鐘鳳林 郭志雄 潘東明
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琯溪蜜柚汁胞ACTIN的分離鑒定和cDNA克隆
鐘鳳林1,2郭志雄1潘東明2
1.福建農(nóng)林大學(xué)園藝學(xué)院 2.福建農(nóng)林大學(xué)園藝產(chǎn)品貯藏保鮮研究所
對(duì)琯溪蜜柚粒化與正常汁胞雙向電泳分析,獲得一個(gè)在粒化中上調(diào)表達(dá)的差異蛋白質(zhì)點(diǎn),經(jīng)過(guò)質(zhì)譜鑒定、生物信息學(xué)分析,為肌動(dòng)蛋白(Actin),以琯溪蜜柚?;鹀DNA為模板,根據(jù)Actin氨基酸序列設(shè)計(jì)引物,進(jìn)行全長(zhǎng)的擴(kuò)增,得到Actin開(kāi)放閱讀框包含1134堿基,編碼377氨基酸。其核酸序列與黑楊派(Populus trichocarpa)、棉花(Gossypium hirsutum)、蓖麻(Ricinus communis)、圓葉錦葵(Malva pusilla) ACT的同源性在89%以上。
琯溪蜜柚 ACTIN 雙向電泳 串聯(lián)質(zhì)譜 克隆
肌動(dòng)蛋白(Actin)是真核生物細(xì)胞中普遍存在的一種重要的蛋白質(zhì),構(gòu)成細(xì)胞骨架中的微絲(Microfilament)系統(tǒng),參與真核生物細(xì)胞的許多重要的生命活動(dòng)[1]。肌動(dòng)蛋白是單一多肽鏈的球狀蛋白質(zhì)(G-actin),由375~377個(gè)氨基酸殘基所組成,分子量為42kD。生物體中包含7個(gè)肌動(dòng)蛋白基因,編碼不同的肌動(dòng)蛋白同工蛋白質(zhì)。高等植物肌動(dòng)蛋白在進(jìn)化過(guò)程中保持高度的保守性和同源性,且具有組織和器官特異性的表達(dá)。研究肌動(dòng)蛋白在擬南芥表皮毛中排列與分布時(shí)發(fā)現(xiàn),肌動(dòng)蛋白對(duì)細(xì)胞形態(tài)與生長(zhǎng)極性尤為重要,在表皮毛發(fā)育過(guò)程中破壞肌動(dòng)蛋白會(huì)引起表皮毛彎曲和分支[2]。Baluska等在研究擬南芥和Rye幼苗時(shí)發(fā)現(xiàn),沒(méi)有F-actin條件下細(xì)胞一樣可以分裂,但植物會(huì)變矮,說(shuō)明F-actin是細(xì)胞伸長(zhǎng)所必需[3]。范小平等通過(guò)RNAi序列構(gòu)建載體轉(zhuǎn)化棉花,表明RNAi載體轉(zhuǎn)基因植株棉纖維發(fā)育遲緩或受到抑制,但GhACT1只是屬于影響纖維生長(zhǎng)的多基因中的一個(gè),而不是唯一決定棉纖維長(zhǎng)度的基因[4]。
琯溪蜜柚 ((L.) Osbeck) 原產(chǎn)福建省平和縣琯溪河畔,是我國(guó)蜜柚優(yōu)良品種之一,有400多年的栽培歷史。柑橘果實(shí)?;浅墒炱诤筒珊筚A藏期的生理病害。其主要表現(xiàn)為汁胞異常膨大,變硬,汁胞木質(zhì)化,風(fēng)味變淡,一般情況下為囊瓣近蒂端汁胞先發(fā)生?;鬂u向果心發(fā)展,果心處長(zhǎng)形汁胞最為嚴(yán)重[5-7]。通過(guò)差異蛋白質(zhì)組學(xué)研究?;c正常汁胞,對(duì)獲得的差異蛋白質(zhì)點(diǎn)進(jìn)行分離、鑒定和cDNA克隆,為從轉(zhuǎn)錄水平了解粒化的分子機(jī)理奠定了基礎(chǔ)。
2007年9月18日,琯溪蜜柚采至福建省平和縣小溪村大坑果園,選擇大小均勻,色澤一致、無(wú)病蟲(chóng)、無(wú)損傷的果實(shí)。當(dāng)日從平和寄回實(shí)驗(yàn)室,掰開(kāi)果實(shí),液氮處理、保存、備用。
取琯溪蜜柚汁胞,總蛋白的提取、蛋白質(zhì)含量測(cè)定及雙向電泳等參照賴(lài)呈純等(2009) 的方法[8]。
差異蛋白點(diǎn)進(jìn)行脫色、膠內(nèi)胰酶酶切(in-gel digestion)和肽段提取,然后進(jìn)行肽質(zhì)量指紋譜(Peptide Mass Fingerprinting,PMF)分析。檢索數(shù)據(jù)庫(kù)為NCBInr;檢索種屬為:all,數(shù)據(jù)檢索的方式為combined;最大允許漏切位點(diǎn)為1;酶為胰蛋白酶。質(zhì)量誤差范圍設(shè)置:PMF 0.3 Da,MS/MS 0.4 Da;在數(shù)據(jù)庫(kù)檢索時(shí)胰酶自降解峰和污染物質(zhì)的峰都手工剔除[9,10]。
取琯溪蜜柚汁胞樣品,參照鐘鳳林等方法提取RNA[11]。
1.5.1 cDNA合成及引物設(shè)計(jì)
按Invitrogen RT-PCR、3'和5'-RACE說(shuō)明書(shū)中附加方案說(shuō)明進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄,合成cDNA。
根據(jù)ACTIN [Gossypium hirsutum] (gi|32186906)在蛋白的起始位置和結(jié)尾設(shè)計(jì)特異引物進(jìn)行cDNA全長(zhǎng)擴(kuò)增。引物由上海博尚生物技術(shù)有限公司合成。
ACTR(Nco I): 5'- GCATA CCATGG TTAGAAGCAC TTCCTGTGGA CAATGGA
ACTF(Nde I): 5'- GCATA GTATAC ATG GCC GAT GCT GAG GAT ATT C
1.5.2 PCR擴(kuò)增
反應(yīng)程序?yàn)椋?4℃ 5.0min,94℃ 45s,63℃ 45s,72℃1min,35個(gè)循環(huán),72℃延伸10 min。
1.5.3序列測(cè)定、序列分析
膠回收PCR產(chǎn)物,連接、轉(zhuǎn)化、涂板、篩選和PCR鑒定。菌液送上海英駿公司進(jìn)行測(cè)序。序列通過(guò)Expasy、NCBI網(wǎng)址和DNAMAN軟件進(jìn)行分析。
正常汁胞和?;偟鞍椎碾p向電泳差異比較后,把其中的50個(gè)差異蛋白質(zhì)點(diǎn)經(jīng)過(guò)膠內(nèi)酶解、MAIDI-TOF-TOF MS以及MASCOT搜索,得到差異蛋白質(zhì)點(diǎn)為Actin (圖1為琯溪蜜柚?;^(guò)程中的差異蛋白質(zhì)Actin的局部放大示意圖)。獲得高品質(zhì)肽質(zhì)量指紋(PMF)(圖2 A),然后根據(jù)PMF自動(dòng)選取5個(gè)的峰形最好、強(qiáng)度最高的肽離子送入CID碰撞,得到的碎片離子再用TOF質(zhì)譜分析獲得肽碎片指紋(FFP: fragment fingerprint 圖2 B)。使用MASCOT的離子搜索模式搜索蛋白質(zhì)NCBInr綠色植物蛋白質(zhì)數(shù)據(jù)庫(kù)得到匹配的蛋白(圖2 C、D)。Actin其與棉花()actin Score為393。
注:A為正常汁胞;B為?;?;↑表示表達(dá)量上升
注:A為PMF;B為FFP;C為檢索值;D為匹配的結(jié)果
2.2.1 RNA的提取及質(zhì)量分析
用Trizol法提取琯溪蜜柚?;俁NA,電泳檢測(cè)顯示(圖3,M為DL2000 Marker),分離得到的總RNA的質(zhì)量較好,條帶完整,紫外檢測(cè)和分析,提取分離得到的總RNA其A260/ A280值為1.90,說(shuō)明該樣品純度高,適合PCR擴(kuò)增。
圖3琯溪蜜柚汁胞RNA電泳結(jié)果
2.2.2 ACTIN ORF 擴(kuò)增結(jié)果
將開(kāi)放閱讀框的兩端加上酶切位點(diǎn)和保護(hù)堿基后設(shè)計(jì)引物,以帶Oligo-dT的接頭引物的cDNA為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增ORF,電泳結(jié)果獲得了大小約為1100bp的特異產(chǎn)物(圖4,M為DL2000 Marker)。膠回收純化該片段,連接、轉(zhuǎn)化、涂板、篩選和PCR鑒定,送菌液測(cè)序。菌液提取質(zhì)粒后進(jìn)行測(cè)序。
圖4 琯溪蜜柚汁胞的ORF電泳圖
下劃線、方框表示引物區(qū)
測(cè)序后得到的cDNA序列長(zhǎng)為1156,開(kāi)放閱讀框(ORF)共有1134個(gè)堿基組成,編碼377個(gè)氨基酸,ATG為起始密碼子,TAA為終止密碼子。通過(guò)expasy分析,氨基酸位點(diǎn)55~65具有Actins signature1信號(hào),氨基酸位點(diǎn)106~118具有Actins and actin-related proteins signature信號(hào),氨基酸位點(diǎn)358-366具有ACTINS signature2信號(hào)(圖5)。
序列分析表明,琯溪蜜柚ACTIN cDNA的核苷酸序列以及推導(dǎo)的氨基酸序列與許多植物來(lái)源的ACT有很高的同源性。其核酸序列與黑楊派()的ACT1、ACT9、棉花()ACT1、ACT11同源性高達(dá)90%,與蓖麻()ACT、圓葉錦葵() ACT、棉花()ACT4、ACT8、ACT9的同源性89%。
2.2.3 Actin ORF推導(dǎo)的氨基酸與其它植物Actin氨基酸序列比對(duì)
由DNAMAN軟件分析可知,Actin cDNA編碼377個(gè)氨基酸,理論分子量為41.7014KD,理論等電點(diǎn)(pI)為5.45,屬酸性或陰離子型。經(jīng)由DNAMAN軟件分析比對(duì)后得到與黑楊派(Populus trichocarpa)的ACT1、ACT9、棉花(Gossypium hirsutum)ACT1、ACT11等的氨基酸序列比對(duì)圖(圖6),可知:ACT 與推導(dǎo)的氨基酸的同源性都達(dá)到了99%以上。
圖6 Actin cDNA編碼氨基酸序列與其它植物ACTIN的多重序列比對(duì)
在高等植物中,肌動(dòng)蛋白在進(jìn)化過(guò)程中保持高度的保守性和同源性,以基因家族形式存在,可分為營(yíng)養(yǎng)體基因與生殖細(xì)胞基因,并且肌動(dòng)蛋白的表達(dá)有組織、器官特異性和發(fā)育階段特異性[12-14]。肌動(dòng)蛋白骨架對(duì)植物高度特異化的細(xì)胞的形態(tài)發(fā)生和功能起著重要作用,同時(shí)在高等植物形態(tài)發(fā)生的細(xì)胞分裂和伸長(zhǎng)過(guò)程中起著關(guān)鍵的調(diào)節(jié)作用[15,16]。Li等從cDNA文庫(kù)中篩選出15個(gè)actin基因中,real-time PCR結(jié)果表明有5個(gè)肌動(dòng)蛋白基因在纖維中特異表達(dá),推斷在GhACT1缺失時(shí),其他4個(gè)基因仍正常行使功能,彌補(bǔ)和維持纖維生長(zhǎng),使纖維繼續(xù)伸長(zhǎng),尤其在伸長(zhǎng)期后期GhACT1的缺失對(duì)纖維伸長(zhǎng)的影響甚微[17]。
本研究通過(guò)分離、鑒定和克隆,獲得了Actin的cDNA全長(zhǎng),并表明在琯溪蜜柚汁胞發(fā)育階段的?;蠥ctin表達(dá)的變化,可能是Actin與肌球蛋白的相互作用,參與了細(xì)胞運(yùn)動(dòng)有關(guān)活動(dòng),使得琯溪蜜柚汁胞生長(zhǎng)與延伸發(fā)生改變,猜測(cè)其對(duì)構(gòu)建細(xì)胞骨架和適應(yīng)多樣脅迫環(huán)境變化有著重要作用。有關(guān)這方面的有待進(jìn)一步進(jìn)行。
[1] Staiger C J,Lloyd C W.The plant cytoskeleton[J].Curr Opin Cell Biol,1991,3:33-42.
[2] Huang S,An Y,Mcdowell J M,et al.TheACT11 actin gene is strongly expressed in tissues of the emerging inflorescence,pollen and developing ovules[J].Plant Mol Biol,1997, 33:125-139.
[3] Baluska F, Jasik J, Edelmann H G, et al. Latrunculin B-induced plant dwarfism: plant cell elongation is F-actin-dependent[J]. Developmental Biology, 2001, 231(1): 113-124.
[4] 范小平,范博紅,李學(xué)寶,等.肌動(dòng)蛋白基因在棉花纖維中的作用研究[J].華北農(nóng)學(xué)報(bào),2008,23(5):73-75.
[5] 潘東明,鄭國(guó)華,陳桂信,等.琯溪蜜柚汁胞?;蚍治鯷J].果樹(shù)學(xué)報(bào),1999,16(3):202-209.
[6] 鐘鳳林,郭志雄,潘東明,等.琯溪蜜柚汁胞APX1cDNA的克隆及原核表達(dá)[J].熱帶作物學(xué)報(bào),2010,31(1):76-82.
[7] 鐘鳳林,郭志雄,李開(kāi)拓,等.琯溪蜜柚汁胞在發(fā)育和?;^(guò)程中APX活性變化及同工酶分析[J].熱帶亞熱帶植物學(xué)報(bào),2010,(1):27-31.
[8] 賴(lài)呈純,賴(lài)鐘雄,何園,等.龍眼胚性培養(yǎng)物高分辨率蛋白質(zhì)雙向電泳技術(shù)[J].福建農(nóng)林大學(xué)學(xué)報(bào),2008,37(1):37-41.
[9] 周瑋,劉曉慧,周新文,等.糖蛋白結(jié)構(gòu)質(zhì)譜解析的樣品前處理[J].色譜,2007,25(5):623-627.
[10] 謝錦云,李小蘭,陳平,等.溫敏核不育水稻花藥蛋白質(zhì)組初步分析[J].中國(guó)生物化學(xué)與分子生物學(xué)報(bào),2003,(19)
[11] 鐘鳳林,郭志雄,李開(kāi)拓,等.琯溪蜜柚汁胞RNA提取[J].生物技術(shù)通報(bào),2010,(2):109-112.
[12] Heslop-Harrison J, Heslop-Harrison Y. Intracellular motility, the actin cytoskeleton and germinability in the pollen of wheat (Triticum aestivum L.)[J]. Sexual Plant Reproduction, 1992, 5(4): 247-255.
[13] O'Connor P. Actin-dependent cell elongation in teleost retinal rods: requirement for actin filament assembly[J]. Journal of Cell Biology, 1981, 89(3): 517-524.
[14] Szymanski D B,Marks M D,Wick S M.Organized F-actin is essential for normal trichome morphogenesis in Arabidopsis[J].Plant Cell,1999,11:2331-2347
[15] Dong C H, Xia G X, Hong Y, et al. ADF proteins are involved in the control of flowering and regulate F-actin organization, cell expansion, and organ growth in Arabidopsis[J]. The Plant Cell 2001, 13(6): 1333-1346.
[16] 李巖, 徐是雄. 百合花粉及花粉管內(nèi)微絲和微管的分布[J].植物學(xué)報(bào), 1998, 40(010): 890-894.
[17] Li X B, Fan X P, Wang X L, et al. The cotton ACTIN1 gene is functionally expressed in fibers and participates in fiber elongation[J]. The Plant Cell, 2005, 17(3): 859-875.