王子怡 毛華 金婷婷 張香凝 韓帥 梁永新
[摘要] 目的
探究姜黃素對1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氫吡啶(MPTP)誘導(dǎo)的帕金森病(Parkinson disease,PD)模型小鼠的神經(jīng)保護(hù)作用及其機(jī)制。
方法 將72只雄性C57BL/6J小鼠,隨機(jī)分為Control組(A組)、MPTP組(B組)和MPTP+姜黃素組(C組)。實(shí)驗(yàn)前5 d,B、C組小鼠每天腹腔注射MPTP 30 mg/kg,A組小鼠腹腔注射等量生理鹽水;第6天始,C組小鼠每天腹腔注射姜黃素(溶于DMSO)50 mg/kg,A、B組小鼠每天腹腔注射等量的DMSO,連續(xù)7 d。給藥結(jié)束后,采用行為學(xué)實(shí)驗(yàn)評估各組小鼠的運(yùn)動、學(xué)習(xí)和記憶力功能。實(shí)驗(yàn)第15天,取各組小鼠黑質(zhì)區(qū),ELISA法檢測TNF-α、IL-1β和IL-6的含量,蛋白印跡法檢測CD86和NF-κB的相對含量,熒光免疫組織化學(xué)染色檢測TH陽性神經(jīng)元的數(shù)量。
結(jié)果 與B組相比,A、C組小鼠的下降時(shí)間明顯減少,脫落潛伏期和交替百分比明顯增加(F=17.29~19.28,P<0.05),黑質(zhì)中TNF-α、IL-1β和IL-6的含量明顯減少(F=31.73~80.97,P<0.05),黑質(zhì)中CD86、NF-κB蛋白的表達(dá)明顯減少(F=24.93、55.61,P<0.05),黑質(zhì)中TH陽性神經(jīng)元的數(shù)量顯著增加(F=47.64,P<0.05)。
結(jié)論 姜黃素可有效改善PD模型小鼠的行為障礙,發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用,其機(jī)制可能與抑制NF-κB信號通路,致小膠質(zhì)細(xì)胞活化抑制、炎性反應(yīng)發(fā)生降低、多巴胺能神經(jīng)元退化減輕有關(guān)。
[關(guān)鍵詞] 帕金森病;疾病模型,動物;姜黃素;小神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞;NF-κB;神經(jīng)炎癥性疾??;神經(jīng)保護(hù)
[中圖分類號] R742.5??? [文獻(xiàn)標(biāo)志碼] A
帕金森?。≒arkinsons disease,PD)是一種常見的神經(jīng)變性疾病。研究發(fā)現(xiàn),PD患者黑質(zhì)中存在神經(jīng)炎癥,當(dāng)小膠質(zhì)細(xì)胞過多分泌炎性因子時(shí),易對多巴胺能神經(jīng)元產(chǎn)生毒性,并最終致其發(fā)生進(jìn)行性死亡[1-2]。因此通過干預(yù)降低黑質(zhì)區(qū)促炎因子的水平,減緩PD患者神經(jīng)炎癥進(jìn)展,是目前比較有效治療措施之一。目前臨床主要使用的一線藥物有左旋多巴和多巴胺受體激動劑,但效果并不滿意,長期服用患者可產(chǎn)生耐藥性,甚至出現(xiàn)異動癥、妄想和焦慮等不良反應(yīng)[3]。姜黃素提取于姜黃的根莖,具有抗炎、抗氧化應(yīng)激、抗凋亡等作用,而且毒副作用小[4-6]。本研究通過腹腔注射1-甲基-4-苯基-1,2,3,6-四氫吡啶(MPTP)構(gòu)建PD模型小鼠,觀察姜黃素對小鼠行為學(xué)習(xí)和記憶功能的影響,并進(jìn)一步探究其作用機(jī)制,為PD患者的臨床治療提供實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)參考。
1 材料與方法
1.1 試劑與儀器
姜黃素購于美國Sigma公司,小鼠TNF-α、IL-1β和IL-6 ELISA試劑盒均購于上海江萊生物有限公司,MPTP購于美國GLPBIO公司,兔抗CD86抗體、兔抗p-NF-κB p65抗體和GAPDH均購買于英國Abcam公司,抗酪氨酸羥化酶抗體購于美國CST公司。轉(zhuǎn)棒測試儀和Y迷宮全自動測試儀購于美國Med Associates公司。
1.2 動物分組與處理
健康成年雄性C57BL/6J小鼠72只購自斯貝福(北京)生物有限公司(No.11032422010540776-5),隨機(jī)分為Control組(A組)、MPTP組(B組)和MPTP+姜黃素組(C組),每組24只。實(shí)驗(yàn)前5 d,B、C組小鼠每天腹腔注射MPTP 30 mg/kg,A組小鼠腹腔注射等量生理鹽水;第6天始,C組小鼠腹腔注射姜黃素(溶于DMSO)50 mg/kg,A、B組小鼠每天腹腔注射等量的DMSO,連續(xù)7 d[7]。
1.3 行為學(xué)實(shí)驗(yàn)評估各組小鼠的運(yùn)動、學(xué)習(xí)和記憶功能
1.3.1 爬桿實(shí)驗(yàn)[8] 實(shí)驗(yàn)第13天時(shí),分別從各組小鼠中隨機(jī)選取8只,置于表面粗糙木桿頂部(直徑8 mm、高55 cm),測量小鼠自頂部至前爪到達(dá)地面的時(shí)間(下降時(shí)間)。每只小鼠隔30 min測量一次,連續(xù)測試3次,結(jié)果取平均值。每次實(shí)驗(yàn)結(jié)束后均將小鼠放回。
1.3.2 轉(zhuǎn)棒實(shí)驗(yàn)[9] 爬桿實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,間隔6 h,分別從各組中再隨機(jī)選取8只小鼠進(jìn)行轉(zhuǎn)棒實(shí)驗(yàn)。將各組小鼠放置于轉(zhuǎn)棒測試儀的轉(zhuǎn)棒上,從4 r/min到40 r/min勻速調(diào)節(jié)轉(zhuǎn)棒的速度,記錄脫落潛伏期(小鼠從轉(zhuǎn)棒上掉落的時(shí)間)。每只小鼠測試3次,每次測試的間隔時(shí)間大于30 min,結(jié)果取均值。每次實(shí)驗(yàn)結(jié)束后均將小鼠放回。
1.3.3 Y迷宮實(shí)驗(yàn)[8] 實(shí)驗(yàn)第14天時(shí),分別從各組中再隨機(jī)選取8只小鼠進(jìn)行Y迷宮實(shí)驗(yàn)。將各組小鼠放置在Y迷宮全自動測試儀的一臂末端,并允許其在每個(gè)臂上自由爬行。記錄小鼠8 min內(nèi)入臂次數(shù)(當(dāng)小鼠的后爪完全進(jìn)入其余任何手臂時(shí),認(rèn)為完成一次入臂過程)和自發(fā)交替次數(shù)(小鼠依次進(jìn)入不同臂認(rèn)為完成一次交替)。交替百分比=[(自發(fā)交替次數(shù))/(入臂次數(shù)-2)]×100%。
1.4 ELISA法檢測各組小鼠黑質(zhì)中TNF-α、IL-1β和IL-6的含量
實(shí)驗(yàn)第15天時(shí),將每組24只小鼠隨機(jī)分為3份,每份8只。隨機(jī)取其中的一份8只小鼠,以異氟烷吸入麻醉后處死,剝離出小鼠腦組織,用濃度0.01 mol/L的PBS(pH 7.4)沖洗后,分離出黑質(zhì)并測量其質(zhì)量后,按照1∶9比例(1 g腦組織對應(yīng)0.01 mol/L的PBS 9 mL)加入PBS溶液,置于冰上充分研磨、離心后,收集上清液。按照ELISA試劑盒的說明檢測黑質(zhì)中TNF-α、IL-1β和IL-6的含量。
1.5 蛋白印跡法檢測各組小鼠黑質(zhì)中CD86以及NF-κB的相對含量
再隨機(jī)取其中的一份8只小鼠,以異氟烷吸入麻醉后處死,剝離出腦組織,用濃度0.01 mol/L的PBS(pH 7.4)沖洗后,分離出黑質(zhì)并測量其質(zhì)量后,取20 mg的黑質(zhì)組織依次加入400 μL的RIPA裂解液、4 μL 蛋白酶抑制劑和4 μL colktail后,置于冰上充分研磨、離心后,收集上清液。提取黑質(zhì)的蛋白樣本,樣本經(jīng)過電泳、轉(zhuǎn)膜、封閉等操作后,分別與一抗抗CD86(1∶1 000)、抗p-NF-κB p65(1∶1 000)和抗GAPDH(1∶5 000)在4 ℃下孵育過夜。TBST沖洗3次后,將膜分別與相應(yīng)的二抗(1∶5 000)在37 ℃下孵育2 h。TBST沖洗3次后顯影,以Image J軟件分析條帶灰度值。
1.6 熒光免疫組織化學(xué)染色檢測各組小鼠黑質(zhì)中TH陽性神經(jīng)元數(shù)量
剩余的一份8只小鼠,以異氟烷吸入麻醉后處死,將腦組織經(jīng)過剝離、固定、脫水等操作后。參考小鼠腦圖譜[10],將其沿冠狀面以10 μm厚進(jìn)行切片。選擇其中含有黑質(zhì)組織的切片,經(jīng)過沖洗、通透以及封閉等操作后。用抗酪氨酸羥化酶(TH)抗體(1∶200)孵育切片并于4 ℃下過夜。第2天用0.01 mol/L的PBS沖洗切片3次,共計(jì)15 min,以熒光二抗(綠色,1∶100)在室溫下孵育1 h。用BX53熒光顯微鏡和DP50數(shù)碼相機(jī)觀察并拍攝黑質(zhì)中TH陽性神經(jīng)元數(shù)目。
2 結(jié)? 果
2.1 姜黃素對各組小鼠運(yùn)動、學(xué)習(xí)以及記憶功能的影響
三組小鼠的下降時(shí)間、脫離潛伏期、交替百分比比較差異有顯著性(F=17.29~19.28,P<0.05),各組間兩兩比較,差異也均具有顯著意義(P<0.05)。見表1。
2.2 姜黃素對各組小鼠黑質(zhì)中TNF-α、IL-1β和IL-6含量的影響
三組小鼠黑質(zhì)中TNF-α、IL-1β、IL-6含量比較差異均有顯著性(F=31.73~80.97,P<0.05),各組間兩兩比較,差異也均具有顯著意義(P<0.05)。見表2。
2.3 姜黃素對各組小鼠黑質(zhì)中CD86和NF-κB表達(dá)的影響
蛋白印跡法檢測結(jié)果顯示,A~C組小鼠黑質(zhì)中CD86蛋白的相對表達(dá)量分別為1.00±0.00、1.78±0.33、1.37±0.17,p-NF-κB p65蛋白的相對表達(dá)量分別為1.00±0.00、1.44±0.12、1.22±0.13。各組間上述指標(biāo)比較差異均具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(F=24.93、55.61,P<0.05),各組間兩兩比較,上述兩個(gè)指標(biāo)差異也均具有顯著性(P<0.05)。見圖1。
2.4 姜黃素對各組小鼠黑質(zhì)中TH陽性神經(jīng)元數(shù)量的影響
A~C組小鼠黑質(zhì)中TH陽性神經(jīng)元數(shù)目分別為(60.62±10.29)、(25.25±4.83)、(39.00±5.55)個(gè),各組間比較差異有顯著性(F=47.64,P<0.05),各組間兩兩比較,差異均具有顯著意義(P<0.05)。見圖2。
3 討? 論
PD是一種多因素導(dǎo)致的以黑質(zhì)中多巴胺能神經(jīng)元進(jìn)行性死亡為特征的疾病。目前的治療方案不能有效阻止或減緩PD的神經(jīng)退行性病變[11]。因此,需要進(jìn)一步探索PD發(fā)生發(fā)展的相關(guān)機(jī)制,并找尋有效的治療藥物。大量研究表明,神經(jīng)炎癥參與PD的病理生理過程。在PD患者的大腦中,均發(fā)現(xiàn)小膠質(zhì)細(xì)胞的活化以及促炎因子的過度表達(dá)[12-14]。
姜黃素具有顯著的抗炎、抗氧化以及抗癌的特性[15-17]。最近的一些研究指出,姜黃素在PD、阿爾茲海默癥和多發(fā)性硬化等神經(jīng)系統(tǒng)疾病中,具有神經(jīng)保護(hù)作用[18-20]。另有研究顯示,姜黃素可以通過抑制NLRP3炎癥小體的活化,以及緩解Drp1介導(dǎo)的線粒體功能障礙,發(fā)揮對PD患者的神經(jīng)保護(hù)作用[21]。本研究采用MPTP構(gòu)建經(jīng)典PD模型小鼠,通過爬桿實(shí)驗(yàn)、轉(zhuǎn)棒實(shí)驗(yàn)和Y迷宮實(shí)驗(yàn),對小鼠的運(yùn)動、學(xué)習(xí)以及記憶功能進(jìn)行測試,結(jié)果表明,與MPTP組小鼠相比,經(jīng)姜黃素治療的PD模型小鼠,下降時(shí)間縮短、脫離潛伏期增加和交替百分比提高。提示姜黃素可有效改善PD模型小鼠的運(yùn)動、學(xué)習(xí)和記憶功能障礙。雖然目前已經(jīng)有大量研究證實(shí),姜黃素具有神經(jīng)保護(hù)作用,然而姜黃素治療PD的機(jī)制尚不清楚。
在本研究中,首先鑒定了姜黃素對促炎因子的影響,再進(jìn)一步研究其對MPTP誘導(dǎo)的小鼠黑質(zhì)中小膠質(zhì)細(xì)胞的作用。ELISA法檢測結(jié)果顯示姜黃素能夠減少黑質(zhì)中TNF-α、IL-1β和IL-6的過度釋放,驗(yàn)證了姜黃素對神經(jīng)炎癥的調(diào)控作用。蛋白印跡法結(jié)果表明,姜黃素可以抑制MPTP誘導(dǎo)的小鼠黑質(zhì)中小膠質(zhì)細(xì)胞表面標(biāo)記物CD86的表達(dá),表明姜黃素可以抑制小膠質(zhì)細(xì)胞的活化。為了進(jìn)一步探討姜黃素調(diào)控小膠質(zhì)細(xì)胞活性的分子機(jī)制,本研究還采用蛋白印跡法檢測了小鼠黑質(zhì)中NF-κB通路相關(guān)蛋白,發(fā)現(xiàn)姜黃素抑制了MPTP誘導(dǎo)的小鼠黑質(zhì)中NF-κB通路相關(guān)蛋白的表達(dá)。以上結(jié)果表明姜黃素抑制小膠質(zhì)細(xì)胞,減輕神經(jīng)炎癥可能通過調(diào)控細(xì)胞中NF-κB信號通路蛋白的表達(dá)來實(shí)現(xiàn)的。
研究表明,小膠質(zhì)細(xì)胞可以促進(jìn)神經(jīng)炎癥的發(fā)生發(fā)展。在黑質(zhì)中可使多巴胺能神經(jīng)元發(fā)生退化,因此抑制黑質(zhì)中小膠質(zhì)細(xì)胞介導(dǎo)的神經(jīng)炎癥,也許可以作為一種治療PD的方案[22]。小膠質(zhì)細(xì)胞長期持續(xù)活化,會分泌如TNF-α、IL-1β和IL-6等促炎因子。研究發(fā)現(xiàn)PD患者血清、黑質(zhì)和腦脊液中的炎性因子濃度較正常人群明顯升高。TNF-α是炎癥反應(yīng)過程中出現(xiàn)最早、最重要的炎性介質(zhì)。研究發(fā)現(xiàn)TNF-α主要由小膠質(zhì)細(xì)胞產(chǎn)生,也能激活小膠質(zhì)細(xì)胞產(chǎn)生IL-6等炎癥因子,誘導(dǎo)黑質(zhì)中多巴胺能神經(jīng)元的漸進(jìn)性喪失。IL介導(dǎo)了神經(jīng)炎癥的惡性循環(huán)過程,對炎癥起主導(dǎo)作用。當(dāng)過度激活I(lǐng)L-1β和IL-6時(shí),就會引起膠質(zhì)細(xì)胞活化并對神經(jīng)元產(chǎn)生損傷[23]。此外,NF-κB是炎性細(xì)胞因子的關(guān)鍵轉(zhuǎn)錄因子。研究表明,NF-κB這一經(jīng)典信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路已被證明可以促進(jìn)小膠質(zhì)細(xì)胞介導(dǎo)的神經(jīng)炎癥,抑制NF-κB的活化可以改善小鼠的運(yùn)動遲緩癥狀[24]。NF-κB的激活可增加小膠質(zhì)細(xì)胞對IL-6和IL-1β等促炎因子的釋放,并且在6-OHDA介導(dǎo)的PD動物模型中,NF-κB信號通路的活化參與黑質(zhì)中多巴胺能神經(jīng)元的死亡過程[25]。
TH代表黑質(zhì)-紋狀體通道的初始階段。此通路為大腦中比較重要的多巴胺傳遞途徑,因此TH在多巴胺合成中發(fā)揮不可或缺的作用。TH作為多巴胺能神經(jīng)元標(biāo)志物,其水平與多巴胺能神經(jīng)元的活性有關(guān)。黑質(zhì)中TH陽性神經(jīng)元的表達(dá)隨PD的發(fā)展進(jìn)行性減少,也是PD進(jìn)展的標(biāo)志[26]。本研究中姜黃素治療可顯著抑制MPTP誘導(dǎo)的小鼠黑質(zhì)中TH陽性神經(jīng)元的減少。這些結(jié)果證實(shí)姜黃素對PD具有顯著的神經(jīng)保護(hù)作用。
綜上所述,姜黃素可有效改善PD模型小鼠的運(yùn)動、學(xué)習(xí)、記憶障礙,降低黑質(zhì)中TNF-α、IL-1β和IL-6含量,抑制黑質(zhì)中小膠質(zhì)細(xì)胞活化,減緩黑質(zhì)中多巴胺能神經(jīng)元退化,從而發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用,其機(jī)制或與抑制NF-κB信號通路相關(guān)。本研究為姜黃素應(yīng)用于PD治療提供了理論和實(shí)驗(yàn)支持。
倫理批準(zhǔn)和動物權(quán)利聲明:本研究涉及的所有動物實(shí)驗(yàn)均已通過青島大學(xué)醫(yī)學(xué)部倫理委員會的審核批準(zhǔn)(文件號QDU-AEC-2023116)。所有實(shí)驗(yàn)過程均遵照《實(shí)驗(yàn)動物管理?xiàng)l例》進(jìn)行。
[參考文獻(xiàn)]
[1]STEFANOVA N. Microglia in Parkinsons disease[J]. J Parkinsons Dis, 2022,12(s1):S105-S112.
[2]PORTUGAL C C, ALMEIDA T O, SOCODATO R, et al. Src family kinases (SFKs):Critical regulators of microglial homeostatic functions and neurodegeneration in Parkinsons and Alzheimers diseases[J]. FEBS J, 2022,289(24):7760-7775.
[3]PIGNOLO A, MASTRILLI S, DAV C, et al. Vitamin D and Parkinsons disease[J]. Nutrients, 2022,14(6):1220.
[4]ADAMI R, BOTTAI D. Curcumin and neurological diseases[J]. Nutr Neurosci, 2022,25(3):441-461.
[5]BENAMEUR T, GIACOMUCCI G, PANARO M A, et al. New promising therapeutic avenues of curcumin in brain diseases[J]. Molecules, 2021,27(1):236.
[6]AZZINI E, PEA-CORONA S I, HERNNDEZ-PARRA H, et al. Neuroprotective and anti-inflammatory effects of curcumin in Alzheimers disease: Targeting neuroinflammation strategies[J]. Phytother Res, 2024. doi: 10.1002/ptr.8200.
[7]YU S, ZHENG W, XIN N, et al. Curcumin prevents dopaminergic neuronal death through inhibition of the c-Jun N-terminal kinase [JP2]pathway[J]. Rejuvenation Res, 2010,13(1):55-64.
[8]HAQUE M E, AZAM S, AKTHER M, et al. The neuroprotective effects of GPR4 inhibition through the attenuation of caspase mediated apoptotic cell death in an MPTP induced mouse model of Parkinsons disease[J]. Int J Mol Sci, 2021,22(9):4674.
[9]YAN J Q, SUN W J, SHEN M M, et al. Idebenone improves motor dysfunction, learning and memory by regulating mitophagy in MPTP-treated mice[J]. Cell Death Discov, 2022,8(1):28.
[10]PAXINOS G, FRANKLIN K. Paxinos and franklins the mouse brain in stereotaxic coordinates[M]. New York: Academic Press, 2008,72-91.
[11]PARK J S, DAVIS R L, SUE C M. Mitochondrial dysfunction in Parkinsons disease: [JP2]New mechanistic insights and therapeutic perspectives[J]. Curr Neurol Neurosci Rep, 2018,18(5):21.
[12]WANG T F, WU S Y, PAN B S, et al. Inhibition of nigral microglial activation reduces age-related loss of dopaminergic neurons and motor deficits[J]. Cells, 2022,11(3):481.
[13]LV J, ZHU J, WANG P, et al. Artemisinin exerts a protective effect in the MPTP mouse model of Parkinson's disease by inhibiting microglial activation via the TLR4/Myd88/NF-KB pathway[J]. CNS Neurosci Ther, 2023,29(4):1012-1023.
[14]ZHAO N, YANG X, CALVELLI H R, et al. Antioxidant nanoparticles for concerted inhibition of α-synuclein fibrillization, and attenuation of microglial intracellular aggregation and activation[J]. Front Bioeng Biotechnol, 2020,8:112.
[15]ZHAO Y H, SHEN C F, WANG G J, et al. Curcumin alleviates acute kidney injury in a dry-heat environment by reducing oxidative stress and inflammation in a rat model[J]. J Biochem Mol Toxicol, 2021,35(1):e22630.
[16]SANIDAD K Z, SUKAMTOH E, XIAO H, et al. Curcumin: Recent advances in the development of strategies to improve oral bioavailability[J]. Annu Rev Food Sci Technol, 2019,10:597-617.
[17] NAIR A B, KUMAR S, DALAL P, et al. Novel dermal delivery cargos of clobetasol propionate: An update[J]. Pharmaceutics, 2022,14(2):383.
[18]ANGELOPOULOU E, PAUDEL Y N, PAPAGEORGIOU S G, et al. Environmental impact on the epigenetic mechanisms underlying Parkinsons disease pathogenesis: A narrative review[J]. Brain Sci, 2022,12(2):175.
[19]PURI V, KANOJIA N, SHARMA A, et al. Natural product-based pharmacological studies for neurological disorders[J]. Front Pharmacol, 2022,13:1011740.
[20]CORDOVA A, DROBNIC F, NORIEGA-GONZALEZ D, et al. Is curcumine useful in the treatment and prevention of the tendinopathy and myotendinous junction injury? A scoping review[J]. Nutrients, 2023,15(2):384.
[21]XU L, HAO L P, YU J, et al. Curcumin protects against rotenone-induced Parkinsons disease in mice by inhibiting microglial NLRP3 inflammasome activation and alleviating mitochondrial dysfunction[J]. Heliyon, 2023,9(5):e16195.
[22]MA C, ZHANG W, CA0 M. Role of the peripheral nervous system in PD pathology, diagnosis, and treatment[J]. Front Neurosci, 2021,15: 598457.
[23]DRAGONE T, CIANCIULLI A, CALVELLO R, et al. Resveratrol counteracts lipopolysaccharide-mediated microglial inflammation by modulating a SOCS-1 dependent signaling pathway[J]. Toxicol In Vitro, 2014,28(6):1126-35.
[24]MULERO M C, HUXFORD T, GHOSH G. NF-κB, IκB, and IKK: Integral components of immune system signaling[J]. Adv Exp Med Biol, 2019,1172:207-226.
[25] WAN Y, HAN L, RONGg L, et al. Inhibition of BET protein function suppressed the overactivation of the canonical NF-κB signaling pathway in 6-OHDA-lesioned rat model of levodopa-induced dyskinesia[J]. Front Neurosci, 2022,16:896322.
[26]ZHANG X, ZHANG Y M, LI R, et al. Salidroside ameliorates Parkinsons disease by inhibiting NLRP3-dependent pyroptosis[J]. Aging, 2020,12(10):9405-9426.