關(guān)鍵詞：鹽堿土；乙?；咸烟?；土壤肥力；土壤細菌群落

我國鹽堿地總面積達9.91×107hm2，約占國土面積的10%，并且由于自然條件和人類活動影響，鹽堿地面積還在不斷增長［1-2］。鹽堿地土壤中鹽分的累積和較高的pH會產(chǎn)生一系列負面影響，導(dǎo)致表層土壤粘結(jié)和硬化，形成板結(jié)層，降低土壤的通氣性和導(dǎo)水性，土壤保水保肥能力下降［3］。鹽分的累積還會降低土壤的滲透性，影響水分在土壤中的垂直運動能力，導(dǎo)致灌溉水和雨水難以滲透到更深層的土壤中，影響植物對水分的利用效率［4］。此外，土壤中的Na+、CO32-、HCO3-會對土壤中的微生物產(chǎn)生離子毒害，抑制土壤微生物和土壤酶的活性，不利于土壤中的養(yǎng)分循環(huán)［5］，最終對作物生長發(fā)育產(chǎn)生不利影響，嚴重時會導(dǎo)致作物死亡［6］，對農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展造成嚴重阻礙，威脅我國糧食安全。因此，鹽堿地改良迫在眉睫。

乙?；咸烟鞘且环N新型綠色土壤改良劑，改良土壤鹽堿程度的同時，在土壤中無殘留，不會造成二次污染［7］。乙?；咸烟桥c堿作用不僅可以降低堿脅迫液的pH，其降解生成的葡萄糖還可作為外源糖促進植物的生長，顯著提高堿脅迫下小麥幼苗的株高、根長、根冠比以及干物質(zhì)的積累［8］，提高大豆幼苗的抗氧化酶活性、滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)含量及根系活力，有效緩解堿脅迫對大豆幼苗的損傷、增強其抗逆性及根系的生理功能，促進大豆幼苗的生長發(fā)育［9］。乙?；咸烟翘砑拥禁}堿地后，同樣能夠降低鹽堿土的pH和土壤鹽堿程度，增加玉米苗期株高和百粒重，極大地增加玉米產(chǎn)量［7，10］。乙?；咸烟谴龠M植物生長的影響機制可能與乙?；咸烟墙档蛪A脅迫、提高土壤有機質(zhì)含量、提高土壤酶活性、促進土壤中微生物的繁殖等有關(guān)［8］，但具體影響機制尚不清楚，需進一步研究，特別是乙?；咸烟菍}堿土微生物群落的影響及作用機制方面缺乏全面的研究和認識。本研究選取山西省定襄縣鹽堿土為供試土壤，進行大豆盆栽試驗，分析施用改良劑乙?；咸烟呛蟠蠖罐r(nóng)藝性狀、土壤化學(xué)性質(zhì)及酶活性變化，并采用高通量測序技術(shù)對不同處理大豆根際土壤細菌16SrRNAV3-V4區(qū)進行多樣性測序和分析，研究乙?；咸烟菍}堿土肥力和土壤細菌群落的影響，探索乙?；咸烟歉牧见}堿土的可能作用機制，旨在為采用乙?；咸烟歉牧见}堿地提供理論依據(jù)。

1材料和方法

1.1 試驗材料

供試土壤于2023年采自山西省定襄縣農(nóng)田（38°32'53\"N，112°56'20\"E），清除土壤表面的雜質(zhì)，采集表層0～20cm土壤，風(fēng)干后研磨過2mm篩備用。供試土壤基本肥力狀況為：pH為9.11、電導(dǎo)率0.46mS·cm-1、土壤堿化度（ESP）26.83%、Cl-含量0.03g·kg-1、有機質(zhì)含量15.47g·kg-1、全氮含量1.25g·kg-1、全磷含量0.18g·kg-1、全鉀含量4.88g·kg-1、堿解氮含量105.02mg·kg-1、速效磷含量9.66mg·kg-1、速效鉀含量291.94mg·kg-1。供試大豆為耐鹽品種‘汾豆98’；供試乙?；咸烟牵–16H22O11）由課題組合成［11］，葡萄糖（C6H12O6）為分析純。

1.2 試驗方法

大豆盆栽試驗于2023年在山西農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)作站進行。試驗共設(shè)置7個處理，包括無添加對照（CK），乙?；咸烟翘幚鞹1（0.31g·kg-1）、T2（0.62g·kg-1）、T3（0.92g·kg-1），葡萄糖處理T4（0.31g·kg-1）、T5（0.62g·kg-1）、T6（0.92g·kg-1）。設(shè)置了3個取樣時期，大豆初莢期（R3）、鼓粒期（R6）和完熟期（R8），每時期每處理均設(shè)3次重復(fù)。

試驗前，將土壤與施用物料混合均勻，分裝入花盆中，澆水，土壤持水量達到80%左右，預(yù)培養(yǎng)1周。選取籽粒飽滿、大小均勻的大豆種子，用無菌水清洗干凈，用75%酒精消毒15s，沖洗后用3%的次氯酸鈉浸泡30min，最后用無菌水沖洗4～5次。每盆播種15粒大豆種子，均勻地撒入花盆中，然后再將其表層蓋上1層約1cm厚的干土，然后噴壺濕潤表層土壤。播種后不定期觀察大豆的生長狀況，并適量澆水，澆水量每盆均相同，并以不發(fā)生淋洗為準。為明確乙?；咸烟鞘┯玫挠绊?，大豆生育期未進行施肥。待大豆幼苗長到第1片三葉展開時開始間苗，每盆保留3株長勢均勻的大豆幼苗。

分別在大豆初莢期（R3）和鼓粒期（R6）將大豆植株取出調(diào)查農(nóng)藝性狀，測量株高、主莖節(jié)數(shù)、地上部干重、根干重，收獲后（R8）測定單株粒數(shù)和單株粒重。將花盆中的土壤倒出，混勻，去除雜質(zhì)后風(fēng)干過篩，用于土壤理化性質(zhì)測定，每個取樣時間每處理均為3次重復(fù)。

1.3 土壤化學(xué)性質(zhì)及酶活性測定

土壤化學(xué)性質(zhì)測定參照鮑士旦等［12］的方法，pH采用電位法測定（水∶土=2.5∶1），電導(dǎo)率（EC）采用電導(dǎo)率儀測定（水∶土=5∶1），陽離子交換量（CEC）采用NaOAc-火焰光度法測定，土壤有機質(zhì)（SOM）含量采用重鉻酸鉀容量法-外加熱法測定，全氮（TN）含量采用凱氏定氮法測定，全磷（TP）含量采用鉬銻抗比色法測定，全鉀（TK）含量采用NaOH熔融-火焰光度法測定，堿解氮（AN）含量采用堿解擴散法測定，速效磷（AP）含量采用NaHCO3浸提-鉬銻抗比色法測定，速效鉀（AK）含量采用NH4OAc浸提-火焰光度法測定。

土壤酶活性測定參照查同剛的方法［13］，土壤脲酶（S-UE）活性采用NH4+釋放法測定，土壤堿性磷酸酶（S-ALP）活性采用比色法進行測定，土壤過氧化氫酶（S-CAT）活性采用高錳酸鉀滴定法測定。

1.4 土壤微生物測序

采用抖根法采集R3、R6、R8時期大豆根際的新鮮土壤，取后立即裝入離心管中，液氮速凍，保存于?80℃冰箱備用。

使用MagAtractPowerSoilProDNAKit（Qia?gen，Hilden，Germany）提取大豆根際微生物總DNA。DNA濃度和純度用NanoDrop2000（ThermoFisherScientific，U.S.）檢測。土壤細菌16SrRNA基因V3-V4區(qū)擴增引物參考趙娟等［14］的方法。利用IlluminaMiseqPE300平臺對土壤細菌16SrRNA基因進行測序?；赒iime1.9.1平臺對原始測序序列進行質(zhì)控、拼接、去除嵌合體。序列比對后篩選出相似性在97%以上的操作分類單元（OTU）。OTU物種分類學(xué)注釋采用RDPClassifier2.13，通過與Silva16SrRNA基因數(shù)據(jù)庫（v138）比對進行，置信度閾值設(shè)為70%，在不同物種分類水平下統(tǒng)計出各樣本群落組成［15］。

1.5 統(tǒng)計分析

采用Excel365對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計；使用Origin2024進行單因素方差分析（ANOVA），采用Tukey檢驗分析差異顯著性并作圖；使用AdobeIllustra?tor2022處理圖片。在美吉生物云平臺（https：//cloud.majorbio.com）上進行微生物分析。

2結(jié)果與分析

2.1 施用乙?；咸烟谴蠖股L特征

為明確施用乙?；咸烟菍}堿土中大豆生長發(fā)育的影響，調(diào)查了盆栽試驗大豆初莢期（R3）、鼓粒期（R6）的農(nóng)藝性狀。由圖1可知，鹽堿土施用乙酰化葡萄糖處理，R3、R6時期供試大豆的株高（圖1A）、主莖節(jié)數(shù)（圖1B）、地上部干重（圖1C）和根干重（圖1D）均顯著高于對照（Plt;0.05），而施用葡萄糖處理則與對照無顯著差異。與對照相比，施用乙?；咸烟翘幚泶蠖怪旮呱吡?.04～6.60cm，主莖節(jié)數(shù)增幅為10.97%～20.30%，地上部干重增加了8.99%～84.10%，根干重增加了7.22%～11.39%，其中T2處理顯著高于各處理或差異不顯著，表明該處理對大豆生長的影響最大。與對照相比，施用乙?；咸烟沁€顯著增加了盆栽大豆的單株粒數(shù)（圖1E）和單株粒重（圖1F），施用葡萄糖處理各指標(biāo)均與對照無顯著差異。

2.2 施用乙?；咸烟峭寥阑瘜W(xué)性質(zhì)和酶活性

通過比較不同處理土壤化學(xué)性質(zhì)和酶活性的變化，可揭示乙酰化葡萄糖施用對供試鹽堿土的改良效果。圖2可見，與對照相比，施用乙?；咸烟翘幚鞷3、R6、R8時期土壤pH（圖2A）和電導(dǎo)率（圖2B）均顯著降低（Plt;0.05），pH值降低了0.21～0.34，電導(dǎo)率降幅為8.91%～16.74%；而施用葡萄糖土壤pH僅比對照降低了0.02～0.05，電導(dǎo)率則與對照無顯著差異。土壤電導(dǎo)率是衡量土壤中可溶性離子濃度的指標(biāo)，反映了土壤含鹽量的高低［12］，土壤pH和電導(dǎo)率變化的結(jié)果說明，施用乙?；咸烟悄軌蛴行Ы档凸┰圎}堿土的堿化程度和鹽分含量，減少土壤積鹽現(xiàn)象，對于鹽堿地土壤改良具有明顯作用，且改良效果優(yōu)于葡萄糖處理。

施用乙?；咸烟?，R3、R6、R8時期土壤陽離子交換量（圖2C）和有機質(zhì)含量（圖2D）均顯著高于對照（Plt;0.05），分別較對照提高了8.52%～16.43%和4.78%～74.82%，且土壤陽離子交換量及T2處理的土壤有機質(zhì)含量顯著高于施用葡萄糖處理。此結(jié)果表明，施用乙?；咸烟悄軌蛱岣吖┰圎}堿土肥力水平和保肥能力，且作用效果總體優(yōu)于施用葡萄糖，其中T2處理的作用效果最為顯著。

由圖2還可見，施用乙?；咸烟?，除T6處理的全氮含量外，各處理土壤全氮、全磷、全鉀含量均顯著低于對照（Plt;0.05）（圖2E～圖2G），降幅分別為17.63%～28.81%、26.37%～44.53%、6.24%～9.10%。施用乙?；咸烟翘幚硗寥廊匡@著低于施用葡萄糖處理，而全磷、全鉀含量與施用葡萄糖處理無顯著差異?？偟膩砜?，在大豆盆栽試驗中，施用乙?；咸烟呛推咸烟呛?，土壤全氮、全磷、全鉀含量普遍低于對照，這可能是由于施用乙?；咸烟呛推咸烟呛?，作物長勢良好，促進了作物對土壤養(yǎng)分的吸收利用。

土壤酶在保護土壤微生物、促進細菌-植物相互作用以及土壤生物地球化學(xué)循環(huán)中發(fā)揮著至關(guān)重要的作用［16］。與對照相比，施用乙?；咸烟呛推咸烟荝3、R6、R8時期土壤脲酶、堿性磷酸酶、過氧化氫酶活性均顯著提高（Plt;0.05）（圖2H～圖2J）。其中施用乙?；咸烟翘幚硗寥离迕富钚蕴岣吡?7.54%～22.47%，土壤堿性磷酸酶活性提高了5.54%～16.51%，過氧化氫酶活性提高了27.80%～70.28%。

2.3 施用乙酰化葡萄糖大豆根際土壤細菌群落α多樣性變化

為了探討鹽堿土施用乙?；咸烟菍Υ蠖垢H細菌群落結(jié)構(gòu)的影響，對供試鹽堿土施用不同劑量改良劑后大豆根際細菌基因組16SrRNA進行了基因測序。根據(jù)前文乙?；咸烟菍Υ蠖股L特征及土壤化學(xué)性質(zhì)和酶活性的影響結(jié)果，乙?；咸烟荰2處理的改善效果最好，因此，在后續(xù)的微生物分析部分的3個葡萄糖中處理僅選用了與T2處理施用量相對應(yīng)的T5處理進行了測定。使用Qiime1.9.1過濾低質(zhì)量讀數(shù)，獲得了Cleanreads3182273條，大部分序列長度在400～440bp。由稀釋曲線（圖3A）可見，隨著測序條數(shù)的增加，各處理細菌OTUs數(shù)均表現(xiàn)為先急劇上升，后趨于平緩，說明能夠觀察到細菌群落的多樣性；在細菌物種積累曲線中（圖3B），新物種的增加率隨著采樣過程中樣本量的增加而增加，能夠觀察到細菌群落的豐富度；由細菌Rank-Abundance曲線可見（圖3C），所有的處理中具有較高的物種豐富度和多樣性。上述信息說明測序深度足夠高，可以進行細菌群落多樣性分析。

α多樣性可以反映土壤細菌群落的豐富度和多樣性，常用Ace、Chao指數(shù)和Shannon指數(shù)、Simpson指數(shù)衡量［17］。Ace和Chao指數(shù)值越大，群落豐富度越高，Shannon指數(shù)值越大，Simpson指數(shù)值越小，物種多樣性越高。由表1可見，施用乙酰化葡萄糖處理T1、T2、T3及施用葡萄糖處理T5，大豆R3、R6、R8時期根際土壤的Ace、Chao指數(shù)（除R3時期的T1處理外）、Shannon指數(shù)和Simp?son指數(shù)均與對照無顯著差異，說明施用乙?；咸烟腔蚱咸烟菍┰圎}堿土中大豆根際細菌類群物種豐富度和多樣性沒有明顯影響。除T3處理Ace指數(shù)在R6時期顯著高于R3時期外，其它同一處理的上述4項指數(shù)在不同時期沒有顯著變化。

2.4 施用乙?；咸烟谴蠖垢H土壤門水平細菌群落

為了進一步分析樣品的細菌群落結(jié)構(gòu)，對樣品進行門水平的豐度分布分析，結(jié)果顯示，大豆R3、R6、R8時期各施用處理根際土壤細菌相對豐度大于1%的門均為12個，占細菌相對豐度的95%以上（圖4）。其中放線菌門（Actinobacteri?ota）、綠彎菌門（Chloroflexi）、變形菌門（Proteobac?teria）、酸桿菌門（Acidobacteriota）、芽單胞菌門（Gemmatimonadota）、擬桿菌門（Bacteroidota）、厚壁菌門（Firmicutes）7個門占主導(dǎo)地位，約占細菌群落90%左右。

盡管各處理在門水平上細菌群落組成沒有差異，但在相對豐度和群落結(jié)構(gòu)上存在一定差異。與對照相比，施用乙?；咸烟呛蟠蠖股L的R8時期T2、T3處理土壤放線菌門（Actinobacteriota）的豐度分別顯著增加了21.63%、17.50%（Plt;0.05），而施用葡萄糖處理僅增加了4.89%（圖5）。放線菌門豐度除CK處理在R6時期顯著高于R3、R8時期外，其它處理在不同時期沒有顯著變化。放線菌門在干旱半干旱地區(qū)分布較廣，其菌絲體能夠降解土壤中的難溶性物質(zhì)，在土壤養(yǎng)分循環(huán)和提高土壤生產(chǎn)力等方面發(fā)揮著重要作用［18-19］。

2.5 施用乙?；咸烟谴蠖垢H土壤屬水平細菌群落

在屬水平上，大豆生長的R3、R6、R8時期，各施用處理大豆根際土壤有38個相對豐度大于1%的屬，其中11個細菌屬占主導(dǎo)地位（相對豐度gt;3%），占土壤細菌類群的26%以上（圖6）。

與對照相比，施用乙?；咸烟呛螅蠖股L后期的根際土壤中，節(jié)桿菌屬（Arthrobacter）、斯科曼氏菌屬（Skermanella）、考克氏菌屬（Kocuria）和Quadrisphaera菌屬的豐度均顯著增加（圖7）。大豆生長的R6和R8時期，T2處理根際土壤節(jié)桿菌屬的豐度分別增加至對照的2.18倍、3.93倍，T3處理分別增加至對照的3.67倍、5.72倍，而施用葡萄糖處理與對照無顯著差異（圖7A）。相較于對照，T2、T3處理斯科曼氏菌屬的相對豐度在R6和R8時期顯著增加，特別是T3處理的斯科曼氏菌屬相對豐度在R6、R8時期分別增加至對照的2.66倍、2.94倍，也顯著高于葡萄糖處理（T5）（圖7B）；T2、T3處理R8時期考克氏菌屬菌屬的相對豐度分別增加至對照的2.30倍、2.43倍（圖7C）。同一處理的上述菌屬在不同時期無顯著差異。

2.6 大豆根際細菌群落組成與土壤化學(xué)性質(zhì)的相關(guān)性分析

采用皮爾遜相關(guān)性分析檢驗了施用乙?；咸烟谴蠖垢H細菌群落屬水平豐度升高的菌屬與土壤化學(xué)性質(zhì)、酶活性和大豆農(nóng)藝性狀的相關(guān)性（圖8）。結(jié)果顯示，節(jié)桿菌屬（Arthrobacter）與土壤pH、電導(dǎo)率顯著或極顯著負相關(guān)，與土壤有機質(zhì)含量、陽離子交換量、脲酶活性、堿性磷酸酶活性、過氧化氫酶活性以及大豆株高顯著或極顯著正相關(guān)；斯科曼氏菌屬（Skermanella）則與土壤pH、電導(dǎo)率與全氮、全磷、全鉀含量極顯著負相關(guān)，與土壤有機質(zhì)含量、陽離子交換量、脲酶活性、堿性磷酸酶活性、過氧化氫酶活性以及株高、主莖節(jié)數(shù)極顯著正相關(guān)；考克氏菌屬（Kocuria）也與土壤pH顯著負相關(guān)，與陽離子交換量、過氧化氫酶活性、株高顯著正相關(guān)?？傮w來看，上述菌屬與土壤鹽堿度指標(biāo)pH、電導(dǎo)率呈負相關(guān)，與土壤肥力指標(biāo)有機質(zhì)含量、陽離子交換量、酶活性及作物農(nóng)藝指標(biāo)呈正相關(guān)。斯科曼氏菌屬與土壤全氮、全磷、全鉀含量呈負相關(guān)，可能是由于施用乙酰化葡萄糖后，土壤堿害減弱，微生物活性增強，作物長勢良好，促進了作物對氮磷鉀養(yǎng)分的吸收利用，這與前文結(jié)果分析一致。

3討論

本文研究結(jié)果顯示，乙?；咸烟鞘┯脤τ邴}堿地土壤改良具有明顯作用，顯著降低了供試鹽堿土的pH和電導(dǎo)率，有效降低了供試鹽堿土的堿化程度和鹽分含量，這與崔文明等［10］的田間試驗結(jié)果和郝統(tǒng)等［20］水培法模擬堿脅迫試驗結(jié)果相似。其作用原理是施入鹽堿土的乙?；咸烟窃谕寥乐蟹磻?yīng)后轉(zhuǎn)化為葡萄糖和乙酸，一方面堿性條件下的水解反應(yīng)會消耗OH-，使得土壤pH降低，另一方面，水解產(chǎn)物之一乙酸的酸性大于碳酸，會和堿性鹽土中的碳酸鈉和碳酸氫鈉進一步作用，將CO32-、HCO3-轉(zhuǎn)化為水和二氧化碳，二氧化碳以氣體形式釋放出土壤，從而有效降低可溶性CO32-、HCO3-含量，并緩解了由于CO32-、HCO3-水解而導(dǎo)致的土壤pH升高，實現(xiàn)降堿降鹽［16］。

本研究中，施用乙?；咸烟牵寥狸栯x子交換量和有機質(zhì)含量顯著提高，且顯著高于施用葡萄糖處理；土壤脲酶、堿性磷酸酶、過氧化氫酶活性也顯著提高。陽離子交換量和土壤有機質(zhì)含量都是衡量土壤肥力狀況的重要指標(biāo)，而土壤酶活性可以代表土壤中物質(zhì)代謝的旺盛程度，反映微生物對養(yǎng)分的吸收利用狀況等，也是土壤肥力的重要指標(biāo)［21］。研究結(jié)果說明，施用乙?；咸烟悄軌蛱岣吖┰圎}堿土肥力水平和保肥能力，且作用效果總體優(yōu)于施用葡萄糖。于躍躍等［21］的研究發(fā)現(xiàn)，葡萄糖為易利用碳源，添加葡萄糖可顯著提升土壤微生物活性及脫氫酶和堿性磷酸酶活性。本研究中乙酰化葡萄糖分解后產(chǎn)生的葡萄糖，一方面為微生物提供了易利用碳源，另一方面，由于乙?；咸烟鞘┯媒档土送寥赖膒H和鹽分含量，改善了微生物的生長環(huán)境，降低了對微生物的鹽堿脅迫，提高了土壤酶活性，因此作用效果優(yōu)于施用葡萄糖處理。

土壤微生物在土壤生態(tài)系統(tǒng)中起著至關(guān)重要的作用，每一種微生物都具有獨特的生態(tài)位和特殊的生態(tài)功能［22］。本研究中，盡管各處理間大豆根際土壤細菌群落豐富度和多樣性差異不大，但施用乙?；咸烟呛螅?jié)桿菌屬、斯科曼氏菌屬、考克氏菌屬的豐度顯著增加。節(jié)桿菌屬屬于放線菌門，能降解土壤中的多種環(huán)境污染物，是主要的有機物分解者［23］。斯科曼氏菌屬是一種固氮菌，能夠增加土壤氮素的含量［24］?？伎耸暇鷮倌軌驕p少由過氧化氫引起的氧化脅迫，有效降低細胞中丙二醛的含量，同時提升細胞內(nèi)過氧化氫酶的活性及其對羥自由基的清除作用［25］。說明施用改良劑乙酰化葡萄糖能促進與土壤碳、氮養(yǎng)分循環(huán)和抗逆性相關(guān)的有益菌豐度提高。Xing等［16］的研究也發(fā)現(xiàn)，添加改良劑生物炭后，降低土壤鹽度的同時可以提高土壤微生物的活性，參與碳、氮、磷循環(huán)的嗜熱菌屬、短波單胞菌屬、斯氏菌屬和黃單胞菌屬相對豐度提高，這與本研究施用改良劑能夠促進鹽堿土中與養(yǎng)分循環(huán)相關(guān)的菌屬豐度提高的結(jié)果一致。

根際細菌屬水平豐度與土壤化學(xué)性質(zhì)、酶活性、大豆農(nóng)藝性狀的相關(guān)性分析表明，細菌豐度與土壤鹽堿度負相關(guān)，與土壤肥力、酶活性及作物農(nóng)藝指標(biāo)正相關(guān)，說明改良劑乙?；咸烟堑氖┯猛ㄟ^有效降低供試鹽堿土的pH和鹽分含量，并為微生物提供易利用碳源，改善了土壤微生物生長的微環(huán)境，降低了對微生物的鹽堿脅迫，進而改善了土壤微生物群落結(jié)構(gòu)，增加了參與土壤元素循環(huán)菌群的豐度，提高了土壤肥力水平及酶活性，從而使土壤理化性質(zhì)得以改善，并進一步促進了大豆生長。

4結(jié)論

本研究通過施用土壤改良劑乙?；咸烟?，評估其在修復(fù)鹽堿土方面的有效性，并闡明其潛在的作用機制。研究結(jié)果表明，施用乙?；咸烟窃谟行Ы档凸┰圎}堿土的堿性和土壤含鹽量，降低鹽堿脅迫的同時，為土壤微生物提供了可直接利用的活性碳源，促進了土壤酶活性的提高，提高了鹽堿土的肥力水平和營養(yǎng)物質(zhì)保持能力，改善了大豆根際土壤細菌群落結(jié)構(gòu)，增加了有益于碳氮循環(huán)以及與抗逆性相關(guān)的微生物的豐度，從而進一步促進了大豆生長，對于鹽堿地土壤改良具有明顯作用。本研究結(jié)果為采用化學(xué)改良劑乙酰化葡萄糖修復(fù)鹽堿土提供了理論依據(jù)。