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長鏈非編碼RNA SNHG1對結(jié)直腸癌增殖、遷移的影響及調(diào)控機制

2024-04-09 15:50
黑龍江醫(yī)藥 2024年4期
關(guān)鍵詞:培養(yǎng)箱培養(yǎng)液調(diào)控

曹 強

湘潭醫(yī)衛(wèi)職業(yè)技術(shù)學(xué)院,湖南 湘潭 411102

結(jié)直腸癌(CRC)是常見的消化系統(tǒng)惡性腫瘤,近年來,其發(fā)病率和死亡率呈快速增長趨勢[1-2]。盡管CRC 診療技術(shù)不斷改進,但CRC的死亡率仍然較高,主要原因與CRC 早診率低、轉(zhuǎn)移復(fù)發(fā)率較高、敏感性分子靶向藥物較少等因素有關(guān),因此,探索CRC新的診斷標志物,發(fā)現(xiàn)其增殖、遷移相關(guān)分子靶標對于CRC臨床診斷、治療尤為重要。長鏈非編碼RNA(lncRNA)是一類長度超過200個核苷酸的轉(zhuǎn)錄本,不能翻譯蛋白質(zhì),其在表觀遺傳、轉(zhuǎn)錄及轉(zhuǎn)錄后水平通過對靶基因調(diào)控參與眾多病理生理過程[3]。研究表明,lncRNA 與CRC 增殖、侵襲、遷移等生物學(xué)過程密切相關(guān)[4]。小核仁RNA 宿主基因1(SNHG1)是位于染色體11q12.3 的新型lncRNA,其在神經(jīng)母細胞瘤、肺癌、骨肉瘤等惡性腫瘤的發(fā)生發(fā)展中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用[5]。SNHG1 在CRC 中的生物學(xué)功能及調(diào)控機制,目前研究報道較少,本研究旨在探討SNHG1 對CRC 增殖、遷移的影響及潛在的調(diào)控機制,以期為CRC潛在腫瘤標志物及藥物治療靶標的發(fā)現(xiàn)提供新的理論依據(jù)。現(xiàn)將研究結(jié)果報告如下。

1 材料與方法

1.1 細胞系、主要試劑和儀器

人正常結(jié)直腸上皮細胞系FHC、結(jié)直腸癌細胞系HT29 均購自中科院上海細胞庫。DMEM 培養(yǎng)基、胎牛血清購自江蘇齊氏生物科技有限公司。胰蛋白酶購自廈門海標科技有限公司。青霉素、鏈霉素購自上海擇葉生物科技有限公司。磷酸鹽緩沖液PBS 購自廣州威佳科技有限公司。蛋白裂解液購自上海康朗生物科技有限公司。qPCR試劑盒購自江蘇天凈沙基因診斷技術(shù)有限公司。引物、SNHG1 小干擾RNA 序列,陰性對照序列均由上海康顏生物科技有限公司設(shè)計合成。脂質(zhì)體liPofectamine2000 購自北京沃比森科技有限公司。四甲基偶氮唑鹽(MTT)試劑盒購自上海聯(lián)邁生物工程有限公司。STAT3、P-STAT3 抗體購自上海欽城生物科技有限公司。超凈工作臺購自濟南騰昊科學(xué)儀器有限公司。細胞培養(yǎng)箱購自上海合恒儀器設(shè)備有限公司。SH2-16K 離心機購自深圳三莉科技有限公司。164-5050 電泳儀購自濟南愛來寶儀器設(shè)備有限公司。倒置顯微鏡購自上海工洲閥門有限公司。Transwell 小室購自北京優(yōu)尼康科技有限公司。Tanon2500 凝膠成像儀購自上海橙誠科學(xué)儀器有限公司。

1.2 細胞培養(yǎng)、轉(zhuǎn)染和分組

將復(fù)蘇后的FHC、HT29 細胞接種于含1%青霉素-鏈霉素雙抗、10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)基中培養(yǎng),置于37 ℃、5%CO2培養(yǎng)箱中進行常規(guī)培養(yǎng)。48 h后倒置顯微鏡下觀察細胞生長情況,棄去培養(yǎng)液、PBS 清洗3 遍,加入0.5 mL 事先配置好的胰蛋白酶消化液充分消化。當細胞消化至變圓時棄去消化液終止消化,加入5 mL DMEM 培養(yǎng)液反復(fù)吹打,使細胞呈單細胞懸液狀態(tài),1 200 r/min 離心5 min,棄上清,收集HT29 細胞,加入MEM 培養(yǎng)液,調(diào)整細胞密度至4×104個/mL,吸取3 mL HT29 細胞懸液于6孔板中,置于細胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞生長匯合度達到70%~80%時進行細胞轉(zhuǎn)染操作。按照liPofectamine 2000轉(zhuǎn)染試劑說明書分別將SNHG1 小干擾RNA 序列(si-SN?HG1)、陰性對照序列(si-NC)轉(zhuǎn)入HT29細胞,并將其設(shè)置為si- SNHG1組和si-NC組。

1.3 qRT-PCR

胰酶消化并收集各組處于對數(shù)期生長的細胞于6 孔板中,每孔加入150 μL Trizol 試劑,反復(fù)吹打細胞,移入無Rnase的EP管中,加入250 μL氯仿,振蕩混勻后12 000 r/min離心10 min,小心吸去上層液于另一個無RNase 的EP 管中,加入等體積異丙醇充分混勻,用同樣方法離心,棄去上清,加入1 mL 75%乙醇,7 500 r/min 離心5 min,棄上清,置于冰上晾干,采用分光光度計測量RNA 濃度。取1 μgRNA 為模板逆轉(zhuǎn)錄為cDNA,采用qPCR 試劑盒檢測SNHG1 mRNA 表達水平,以GAPDH 為內(nèi)參,采用2-△△CT法計算SNHG1相對表達量。

引 物 序 列: SNHG1 上 游 5'-CCTAAAGCCAC?GCTTCTTG-3',下游5'-TGCAGGCTGGAGATCCTACT-3'。GAPDH上游5'-TGTAGGCTCATTTGCAGGGG-3',下游5'-ATGGCATGGACTGTGGTCTG-3'。

1.4 MTT

將si-SNHG1 組和si-NC 組細胞以每孔2×103個細胞密度接種于96孔板,每組設(shè)置3個復(fù)孔,置于37℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)24 h、48 h、72 h,每孔加入20 μL MTT試劑,培養(yǎng)箱中避光孵育3 h,棄去培養(yǎng)液,并加入100 μLDMSO試劑,充分振蕩,酶標儀檢測各孔490 nm處光密度(OD)值,OD值大小表示細胞增殖活性強弱。

1.5 Transwell

胰酶消化并收集處于對數(shù)期生長的si-SNHG1 組和si-NC 組細胞。采用不含胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液重懸細胞,將細胞密度調(diào)整為2×105/mL,將Transwell 小室置于24 孔板中,取100 μL 上述細胞懸液加入Transwell 上室,Tran?swell 下室加入600 μL 含10%胎牛血清的DMEM 培養(yǎng)液,37 ℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,甲醇固定10 min,結(jié)晶紫染色15 min,無菌棉簽擦去未穿膜的HT29 細胞,顯微鏡觀察并隨機取6個視野并計算遷移細胞個數(shù)。

1.6 Western blot

分別收集處于對數(shù)期生長的si-SNHG1組和si-NC組細胞于離心管中,加入RIPA 裂解液,置于冰上裂解10 min,離心取上清液,采用BCA法測定蛋白質(zhì)濃度。根據(jù)說明書配置SDS-PAGE 膠,每孔上樣量為25 μg蛋白質(zhì),進行SDS-PAGE 凝膠電泳,電泳結(jié)束后,將蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)移至PVDF 膜上,室溫下5%的脫脂牛奶封閉2 h。加入一抗(STAT3、P-STAT3 稀釋濃度均為1∶1 000),4 ℃下孵育過夜,TBST 充分洗膜后,使用辣根酶二抗標記物室溫下孵育2 h。采用化學(xué)熒光發(fā)光法(ECL)顯影,以GAP?DH 為內(nèi)參,Image J 軟件分析目的蛋白和內(nèi)參光密度值,將目的蛋白與內(nèi)參GAPDH 光密度比值作為目的蛋白的相對表達量。

1.7 統(tǒng)計學(xué)方法

采用SPSS19.0 統(tǒng)計軟件,計量資料以均數(shù)±標準差(±s)表示,兩組間比較采用t檢驗,多組間比較采用方差分析,P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 SNHG1在CRC 細胞系HT29、結(jié)直腸上皮細胞FHC 中的表達

qRT-PCR 檢測CRC 細胞系HT29、結(jié)直腸上皮細胞FHC 中SNHG1 的表達水平,HT29、FHC 細胞中SNHG1 的相對表達量分別是(4.26±0.15)、(1.06±0.08),與FHC 細胞相比,HT29 中SNHG1 的表達水平顯著升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=17.045,P=0.000)。

2.2 干擾SNHG1表達對HT29細胞增殖、遷移的影響

si-SNHG1 組、si-NC 組HT29 細胞中SNHG1 表達分別是(1.21±0.07)、(4.15±0.32),si-SNHG1 組顯著低于si-NC 組(t=16.317,P=0.000)。MTT 實驗結(jié)果顯示,si-SN?HG1 組HT29 細 胞在培養(yǎng)24h 的OD 值與si-NC 組,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(t=2.014,P=0.079),但在48 h、72 h 的OD值顯著低于si-NC 組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=5.173,P=0.006;t=8.426,P=0.002)。Transwell 遷移實驗結(jié)果顯示,si-SNHG1 組HT29 細胞遷移數(shù)明顯低于si-NC 組,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=12.714,P=0.001),見表1。

表1 干擾SNHG1表達對HT29細胞增殖、遷移的影響(±s)

組別si-NC(n=3)si-SNHG1(n=3)t值P值SNHG1 4.15±0.32 1.21±0.07 16.317 0.001細胞活性(OD490 nm)24 h 0.37±0.03 0.34±0.03 2.014 0.079 48 h 0.59±0.07 0.42±0.04 5.173 0.006 72 h 0.91±0.08 0.51±0.06 8.426 0.002細胞遷移數(shù)(個)67.48±7.14 25.13±6.37 12.714 0.001

2.3 干擾SNHG1 表達對JAK-STAT 信號通路相關(guān)蛋白表達的影響

Western blot 檢測si-SNHG1 組、si-NC 組HT29 細胞中STAT3、P-STAT3 的表達,其表達量分別為(0.73±0.09)、(0.71±0.15);(0.23±0.06)、(0.68±0.14),STAT3 在si-SN?HG1 組和si-NC 組中的表達,差異無統(tǒng)計學(xué)意義(t=1.063,P=0.084),與si-NC 相 比,P-STAT3 在si-SN?HG1組中的表達明顯降低,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(t=15.473,P=0.000)。

3 討論

CRC 是我國常見的消化道惡性腫瘤,CRC 早期癥狀隱匿,缺乏特異性、敏感性較高的診斷標志物,大多數(shù)發(fā)現(xiàn)時已處于中晚期并伴有局部浸潤和轉(zhuǎn)移,導(dǎo)致CRC患者總體生存率較低。CRC 發(fā)病機制較為復(fù)雜,至今尚未完全闡釋,其涉及體內(nèi)外多種因素,包括飲食習(xí)慣、生活方式的變化;吸煙飲酒等不良生活習(xí)慣;遺傳和表觀遺傳學(xué)的改變等。因此,深入探索CRC 發(fā)生發(fā)展的分子機制,對于CRC 特異性標志物的發(fā)現(xiàn),CRC 新型分子靶點藥物的開發(fā)具有重要的臨床應(yīng)用價值。lncRNA 是一類長度超過200個核苷酸,無編碼蛋白功能的轉(zhuǎn)錄本,在腫瘤發(fā)生、增殖、遷移等生物學(xué)過程中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用。已有研究表明,多種不同類型的lncRNA 參與CRC 進展,Zhang 等[6]采用qRT-PCR 檢測臨床CRC 原發(fā)癌組織及轉(zhuǎn)移癌組織中l(wèi)ncRNA H19 的表達,發(fā)現(xiàn)其表達顯著上調(diào)并與CRC 不良預(yù)后呈正相關(guān),過表達lncRNA H19 可促進CRC 細胞遷移及EMT 的 發(fā)生。此外,lncRNA AGAP2-AS1 在CRC 中 表達同樣上調(diào)并參與CRC 進展[7]。體內(nèi)實驗研究同樣表明lncRNA 參與CRC 發(fā)生發(fā)展調(diào)控,Shang 等[8]通過構(gòu)建異種移植瘤模型,發(fā)現(xiàn)敲低lncRNA CCAT1 組移植瘤生長受到明顯抑制。另有研究指出,部分lncRNA 在CRC 中可發(fā)揮抑癌作用,Lin 等[9]通過對CRC 癌旁組織與原發(fā)癌組織中l(wèi)ncRNA AGER-1 表達進行比較發(fā)現(xiàn),其在原發(fā)癌組織中的表達顯著下調(diào),與CRC 臨床分期呈負相關(guān),過表達AGER-1 可抑制CRC 增殖、遷移,誘導(dǎo)細胞周期阻滯,促進凋亡。lncRNA 在CRC 中具有促癌和抑癌雙重作用,不同類型的lncRNA 在CRC 中可能發(fā)揮不同的作用,因此,lncRNA在CRC中的功能有待進一步深入探討。

SNHG1 是近年來新發(fā)現(xiàn)的lncRNA,其在多種不同類型的腫瘤中發(fā)揮促癌作用。Liu 等[10]研究表明SNHG1 在宮頸癌組織及細胞中的表達均上調(diào),沉默SNHG1 可顯著降低宮頸癌細胞增殖、遷移、侵襲能力。SNHG1在腦膜瘤中同樣具有促癌作用,SNHG1 在腦膜瘤細胞中呈高表達,敲低SNHG1 后可抑制腦膜瘤細胞生長[11]。Meng 等[12]檢測了前列腺癌組織和癌旁組織中SNHG1 的表達,結(jié)果SN?HG1均呈現(xiàn)高表達,并進一步通過細胞實驗驗證其對前列腺癌增殖、遷移、凋亡的影響,轉(zhuǎn)染SNHG1 干擾RNA 可明顯抑制前列腺癌細胞增殖、遷移,促進其凋亡。本研究探討了SNHG1 在CRC 中的表達及功能,結(jié)果SNHG1 在CRC HT29細胞的表達明顯高于結(jié)直腸上皮FHC細胞,表明SN?HG1 在CRC 中有可能同樣發(fā)揮促癌效應(yīng),為驗證SNHG1在CRC 中的促癌效應(yīng),進一步對SNHG1 能否促進CRC 增殖、遷移進行了研究,以HT29 細胞作為研究細胞,通過轉(zhuǎn)染si-SNHG1 RNA 以沉默SNHG1,MTT 增殖實驗結(jié)果表明,si-SNHG1組HT29細胞增殖能力在培養(yǎng)48 h、72 h時顯著低于si-NC 組,Transwell 遷移實驗結(jié)果表明,si-SNHG1組HT29 細胞遷移能力顯著低于si-NC 組,提示SNHG1 能夠通過促進CRC增殖、遷移,發(fā)揮其促癌效應(yīng)。

酪氨酸激酶-信號轉(zhuǎn)導(dǎo)子與轉(zhuǎn)錄激活子(JAK-STAT)信號通路是由多種細胞因子介導(dǎo)的細胞內(nèi)外信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路,JAK-STAT信號通路廣泛參與細胞分化、增殖、凋亡、免疫調(diào)控、炎癥反應(yīng)、腫瘤發(fā)生發(fā)展等病理生理過程[13-14]。已有研究表明,JAK-STAT 信號通路在多種不同類型腫瘤進展過程中發(fā)揮著關(guān)鍵作用。Huang 等[15]研究發(fā)現(xiàn)JAK-STAT 信號通路在膀胱癌中呈活化狀態(tài),使用JAK-STAT 阻斷劑可顯著抑制膀胱癌細胞增殖活性。C/EBPβ 通過上調(diào)JAK-STAT 信號通路活性促進乳腺癌增殖、侵襲及遷移[16]。此外,JAK-STAT 信號通路在肝癌中的活性同樣升高,Zhang等[17]采用qRT-PCR、Western blot等方法檢測了肝癌組織和癌旁組織中JAK2、STAT3 mRNA和蛋白的表達,結(jié)果其在肝癌組織中的表達明顯高于癌旁組織。另有研究報道指出,JAK-STAT 信號通路在CRC 中活化并參與CRC 進展。Fang 等[18]體外驗證了CPEB3 蛋白可抑制CRC 增殖、遷移,敲低CPEB3 蛋白表達后可上調(diào)JAK-STAT 信號通路活性并促進CRC 進展。在本研究中,為了進一步驗證SNHG1 促CRC 增殖、遷移的分子機制,我們探討了SNHG1與JAK-STAT 信號通路的相關(guān)性,采用Western blot 實驗方法檢測了si-SNHG1 組、si-NC 組HT29細胞中STAT3、P-STAT3的表達,結(jié)果STAT3在兩組細胞中的表達無明顯差異,與si-NC 相比,P-STAT3在si-SNHG1組中的表達明顯降低,STAT3 是JAK-STAT 信號通路中關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子,其磷酸化被認為是該信號通路活化的重要標志,該實驗結(jié)果提示SNHG1 促CRC 增殖、遷移作用與JAK-STAT信號通路活化有關(guān)。

綜上所述,lncRNA SNHG1 在CRC 中呈高表達并能夠促進CRC 增殖、遷移,在調(diào)控機制方面,lncRNA SNHG1通過上調(diào)JAK-STAT 信號通路活性進而發(fā)揮其促癌效應(yīng)。本研究初步探討了lncRNA SNHG1 對CRC 增殖、遷移的影響及調(diào)控機制,將為CRC臨床診治提供新的實驗依據(jù)。

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