陳建分 曹振木 秦于玲 申龍斌 劉維俠 朱丹 吳怡婷 劉子記 王旭
關(guān)鍵詞:辣椒;種質(zhì)資源;PMMoV;分子標(biāo)記;抗病性鑒定
中圖分類號(hào):S436.418 文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
辣椒(Capsicum annuum L.)為茄科辣椒屬一年生或多年生二倍體作物,是全球重要的蔬菜作物之一。辣椒果實(shí)富含類胡蘿卜素、蛋白質(zhì)、維生素C 等多種營(yíng)養(yǎng)物質(zhì),既可直接食用又可用作調(diào)味品,辣椒提取物在醫(yī)藥和化工領(lǐng)域也具有廣泛應(yīng)用。據(jù)聯(lián)合國糧食及農(nóng)業(yè)組織(FAO)統(tǒng)計(jì),2019 年全球鮮食辣椒和加工辣椒總種植面積約為3.7190×106hm2,總產(chǎn)量約為4.2283×107t;我國2019 年辣椒種植面積約為8.4700×105hm2,總產(chǎn)量達(dá)1.9333×107t,居全球首位[1]。
長(zhǎng)期以來,病毒病一直是威脅辣椒生產(chǎn)的重要因素。目前,我國報(bào)道的病毒種類有30 余種,近年來辣椒輕斑駁病毒(Pepper mild mottle viru,PMMoV)已逐漸成為海南[2]、廣西[3]、廣東[4]、四川[5]、安徽[6]、黑龍江[7]、山東[8-9]、西藏[10]等多個(gè)辣椒產(chǎn)區(qū)普遍發(fā)生的病害。PMMoV 屬于煙草花葉病毒屬(Tobamovirus),主要通過種傳、汁液傳播[11-12]。辣椒感染PMMoV 后葉片癥狀表現(xiàn)輕微皺縮、褪綠斑駁和花葉癥狀,果實(shí)被侵染后表現(xiàn)為扁平、變小、褪綠斑駁、凹凸斑點(diǎn)、畸形與壞死等現(xiàn)象。
L1、L2、L3、L4 系列等位基因是辣(甜)椒抗煙草花葉病毒屬病毒的主要抗性基因[13-15],這些基因被引入辣椒栽培種中保護(hù)植株免受煙草花葉病毒的侵染。目前我國辣椒生產(chǎn)上的PMMoV致病型多以P1,2株系為主[16-17],P1,2致病型病毒株系能夠系統(tǒng)侵染帶有L1、L2 抗性基因的辣(甜)椒,而帶有L3抗性基因的辣(甜)椒對(duì)該病毒株系表現(xiàn)為抗性,L3基因能夠應(yīng)對(duì)我國辣椒生產(chǎn)上的主要問題。張寶璽等[18]通過常規(guī)育種技術(shù)和分子標(biāo)記相結(jié)合,創(chuàng)制出含有抗PMMoV(P0,1,2)L3基因新品種中椒105 號(hào)、中椒106 號(hào)、中椒107號(hào)、中椒108 號(hào)。TOMITA 等[15]通過圖位克隆獲得L3基因,并利用同位克隆的方法獲得了L 的6個(gè)等位基因:L1、L1a、L1c、L2、Lb和L4。鑒定抗性種質(zhì)是選育抗病品種不可缺少的步驟,目前,高抗PMMoV 的辣椒種質(zhì)鮮有報(bào)道。由于辣椒的栽培種遺傳多樣性比較豐富、L 基因組結(jié)構(gòu)較為復(fù)雜,目前尚未利用基因序列開發(fā)功能標(biāo)記。因此,本研究利用已報(bào)道的L3連鎖標(biāo)記,遺傳距離為0.00015 cM,以110 份辣椒種質(zhì)資源為研究對(duì)象,結(jié)合抗病基因檢測(cè)和苗期抗性鑒定,精準(zhǔn)篩選抗辣椒輕斑駁病毒的種質(zhì)資源,以期為選育抗PMMoV 辣椒品種提供科學(xué)依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 材料
參試?yán)苯贩N質(zhì)資源共110 份,材料名稱和來源地詳見表1。PMMoV 鑒定毒原P1,2 株系由本課題組從田間發(fā)病植株上分離提純保存。
1.2 方法
1.2.1 毒原擴(kuò)繁及檢測(cè) 將PMMoV 毒源人工接種在本氏煙草(Nicotiana benthamiana)上進(jìn)行擴(kuò)繁,待發(fā)病后選取感病葉片,利用RT-PCR 方法進(jìn)行分子檢測(cè),引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,引物序列見表2。
1.2.2 L3抗性基因檢測(cè) 與L3連鎖的分子標(biāo)記參照TOMITA 等[22]的方法。根據(jù)Bioteke DNA 試劑盒( 北京百泰克生物技術(shù)有限公司) 提取gDNA,采用1%瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計(jì)測(cè)定DNA 的質(zhì)量和濃度,并將濃度稀釋至100 ng/μL,保存于–20 ℃冰箱備用。PCR 反應(yīng)體系為20 μL:PCR-mix(2×Es Taq Master Mix)10 μL,模板DNA 1.0 μL,正向引物和反向引物(10 μmol/L)各1 μL,ddH2O 補(bǔ)齊至20 μL。PCR擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性45 s,60 ℃退火45 s,72 ℃延伸1.5 min,35 個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。
1.2.3 PMMoV 苗期人工接種抗性鑒定 將篩選出含有抗性基因分子標(biāo)記的辣椒種質(zhì)進(jìn)行苗期人工接種鑒定, 以14SM517m 材料為感病對(duì)照(CK–),中椒107 為抗病對(duì)照(CK+)。2022年8 月3 日,將所有辣椒種子經(jīng)10%磷酸三鈉溶液浸種35 min,用蒸餾水清洗除去辣味,在55 ℃下溫湯浸種4 h,置于28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。出芽后播種于50 孔塑料穴盤內(nèi)育苗,每份參試材料3 次重復(fù),每重復(fù)15 株。幼苗長(zhǎng)至兩葉一心期時(shí),移栽至15.2 cm× 15.6 cm 塑料盆中,育苗基質(zhì)為高溫滅菌基質(zhì)(蛭石∶營(yíng)養(yǎng)土=1∶2)。
待辣椒幼苗長(zhǎng)至4~5 葉期時(shí),取感染PMMoV的煙草新葉,加入10 倍于鮮葉質(zhì)量的0.01 mol/L 磷酸緩沖液(PBS, pH 7.0)中,在冰上研磨勻漿,離心去渣取上清液,接種液現(xiàn)配現(xiàn)用。在葉面抹薄層600 目金剛砂,用手指蘸取少量接種液輕輕摩擦葉面。接種30 min 后用清水沖去葉面多余汁液,為避免病毒接不上的情況,3 d 后再接種1次。將幼苗置于28 ℃光照培養(yǎng)箱中培養(yǎng),接種后5 d 調(diào)查局部癥狀,20 d 調(diào)查系統(tǒng)癥狀,計(jì)算病情指數(shù),并進(jìn)行抗性分級(jí)。
1.2.4 病情調(diào)查與統(tǒng)計(jì) PMMoV 抗性調(diào)查的病情指數(shù)計(jì)算及抗性級(jí)別的劃分均參考《辣椒種質(zhì)資源描述規(guī)范和數(shù)據(jù)標(biāo)準(zhǔn)》[23]。
按上述標(biāo)準(zhǔn)劃分單株病情級(jí)別。0:無任何癥狀;1:心葉明脈,或接種葉少量急性小枯斑;3:少數(shù)葉片呈花葉,或接種葉脫落,莖部產(chǎn)生壞死斑;5:多數(shù)葉片花葉,少數(shù)葉片畸形,皺縮,或莖部產(chǎn)生壞死條斑;7:多數(shù)葉片畸形,皺縮,植株矮化,或莖、枝和葉脈系統(tǒng)壞死;9:植株嚴(yán)重矮化,停止生長(zhǎng);或植株嚴(yán)重系統(tǒng)壞死,甚至死亡。病情指數(shù)計(jì)算公式為:
病情指數(shù)(DI)=Σ(病級(jí)數(shù)值×該病級(jí)株數(shù))/(病級(jí)最高值×調(diào)查總株數(shù))×100。
品系群體抗病性劃分標(biāo)準(zhǔn):免疫(I),DI=0;高抗(HR),0 1.3 數(shù)據(jù)處理 試驗(yàn)數(shù)據(jù)通過Excel 軟件進(jìn)行分析、計(jì)算平均值和標(biāo)準(zhǔn)差,使用SPSS 25 軟件進(jìn)行單因素方差分析,采用LSD 或Duncans 法進(jìn)行多重比較分析。 2 結(jié)果與分析 2.1 毒原擴(kuò)繁檢測(cè)結(jié)果 RT-PCR 鑒定結(jié)果表明,PMMoV 特異性引物能擴(kuò)增出220 bp 左右的條帶,與目的條帶一致,而CMV 和TSWV 檢測(cè)引物均未擴(kuò)增出條帶(圖1),初步證明此毒原為PMMoV 單一感染毒原,可用于接種鑒定。 2.2 辣椒種質(zhì)L3抗性基因檢測(cè) L3抗性分子標(biāo)記鑒定結(jié)果表明,17YB32、17SCa28m、CF19-34m、19FB6-1、15SM39-2、CCJ93-1、14SM555×14SM1、14SM567-2、14SM526-1、14SM565-1、14SM514m、14SM502-1、14SM519-1、14SM504m、14SM503m、14SM519-3、14SM518-2、14SM519-2 等46 份種質(zhì)含有與抗性基因L3連鎖的分子標(biāo)記(圖2),其余64 份種質(zhì)均未擴(kuò)增出目標(biāo)條帶,說明這些種質(zhì)不含L3抗性基因。 2.3 辣椒種質(zhì)PMMoV 抗性鑒定 辣椒種質(zhì)PMMoV 抗性鑒定結(jié)果表明(圖3、表3),46 份供試種質(zhì)存在顯著性差異,未發(fā)現(xiàn)對(duì)PMMoV 免疫的種質(zhì),各種質(zhì)的病情指數(shù)在8.86~60.00 之間。病情指數(shù)能夠反映辣椒種質(zhì)抗PMMoV 能力的強(qiáng)弱,數(shù)值越高,表明抗性越低,反之,表明抗性越高。其中,高抗種質(zhì)為CF19-34m和19FB6-1,病情指數(shù)分別為8.86 和8.79,抗病性顯著強(qiáng)于感病種質(zhì),葉片幾乎無感染癥狀;抗病種質(zhì)CCJ93-1 次之,葉片僅有輕微的花葉癥狀;中抗材料17YB32、17SCa28m、15SM39-2、14SM555×14SM1、14SM567-2、14SM526-1、14SM565-1、14SM502-1、14SM519-1、14SM504m、14SM503m、14SM519-3、14SM518-2、14SM519-2、CCJ52-1 等34 份,植株少數(shù)葉片出現(xiàn)花葉、皺縮;感病種質(zhì)14SM514m、CCJ22-1 、CCJ113-2 、CCJ135-1 、CCJ157-1、CCJ537-1m、L545、CCJ87-2、CCJ133-1,這9 份材料中CCJ113-2 和CCJ135-1 的病情指數(shù)最大,病情指數(shù)為60.00。感病種質(zhì)的抗性能力弱,植株葉片多數(shù)皺縮和心葉畸形,植株矮化。總體來看,高抗、抗病和中抗材料占總鑒定材料的80.43%。 3 討論 本研究結(jié)合L3抗性基因檢測(cè)和苗期人工接種抗性鑒定方法,在110 份辣椒種質(zhì)中篩選出抗PMMoV P1,2種質(zhì)37 份,這些抗病種質(zhì)可為辣椒的抗病育種提供優(yōu)良的種質(zhì)資源。近年來,辣椒輕斑駁病毒在國內(nèi)快速蔓延,研究者正加快篩選對(duì)其具較大抗性的辣椒種質(zhì)。秦蕾等[24]對(duì)51 份辣椒種質(zhì)資源進(jìn)行了TMV 抗性鑒定,獲得抗病材料15 份,其中高抗材料2 份,占總鑒定材料的3.92%;姚明華等[25]對(duì)引進(jìn)的42 份非洲辣椒材料進(jìn)行了TMV 抗性鑒定,獲得抗性材料9 份;王飛等[26]在74 份泰國辣椒種質(zhì)中篩選出7 份TMV抗性材料。已有研究篩選到的抗性材料相對(duì)較少,本研究鑒定結(jié)果表明,不同的辣椒種質(zhì)表現(xiàn)的抗性有所不同,其中多數(shù)抗病材料表現(xiàn)為中抗,僅獲得2 份高抗材料和1 份抗病材料。這可能是由于抗病性受到多種因素的影響,包括外在的環(huán)境因子、內(nèi)在基因表達(dá)及辣椒與病毒的相互作用等。其次,可能高效L 基因主要存在于辣椒野生種當(dāng)中。 目前,辣椒抗PMMoV 的 L 基因已被克隆。本研究利用已報(bào)道的與L3連鎖的分子標(biāo)記對(duì)110份辣椒種質(zhì)進(jìn)行分子鑒定,結(jié)果顯示有46 份種質(zhì)含有抗性分子標(biāo)記,包括一年生辣椒栽培種(C.annuum L)和中國辣椒栽培種(C. chinense Jacquin)。在接種PMMoV P1,2菌株后,其中有9 份含有抗性分子標(biāo)記的種質(zhì)表現(xiàn)為感病,這種現(xiàn)象可能與品種的遺傳背景有關(guān)。本研究采用的是與L3連鎖的標(biāo)記而不是功能標(biāo)記,因此存在假陽性的可能,為了準(zhǔn)確鑒定辣椒種質(zhì)對(duì)PMMoV 的抗性,需要結(jié)合抗性鑒定結(jié)果進(jìn)行綜合判斷。 病毒病一直是威脅辣椒生產(chǎn)的主要病害,對(duì)辣椒生產(chǎn)造成嚴(yán)重的經(jīng)濟(jì)損失[27]。由于PMMoV具有種傳的特性,使用化學(xué)殺菌劑和傳統(tǒng)的農(nóng)業(yè)防治措施無法控制病毒病的為害。與傳統(tǒng)育種方式相比,利用分子標(biāo)記技術(shù)可以快速對(duì)已知抗性基因進(jìn)行檢測(cè),縮短了育種年限,有利于尋找新抗源,拓寬辣椒品種抗性遺傳多樣性,對(duì)PMMoV抗病品種的選育尤為重要。 本課題組前期研究已經(jīng)明確了海南儋州辣椒種質(zhì)資源圃感染的PMMoV 為P1,2致病型,應(yīng)用L3抗性基因可以有效克服PMMoV P1,2 致病型的為害。然而,病毒毒株會(huì)克服抗性基因而變異,L3基因?qū)MMoV P1,2,3,4致病型不具有抗性[28]。因此,未來的工作需要挖掘鑒定其他PMMoV 抗性基因用于辣椒抗性種質(zhì)資源的創(chuàng)制,為辣椒抗PMMoV 育種提供更高效的抗源材料。