆積發(fā)酵,即堆積發(fā)酵中富集的微生物需要在入窖發(fā)酵過程中進(jìn)一步演替。這些研究表明,分析入窖之后酒醅發(fā)酵過程中微生物及風(fēng)味物質(zhì)變化具有重要意義,有助于合理調(diào)節(jié)白酒發(fā)酵過程,提高醬香型白酒產(chǎn)品質(zhì)量。團(tuán)隊(duì)前期研究[14]發(fā)現(xiàn)第五、六輪次酒醅中的優(yōu)勢細(xì)菌屬均為Lactobacillus(乳芽孢桿菌屬)、Oceanobacillus(海洋芽孢桿菌屬)、Virgibacillus(枝芽孢桿菌屬),但入窖發(fā)酵過程中豐度并不一致,第六輪次優(yōu)勢真菌屬為Issatchenkia(伊薩酵母屬)、Thermoascus(嗜熱子囊菌屬)和Byssochlamys(絲衣菌屬),而Thermoascus(嗜熱子囊菌屬)和Aspergillus(曲霉屬)的對應(yīng)豐度遠(yuǎn)低于第五輪,并提出第六輪次入窖酒醅中酯合成真菌的減少可能是酯類風(fēng)味物質(zhì)濃度下降的原因。團(tuán)隊(duì)近期研究[15]通過分析前三輪次入窖酒醅的微生物和風(fēng)味物質(zhì),發(fā)現(xiàn)第三輪入窖酒醅中的風(fēng)味物質(zhì)濃度有所提高,提出風(fēng)味物質(zhì)的變化是第三輪次基酒質(zhì)量提高的重要原因。然而,總體來講目前對于醬香型白酒入窖酒醅發(fā)酵過程的研究較少,限制了人們對發(fā)酵過程的科學(xué)認(rèn)知,特別是對于關(guān)鍵輪次第四輪次入窖酒醅發(fā)酵過程中微生物和風(fēng)味物質(zhì)的變化尚未見報(bào)道。
本文通過高通量測序技術(shù)對北京地區(qū)醬香型白酒第四輪次入窖發(fā)酵過程中酒醅微生物群落結(jié)構(gòu)進(jìn)行了研究,分析了微生物菌群的演替變化;利用頂空固相微萃取-氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用技術(shù)對酒醅的揮發(fā)性風(fēng)味成分進(jìn)行了定性和相對定量分析。通過分析白酒發(fā)酵過程中微生物及風(fēng)味物質(zhì)的變化,定位核心微生物,探討微生物與風(fēng)味物質(zhì)的相互關(guān)聯(lián),從中挖掘與風(fēng)味相關(guān)的功能微生物,有助于為后續(xù)通過功能微生物理性擾動發(fā)酵體系,為提高北京地區(qū)醬香型白酒的產(chǎn)品品質(zhì)提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù)依據(jù)。
磷酸緩沖液、Taq DNA 聚合酶試劑盒 北京全式金生物技術(shù)有限公司;4-辛醇(色譜級)天津福晨化學(xué)試劑有限公司;瓊脂糖 南京生興生物技術(shù)有限公司;50×TAE 緩沖液 北京索萊寶科技有限公司;DNA Marker Takara;核酸染料Gengreen 上海賽百盛有限公司;引物 上海捷瑞生物工程股份有限公司;E.Z.N.A.Soil DNA Kit 試劑盒 Omega Bio-Tek公司。
CP153 電子天平 奧豪斯儀器(上海)有限公司;T100-Thermal Cycler PCR 儀 美國Bio-Rad 公司;EPS301 瓊脂糖凝膠電泳儀 北京六一儀器廠;YXQ-LS-50SII 立式壓力蒸汽滅菌器 上海博迅實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;Aquaplore3S 超純水系統(tǒng)美國艾科浦公司;KQ5200DA 超聲波清洗儀 上海超聲儀器廠;GC 7890-5975 MSD 氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀 美國安捷倫科技有限公司。
1.2.1 抽樣方法 酒醅樣品采自北京華都酒廠窖池發(fā)酵生產(chǎn)車間2020 年第四輪次12 號南池入窖發(fā)酵酒醅,入窖前已提前進(jìn)行5 d 的薄層堆積發(fā)酵。根據(jù)前期研究基礎(chǔ)[15],入窖酒醅選取入窖0、7、14、21、30 d 為取樣時(shí)間點(diǎn),15 點(diǎn)取樣,窖池發(fā)酵周期為30 d。在每個(gè)取樣時(shí)間點(diǎn)取樣時(shí),按酒醅上、中、下三個(gè)層面,每個(gè)層面選擇中間及四周邊緣位置采取樣品,取樣位點(diǎn)參考圖1,各層樣品混勻后作為一個(gè)時(shí)間點(diǎn)的取樣樣品。將采集的樣品分為兩份:一份用于提取總DNA,另一份儲存在-80 ℃用于進(jìn)行微生物群落結(jié)構(gòu)分析。
圖1 醬香型白酒第四輪次入窖酒醅取樣位點(diǎn)參考Fig.1 Sampling sites of Sauce-flavored Baijiu in the fourthround of cellar
1.2.2 樣品DNA 提取和PCR 擴(kuò)增 通過E.Z.N.A.Soil DNA Kit 提取試劑盒提取酒醅樣品中的微生物宏基因組,提取步驟參照說明書。根據(jù)前期研究方法[16]進(jìn)行基因擴(kuò)增,細(xì)菌擴(kuò)增16S rRNA 基因所用引物,338F(5'-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3')和806R(5'-GGACTA CHVGGGTWTCTAAT-3');真菌擴(kuò)增18S rRNA 基因所用引物,ITS1F(5'-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3')和ITS2R(5'-GCTGCGTTCTTCATCGATGC-3'),使用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測目的條帶大小。
基因PCR 體系如表1 所示;基因擴(kuò)增方法如表2 所示。
表1 PCR 反應(yīng)體系Table 1 PCR reaction system
表2 PCR 反應(yīng)程序Table 2 PCR reaction procedure
1.2.3 Illumina 公司MiSeq 測序 將純化的擴(kuò)增產(chǎn)物等分子量匯集在Illumina MiSeq PE300 平臺/NovaSeq PE250 平臺(Illumina,上海),并根據(jù)上海Majorbio生物制藥科技有限公司(中國,上海)的標(biāo)準(zhǔn)方案進(jìn)行配對端測序。原始測序數(shù)據(jù)已提交到NCBI SRA 數(shù)據(jù)庫,提交編號為SUB8652827。
1.2.4 揮發(fā)性化合物的提取與分析 結(jié)合宮俐莉等[17]的研究,本研究通過頂空-固相微萃取分析揮發(fā)性化合物。樣品前處理方法參照李鳳蘭等[5]的研究進(jìn)行:準(zhǔn)確稱取2.00 g 酒醅樣品于20 mL 頂空瓶中,向其中加入5 mL 的飽和氯化鈉溶液,加入6 μL 4-辛醇(0.5 mg/mL)作為內(nèi)標(biāo)物,以90 W 功率超聲10 min。頂空-固相微萃取使用TG-5MS 色譜柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm,J&W Science,F(xiàn)olsom,CA,USA),通過火焰電離檢測器分析風(fēng)味化合物。氣相色譜條件:溫度以2 ℃/min 的速率升至100 ℃并保持5 min,然后以2 ℃/min 的速率升至150 ℃并保持2 min,最后以10 ℃/min 速率升至230 ℃并保持5 min。氦氣載氣的流速為1.5 mL/min。質(zhì)譜采用電子轟擊電離(EI)離子源,離子源溫度230 °C,電子能量70 eV,離子掃描范圍為35~450 m/z。風(fēng)味成分的鑒定通過與NIST 11 a.L 數(shù)據(jù)庫(安捷倫科技公司)中的標(biāo)準(zhǔn)質(zhì)譜圖進(jìn)行比對,使用內(nèi)標(biāo)法對風(fēng)味化合物進(jìn)行相對定量分析。通過自動積分程序獲得各色譜峰的面積,計(jì)算樣品中各組分峰面積分別與內(nèi)標(biāo)物質(zhì)峰面積之比,定量各風(fēng)味組分的含量。酒醅中風(fēng)味物質(zhì)的定量數(shù)據(jù)處理主要采用Microsoft Office Excel 2021 應(yīng)用程序進(jìn)行數(shù)據(jù)計(jì)算,通過TBtools、R 語言完成相關(guān)圖形的繪制。
所有測定平行三次進(jìn)行,結(jié)果表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差。方差分析使用SPSS 26.0 軟件(SPSS Inc.,美國伊利諾伊州芝加哥)進(jìn)行。使用Origin 8.5 軟件進(jìn)行揮發(fā)性成分分析和微生物圖譜分析。采用Pheatmap 軟件包進(jìn)行相關(guān)性分析,使用相關(guān)熱圖進(jìn)行可視化,分析風(fēng)味物質(zhì)與微生物之間的關(guān)聯(lián)性。
2.1.1 細(xì)菌多樣性 稀釋曲線可以比較不同的測量數(shù)據(jù)樣本的物種豐富度,也可以說明樣本的測序數(shù)據(jù)量是否合理,圖2 中稀釋性曲線趨于平坦,說明測序的數(shù)據(jù)量和豐富度是合理的[18]。圖2a 展示了醬香型白酒第四輪次入窖酒醅細(xì)菌樣本的稀釋曲線在測序數(shù)5000 時(shí)驟增,后逐漸趨于平坦,這表明本實(shí)驗(yàn)的各細(xì)菌樣本測序數(shù)據(jù)量合理,測序深度達(dá)到要求,與實(shí)際生物信息相符合。利用Shannon 曲線對不同樣本的物種多樣性進(jìn)行了比較,如圖2b 所示,所有樣本中細(xì)菌的Shannon 曲線在測序數(shù)1000 左右時(shí)驟增,后變得平坦,說明測量數(shù)據(jù)的量可以覆蓋樣本中絕大多數(shù)細(xì)菌多樣性信息,測序數(shù)據(jù)量和深度是可靠的。實(shí)際測量結(jié)果可以代表樣本的實(shí)際情況。
圖2 醬香型白酒第四輪次入窖酒醅的細(xì)菌樣本基于Sobs 指數(shù)與Shannon 指數(shù)的稀釋曲線圖Fig.2 Dilution plots of bacterial samples of the fourth round Jiupei of sauce-flavored Baijiu based on the Sobs index and the Shannon index
門水平上,在醬香型白酒第四輪次入窖酒醅中共檢出16 個(gè)細(xì)菌門。圖3a 展示了酒醅中相對豐度大于1%的細(xì)菌門,有Firmicutes(厚壁菌門)、Proteobacteria(變形菌門)、Actinobacterieta(放線菌門)。在整個(gè)發(fā)酵期間,F(xiàn)irmicutes(厚壁菌門)一直處于絕對的優(yōu)勢地位,平均相對豐度>85%,該結(jié)果與醬香型白酒(山東產(chǎn)區(qū))[19]、清香型白酒[20]、濃香型白酒[21]、芝麻香型白酒[22]研究結(jié)論一致。在醬香型、芝麻香型、清香型白酒釀造過程中發(fā)現(xiàn)Firmicutes(厚壁菌門)也是主要細(xì)菌門,說明Firmicutes 是中國白酒發(fā)酵過程中的關(guān)鍵微生物。不同的是,南方產(chǎn)區(qū)的醬香型白酒優(yōu)勢細(xì)菌門有兩種,研究發(fā)現(xiàn)貴州產(chǎn)區(qū)的醬香型白酒發(fā)酵過程中,F(xiàn)irmicutes(厚壁菌門)、Proteobacteria(變形菌門)兩個(gè)門占主導(dǎo)地位[9]。以上結(jié)果表明白酒發(fā)酵中后期(14~30 d),細(xì)菌門水平群落多樣性降低,發(fā)酵微生態(tài)結(jié)構(gòu)由多菌系演替為單一的Firmicutes(厚壁菌門)為主導(dǎo)的發(fā)酵模式,是白酒酒醅發(fā)酵細(xì)菌門水平演替的普遍模式。目水平上,共檢出89 個(gè)細(xì)菌目,豐度大于1%的有9 個(gè),包括Lactobacillales(乳酸桿菌目)、Bacillales(桿菌目)、Thermoactinomycetales(熱放線菌目)、Pseudomonadales(假單胞菌目)、Propionibacteriales(丙酸桿菌目)、Burkholderiales(伯克霍爾德氏菌目)、Staphylococcales(葡萄球菌目)、Acetobacterales(醋酸菌目)、Enterobactrales(腸桿菌目)(如圖3b 所示)。在發(fā)酵前期(1~14 d),Lactobacillales(乳酸桿菌目)相對豐度較低,Bacillales(桿菌目)則相對豐度較高,其次是Thermoactinomycetales(熱放線菌目)。發(fā)酵14 d,細(xì)菌物種多樣性豐富且相對豐度分布比較多樣。之后,Lactobacillales(乳酸桿菌目)相對豐度顯著增加,說明此時(shí)的環(huán)境適宜乳酸桿菌的生長,此時(shí)窖池處于厭氧環(huán)境,厭氧型細(xì)菌成為優(yōu)勢種群出現(xiàn),且一直持續(xù)到出窖階段。屬水平上,共檢出260 個(gè)細(xì)菌屬,豐度大于1%的有16 個(gè),如圖3c 所示,其中平均相對豐度較高的10 個(gè)菌屬包括Lactobacillus(乳酸桿菌屬)、Virgibacillus(枝芽孢桿菌屬)、Kroppenstedtia(克羅彭斯特菌屬)、Oceanobacillus(海洋芽孢桿菌屬)、Bacillus(芽孢桿菌屬)、Thermoactinomyces(高溫放線菌屬)、Pseudomtonas(假單胞菌屬)、unclassified_f_Bacillacese(未分類芽孢細(xì)菌屬)、Scopulibacillus(火山渣芽胞桿菌屬)、Ralstonia(羅爾斯通菌屬)。其中,Lactobacillus(乳酸桿菌屬)占細(xì)菌數(shù)量的3.55%~89.96%,平均相對豐度為67.70%,入窖初期相對含量較低,在入窖第21 d 達(dá)到最高值,后期保持在較高水平。Virgibacillus(枝芽孢桿菌屬)占細(xì)菌數(shù)量的2.90%~26.32%,平均相對豐度為14.28%,Kroppenstedtia(克羅彭斯特菌屬)占細(xì)菌數(shù)量的2.32%~25.57%,平均相對豐度為10.70%,兩個(gè)菌屬在入窖初期相對含量較高,相對豐度均在入窖第21 d開始降低。
圖3 醬香型白酒第四輪次入窖酒醅中門、目、屬水平細(xì)菌群落組成Fig.3 Composed of bacterial communities in the middle of the door,order and genus of the fourth round Jiupei of sauce-flavored Baijiu
發(fā)酵0 d 時(shí),酒醅中Virgibacillus(枝芽孢桿菌屬)相對豐度最高,Kroppenstedtia(克羅彭斯特菌屬)、Oceanobacillus(海洋芽孢桿菌屬)、Lactobacillus(乳桿菌屬)、Bacillus(芽孢桿菌屬)和Thermoactinomyces(熱放線菌屬)依次降低。在發(fā)酵第7 d,Lactobacillus(乳桿菌屬)在酒醅中的相對豐度明顯增大,Virgibacillus(枝芽孢桿菌屬)、Kroppenstedtia(克羅彭斯特菌屬)、Oceanobacillus(海洋芽孢桿菌屬)的相對豐度均降低。發(fā)酵14 d,豐度小于1%的其余細(xì)菌總相對豐度占比增加。與目水平一致的是,發(fā)酵前期(0~7 d)以Virgibacillus(枝芽孢桿菌屬)和Kroppenstedtia(克羅彭斯特菌屬)兩個(gè)為優(yōu)勢屬,14 d 始,Lactobacillus(乳桿菌屬)演替為絕對的優(yōu)勢屬,這表明細(xì)菌在整個(gè)發(fā)酵階段以發(fā)酵14 d為分界線出現(xiàn)了明顯的優(yōu)勢屬的交替,在第一、二、五、六輪次的發(fā)酵14 d 入窖酒醅中均發(fā)生了優(yōu)勢屬Lactobacillus的相對豐度明顯升高的現(xiàn)象[14-15]。
隨著發(fā)酵時(shí)間的延長,發(fā)酵中后期Lactobacillus(乳桿菌屬)相對豐度增加,尤其是發(fā)酵第14 d 開始相對豐度顯著增加,且一直維持到出窖,這期間窖池處于厭氧狀態(tài),適應(yīng)厭氧呼吸的乳桿菌屬快速生長,一些好氧或兼性好氧性細(xì)菌生長受到抑制,這也是細(xì)菌演替變化的表現(xiàn),在王玉榮等[23]的研究中也發(fā)現(xiàn)Lactobacillus為第四輪次出窖酒醅中的絕對優(yōu)勢細(xì)菌屬。而作為好氧的枝芽孢桿菌屬則是呈現(xiàn)明顯的減少趨勢,與乳桿菌屬相比,幾乎呈現(xiàn)完全相反的變化趨勢。研究將平均相對豐度>1%且至少在50%的樣品中豐度超過1%的微生物定義為核心微生物[24-25],本文將醬香型白酒第四輪次入窖酒醅的優(yōu)勢細(xì)菌屬定位到乳桿菌屬和芽孢桿菌屬,這兩種優(yōu)勢細(xì)菌屬在多種香型白酒發(fā)酵過程均有報(bào)道[19-20,22,26]。芽孢桿菌可代謝產(chǎn)生多種水解發(fā)酵原料的酶類,包括淀粉酶、糖化酶、蛋白酶等,發(fā)酵時(shí)產(chǎn)生吡嗪類、有機(jī)酸等風(fēng)味物質(zhì),對于白酒風(fēng)味具有重要影響[27-29]。乳桿菌屬在發(fā)酵過程中利用糖類產(chǎn)生乳酸,為乳酸乙酯的合成提供前體物質(zhì),提高了酒體的醇厚感,其產(chǎn)生的有機(jī)酸類也與酒體酸味呈現(xiàn)顯著的相關(guān)性[26,30]。此外,與南方醬香型白酒發(fā)酵中優(yōu)勢細(xì)菌屬相比[12],Virgibacillus(枝芽孢桿菌屬)、Oceanobacillus(海洋芽孢桿菌屬)、Ralstonia(羅爾斯通菌屬)是北京地區(qū)醬香型白酒發(fā)酵中獨(dú)有的優(yōu)勢細(xì)菌屬,而這些特有菌屬在白酒釀造中的功能及對白酒風(fēng)味的貢獻(xiàn)尚無深入研究。以上結(jié)果表明北京地區(qū)醬香型白酒發(fā)酵優(yōu)勢細(xì)菌屬除了具有和南方地區(qū)醬香型白酒發(fā)酵的優(yōu)勢共性細(xì)菌屬外,還存在著其所特有的優(yōu)勢細(xì)菌屬(圖3c)。
2.1.2 真菌多樣性 如圖4a 所示為醬香型白酒第四輪次入窖酒醅中所測樣品的真菌Sobs 指數(shù)稀釋曲線,各真菌樣本的測序數(shù)據(jù)量合理,測序深度足夠,與實(shí)際生物信息相符合。如圖4b 所示,所有樣品的真菌Shannon 曲線在測序數(shù)在1000 左右時(shí)均趨向平坦,說明本實(shí)驗(yàn)中樣本的測序數(shù)據(jù)量足夠大,已經(jīng)覆蓋了樣本中絕大多數(shù)真菌的多樣性信息,結(jié)果科學(xué)可靠。
圖4 醬香型白酒第四輪次入窖酒醅的真菌樣本基于Sobs 指數(shù)與Shannon 指數(shù)的稀釋曲線圖Fig.4 Dilution plots of fungal samples of the fourth round Jiupei of sauce-flavored Baijiu based on the Sobs index and the Shannon index
門水平上,在醬香型白酒第四輪次入窖發(fā)酵酒醅中共檢測到7 個(gè)門,其中豐度大于1%的真菌門包含Ascomycota(子囊菌門)、Basidiomycota(擔(dān)子菌門)(圖5a)。其中,Ascomycota(子囊菌門)在醬香型白酒第四輪次入窖發(fā)酵過程中相對豐度達(dá)95%以上,占絕對主導(dǎo)地位,這與戴亦杰[31]研究結(jié)果相同,說明在白酒發(fā)酵過程中,真菌門水平群落多樣性較低,發(fā)酵微生態(tài)結(jié)構(gòu)是由Ascomycota 和Basidiomycota 為主導(dǎo)的真菌微生物組合。
圖5 醬香型白酒第四輪次入窖酒醅中門、目、屬水平真菌群落組成Fig.5 Composed of fungal communities in the middle of the door,order and genus of the fourth round Jiupei of sauce-flavored Baijiu
目水平上,共檢出36 個(gè)真菌目,豐度大于1%的有7 個(gè),包括Eurotiales(散囊菌目)、Saccharomycetales(酵母菌目)、unclassified_p_Ascomycota(未分類子囊菌目)、Trichosporonalles(毛孢菌)、Microascales(小囊菌目)、Hypocreales(肉座菌目)、Pleosporales(格孢腔菌目)(圖5b)。在發(fā)酵期間,Eurotiales 相對豐度呈現(xiàn)先增加后穩(wěn)定的趨勢,在第21 d處于最高值。相反的,Saccharomycetales 的相對豐度逐漸減小,同樣,在第30 d 達(dá)到最小值。在目水平上,Eurotiales 和Saccharomycetales 占據(jù)絕對優(yōu)勢。
屬水平上共檢出169 個(gè)真菌屬,豐度大于1%的有16 個(gè),其中排名前10 的包括Thermoascus(嗜熱子囊菌屬)、Aspergillus(曲霉屬)、Issatchenkia(伊薩酵母屬)、Pichia(畢赤酵母屬)、Thermomyces(嗜熱真菌屬)、Rasamsonia、unclassified_o_Saccharomycetales(未分類酵母菌屬)、Monascus(紅曲霉屬)、Byssochlamys(絲衣霉屬)、Penicillium(青霉屬)(圖5c)。其中,Thermeascus(嗜熱子囊菌屬)占真菌數(shù)量的15.34%~45.46%,平均相對豐度為35.40%,在入窖第14 d 達(dá)到最高值。Aspergillus(曲霉屬)占真菌數(shù)量的3.44%~20.74%,平均相對豐度為14.76%,在入窖第7 d 相對含量開始劇增,在第14 d 達(dá)到最高值。Issatchenkia(伊薩酵母屬)占真菌數(shù)量的2.46%~35.92%,平均相對豐度為14.45%,在發(fā)酵前期相對豐度較高,后逐步下降。在整個(gè)發(fā)酵期間,Thermeascus(嗜熱子囊菌屬)、Aspergillus(曲霉屬)相對豐度呈現(xiàn)逐漸增加的趨勢,相反的,Issatchenkia(伊薩酵母屬)相對豐度呈現(xiàn)減少的趨勢,這與目水平的結(jié)果一致,也進(jìn)一步說明了Thermeascus(嗜熱子囊菌屬)、Aspergillus(曲霉屬)和Issatchenkia(伊薩酵母屬)均為優(yōu)勢屬。
真菌的代謝活動產(chǎn)生了豐富的酶類物質(zhì),如酸性蛋白酶、纖維素酶、糖化酶、液化酶、酯化酶等,這些酶類物質(zhì)對于糧食中大分子的物質(zhì)如蛋白質(zhì)、淀粉、脂質(zhì)等起到了一定的轉(zhuǎn)化作用[32]。雖然不同香型白酒主要的香味物質(zhì)不同,但它們共同的特點(diǎn)是大部分都來自于釀造過程中微生物的代謝,真菌群落組成結(jié)構(gòu)分析結(jié)果顯示,霉菌、酵母菌占比較大,這與后期白酒的酒精含量和香氣成分緊密相關(guān)。酵母菌和霉菌作為主要的功能菌,酵母菌通過代謝活動產(chǎn)生酒精,霉菌則為發(fā)酵前期生成有機(jī)酸和酯類物質(zhì)的主要菌種[33]。在醬香型白酒的生產(chǎn)中,通過吸附萃取和熱脫附結(jié)合氣質(zhì)聯(lián)用儀測定白酒中酯類成分,可以發(fā)現(xiàn)霉菌不僅代謝產(chǎn)生檸檬酸、葡萄糖酸、草酸等有機(jī)酸,還能生成淀粉酶、蛋白酶等酶制劑[34]。綜合分析上述結(jié)果,醬香型白酒第四輪次入窖發(fā)酵酒醅中的核心微生物包括細(xì)菌屬的Lactobacillus(乳酸桿菌屬)、Kroppenstedtia(克羅彭斯特菌屬)、Virgibacillus(枝芽孢桿菌屬),以及真菌屬的Thermeascus(嗜熱子囊菌屬)、Issatchenkia(伊薩酵母屬)、Aspergillus(曲霉屬)。醬香型白酒第四輪次入窖酒醅中,與細(xì)菌多樣性相比,真菌的多樣性差異較小,其余輪次中酒醅的微生物多樣性與第四輪次類似,也表現(xiàn)為真菌多樣性低于細(xì)菌多樣性的特征[14-15]。
2.2.1 白酒發(fā)酵過程酒醅風(fēng)味物質(zhì)分析 第四輪次酒醅樣品共檢出50 種揮發(fā)性物質(zhì),包含酯類28 種、醇類9 種、脂肪酸5 種、醛類2 種、其他化合物6 種。表3 展示了酒醅中揮發(fā)性化合物的相對含量, 其中酯類占比最高,其次是醇類和酸類。在白酒發(fā)酵過程中醇類、酯類、酸類化合物的含量隨著入窖發(fā)酵時(shí)間的增加呈現(xiàn)先上升后下降的規(guī)律,而總酯相對含量在每一個(gè)發(fā)酵時(shí)間點(diǎn)都較高。
表3 基于氣相色譜-質(zhì)譜分析的樣品揮發(fā)性化合物含量(mg/kg)Table 3 Volatile compound content of samples based on GC-MS spectrometry (mg/kg)
發(fā)酵30 d 時(shí)酒醅中揮發(fā)性化合物中,酯類物質(zhì)的種類是所有測出的揮發(fā)性成分中最豐富的。我國的白酒與其他蒸餾酒的不同之一就是以酯香為主,尤其是體現(xiàn)在醬香型白酒中[35],大回酒酒質(zhì)較好就是由于酯類、酸類物質(zhì)占比高[36]。戴奕杰等[37]的研究顯示在酒質(zhì)較好的“大回酒”中,四大酯(乙酸乙酯、乳酸乙酯、丁酸乙酯和己酸乙酯)的含量達(dá)到了釀造過程中的最高含量。本研究中乳酸乙酯(7.01±0.70 mg/kg)含量最高,其次是(E)-9-十八烯酸乙酯(3.31±0.64 mg/kg)、己酸乙酯(1.30±0.21 mg/kg)、琥珀酸二乙酯(0.87±0.05 mg/kg)、乙酸乙酯(0.31±0.02 mg/kg)等,均高于前三輪次入窖酒醅相應(yīng)的酯含量[15],為醬香型白酒提供酯香風(fēng)味。其中,乳酸乙酯含量由0 d 的2.99±0.17 mg/kg 提高到7.01±0.70 mg/kg;己酸乙酯含量由0.17±0.01 mg/kg 提高到1.30±0.21 mg/kg;乙酸乙酯含量由0.12±0.01 mg/kg 提高到0.31±0.02 mg/kg。醇類在21 d 含量最高,其中乙醇含量最高,其次為苯乙醇、糠醇、正戊醇、異戊醇、苯甲醇。其中乙醇含量由 0 d 的 3.75±0.28 mg/kg 增加到 21 d 的5.68±0.75 mg/kg,此后含量基本穩(wěn)定不變;苯乙醇是除乙醇以外含量最高的醇類物質(zhì),含量由 0 d 的 2.90±0.19 mg/kg 增加到 30 d 的 4.28±0.27 mg/kg,在發(fā)酵后期(21~30 d)基本保持不變。高級醇在形成酒的味道、提高酒的豐滿度和厚重感方面起著重要作用,它不僅本身可以呈香呈味,而且是白酒中甜味劑和助香劑的主要來源[38-39]。21 d 酒醅中酸性物質(zhì)含量較高,出窖時(shí)含量降低,酸性物質(zhì)中乙酸含量最高,其次為正己酸、α-(1-羥乙基)-苯丙酸、棕櫚酸、苯甲酸。與其它香型相比,醬香型白酒中含量最高的酸是乙酸和丙酸[40],尤其是乙酸,在本研究中酒醅乙酸相對含量也較為突出,酸類物質(zhì)的作用主要是影響白酒的口感和后味,起到呈香、助香、減少刺激和緩沖平衡的作用。在發(fā)酵過程中,其他揮發(fā)物(如酚類和醛類)的量沒有觀察到顯著差異。
2.2.2 風(fēng)味化合物與微生物群落的相關(guān)性 微生物代謝是白酒中風(fēng)味化合物的重要來源,如Lactobacillus等產(chǎn)酸微生物使白酒酸味增加,Bacillus、Saccharomyces等相對豐度的提高能夠使醛酮類、酯類等香氣成分含量增加[41],圖6 分析了北方醬味白酒第四輪次發(fā)酵過程中不同微生物與風(fēng)味物質(zhì)的相關(guān)性。
圖6 醬香型白酒第四輪次入窖酒醅微生物群落與風(fēng)味化合物的相關(guān)性Fig.6 Correlation between the microbial community and flavor substances in the fourth round Jiupei of sauce-flavored Baijiu
在關(guān)鍵細(xì)菌群落中(圖6a),Lactobacillus與乳酸乙酯(A2)、琥珀酸二乙酯(A5)、(E)-10-十七碳烯-8-炔二酸甲酯(A8)、苯乙酸乙酯(A9)、月桂酸乙酯(A25)等呈顯著正相關(guān)(P<0.01),結(jié)合已報(bào)道的其余輪次入窖發(fā)酵情況,發(fā)現(xiàn)Lactobacillus在醬香型白酒發(fā)酵過程中具有重要的酯類合成作用[14-15,42],是一種重要的功能微生物;Virgibacillus與苯甲酸(A40)、十二烷基七聚乙二醇醚(A43)、1-(1H-吡咯-2-基)-乙酮(2-乙?;量ˋ49)呈顯著正相關(guān)(P<0.01),與乳酸乙酯(A2)、琥珀酸二乙酯(A5)和苯乙酸乙酯(A9)呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01);同樣地,Kroppenstedtia與琥珀酸單乙酯(A24)、苯甲醇(A30)、苯乙醇(A33)、十二烷基七聚乙二醇醚(A43)、1,2-二-4-吡啶-1,2-乙二醇(A47)、1-(1H-吡咯-2-基)-乙酮(2-乙酰基吡咯)(A49)呈顯著正相關(guān)(P<0.01),這與Virgibacillus正相關(guān)的風(fēng)味化合物相近,而兩種菌的負(fù)相關(guān)性化合物也極為相似,包括乳酸乙酯(A2)、琥珀酸二乙酯(A5)、苯乙酸乙酯(A9)以及月桂酸乙酯(A25),這些顯著相關(guān)的風(fēng)味化合物與白酒發(fā)酵過程中酒醅細(xì)菌群落多樣性的演替相對應(yīng),即發(fā)酵過程中優(yōu)勢屬由Virgibacillus、Kroppenstedtia逐漸轉(zhuǎn)變?yōu)長actobacillus。
在關(guān)鍵真菌群落中,Thermoascus與十八乙二醇單十二烷基醚(A48)呈正相關(guān),與DL-亮氨酸乙酯(A4)、癸酸乙酯(A22)、棕櫚酸乙酯(A23),苯甲醇(A30)呈負(fù)相關(guān)(圖6b)。Aspergillus曲霉菌與乳酸乙酯(A2)、(E)-9 十八烯酸乙酯(A14)呈顯著正相關(guān)(P<0.01),與苯甲醇(A30)呈負(fù)相關(guān)(圖6b)。Issatchenkia與DL-亮氨酸乙酯(A4)、4-乙基愈創(chuàng)木酚(A46)呈正相關(guān),與丁酸(A41)呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.01)。Thermoascus與Issatchenkia相關(guān)的部分風(fēng)味化合物呈現(xiàn)出相反的相關(guān)性,這對發(fā)酵期間優(yōu)勢屬Thermeascus相對豐度呈現(xiàn)逐漸增加而Issatchenkia相對豐度逐漸減少的演替過程提供佐證(圖5c)。
在之前的研究中發(fā)現(xiàn),對白酒風(fēng)味具有貢獻(xiàn)的關(guān)鍵酯類物質(zhì)有48 種[2],傳統(tǒng)觀點(diǎn)中與白酒的風(fēng)味密切相關(guān)的四大乙酯(乙酸乙酯、乳酸乙酯、丁酸乙酯和己酸乙酯)均包含在內(nèi),通過對第四輪次發(fā)酵酒醅中微生物與風(fēng)味物質(zhì)的關(guān)聯(lián)性分析,發(fā)現(xiàn)Monascus、Lactobacillus和Wickerhamomyces分別與乙酸乙酯、乳酸乙酯和己酸乙酯呈顯著正相關(guān)(P<0.01)。已有研究顯示紅曲霉通過產(chǎn)酯化酶可提升白酒中乙酸乙酯[43]、己酸乙酯[44]等酯類含量,石馨等[45]已將Wickerhamomyces應(yīng)用于模擬發(fā)酵提升己酸乙酯含量,同樣地可以在白酒發(fā)酵過程中利用功能微生物菌屬M(fèi)onascus、Lactobacillus等改善其余輪次基酒風(fēng)味,有助于提高白酒的品質(zhì)。
醬香型白酒采用傳統(tǒng)的固態(tài)發(fā)酵模式,開放式的發(fā)酵過程導(dǎo)致環(huán)境中多種微生物參與其中,隨著入窖發(fā)酵的進(jìn)行,原料消耗、窖池環(huán)境變化使每輪入窖都形成感官有差異的輪次酒,不同輪次酒的微生物結(jié)構(gòu)和風(fēng)味物質(zhì)組成存在著明顯不同,其中以大回酒中第四輪次酒風(fēng)味最佳。本文以北京地區(qū)醬香型白酒第四輪次發(fā)酵酒醅為研究對象,分析了發(fā)酵過程中核心微生物的結(jié)構(gòu)變化和風(fēng)味物質(zhì)的差異。第四輪次發(fā)酵酒醅中,優(yōu)勢細(xì)菌屬為Lactobacillus、Virgibacillus和Kroppenstedtia,優(yōu)勢真菌屬為Thermoascus、Issatchenkia和Aspergillus,在整個(gè)發(fā)酵過程中,優(yōu)勢菌屬由Virgibacillus、Kroppenstedtia、Issatchenkia交替為Lactobacillus、Thermoascus、Aspergillus。白酒發(fā)酵過程中關(guān)鍵風(fēng)味化合物醇類、酯類、酸類的含量隨著入窖發(fā)酵時(shí)間的增加呈現(xiàn)先上升后下降的規(guī)律,并且酯類相對含量較高,這顯著影響醬香型白酒的產(chǎn)品品質(zhì)。關(guān)聯(lián)性分析顯示Monascus、Lactobacillus和Wickerhamomyces分別與白酒中關(guān)鍵風(fēng)味物質(zhì)乙酸乙酯、乳酸乙酯和己酸乙酯呈正相關(guān)。本研究有助于尋找醬香型白酒發(fā)酵過程中潛在的功能微生物、明晰微生物與風(fēng)味物質(zhì)的相關(guān)性,為不同輪次醬香型白酒微生物區(qū)系波動和風(fēng)味物質(zhì)關(guān)聯(lián)比較分析提供基礎(chǔ)數(shù)據(jù),有助于推動提高醬香型白酒品質(zhì)的研究。