劉 斐,吳補(bǔ)領(lǐng),高 杰,黃 欣,麻丹丹,陳 婷
(南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院口腔科·南方醫(yī)科大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院,廣東廣州 510515)
血清饑餓法對(duì)人牙髓細(xì)胞周期同步化的研究
劉 斐,吳補(bǔ)領(lǐng),高 杰,黃 欣,麻丹丹,陳 婷
(南方醫(yī)科大學(xué)南方醫(yī)院口腔科·南方醫(yī)科大學(xué)口腔醫(yī)學(xué)院,廣東廣州 510515)
目的:探討不同的血清饑餓方法和饑餓時(shí)間對(duì)人牙髓細(xì)胞(HDPCs)細(xì)胞周期的影響。方法:血清直接饑餓和梯度饑餓處理人牙髓細(xì)胞。倒置顯微鏡觀察細(xì)胞形態(tài);CCK-8檢測(cè)血清饑餓處理對(duì)HDPCs增殖能力的影響;流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)細(xì)胞周期驗(yàn)證HDPCs同步化的效果。結(jié)果:血清直接饑餓處理或梯度饑餓處理后其G0/G1期HDPCs的比例均顯著高于一般培養(yǎng)組(P<0.05),但血清直接饑餓組和梯度饑餓組間無(wú)顯著性差異(P>0.05)。用含5 mL/L FBS的DMEM培養(yǎng)基培養(yǎng)48 h能獲得較滿意的結(jié)果,G0/G1期細(xì)胞百分比達(dá)85.95%。結(jié)論:血清饑餓法能有效地使人牙髓細(xì)胞同步于G0/G1期;5 mL/L FBS血清饑餓處理細(xì)胞48 h可取得較好的細(xì)胞周期同步化效果。
血清饑餓法;人牙髓細(xì)胞;細(xì)胞周期同步化;G0/G1期
[牙體牙髓牙周病學(xué)雜志,2011,21(2):67]
[Chinese Journal of Conservativedentistry,2011,21(2):67]
隨著對(duì)損傷牙髓組織修復(fù)性研究的日益深入,大多數(shù)的藥物實(shí)驗(yàn)要求在誘導(dǎo)前保持細(xì)胞周期的同步性,以得到一個(gè)更為客觀真實(shí)的實(shí)驗(yàn)結(jié)果。血清饑餓法是一種對(duì)細(xì)胞干擾較小,較少影響細(xì)胞周期發(fā)育進(jìn)程并能夠?qū)⒓?xì)胞周期停滯于G0/G1期的同步化方法[1-2]。目前,尚無(wú)關(guān)于 HDPCs成熟有效的血清饑餓同步化方法的報(bào)道。本研究旨在尋找對(duì)HDPCs實(shí)施血清饑餓同步化方法的最佳條件,從而為研究HDPCs增殖周期及牙髓組織損傷修復(fù)機(jī)制提供實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
胰蛋白酶、胎牛血清FBS、DMEM(Gibco公司,美國(guó));CCK-8(同仁公司,日本);流式細(xì)胞儀、PI細(xì)胞周期流式檢測(cè)試劑盒、倒置顯微鏡(OLYMPUS,日本)。
1.2.1 細(xì)胞培養(yǎng)與鑒定
取因正畸需要新鮮拔除的年輕健康者前磨牙,無(wú)菌條件下劈冠取出牙髓,用PBS液反復(fù)沖洗,組織塊法進(jìn)行原代培養(yǎng)(培養(yǎng)液為含有100 mL/L FBS、青霉素 100 U/mL、鏈霉素 100 U/mL的DMEM培養(yǎng)基,pH=7.2),每2~3d換液。待細(xì)胞鋪滿培養(yǎng)瓶底后用2.5g/L胰蛋白酶(含EDTA)消化后1∶3傳代培養(yǎng)。倒置相差顯微鏡觀察HDPCs的生長(zhǎng)情況和形態(tài)特征,流式細(xì)胞儀檢測(cè)其表面標(biāo)志物 CD105、CD29、CD34、CD33、CD45 的表達(dá)情況。
1.2.2 血清饑餓處理的細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察
將3~5代HDPCs細(xì)胞接種于6孔板上,待細(xì)胞達(dá)到 80%匯合,加入含不同濃度(0、5、100 mL/L)血清的DMEM培養(yǎng)基處理細(xì)胞,分別與處理后不同時(shí)間(0、24、48、72 h)在倒置顯微鏡下調(diào)整視野,觀察不同時(shí)間段細(xì)胞形態(tài)并拍照。
1.2.3 CCK-8 法檢測(cè)細(xì)胞生物活性
將消化所得的3~5代HDPCs以1.0×104/孔密度接種于96孔板,每孔體積100 μL,復(fù)孔4個(gè),隔天換液。待細(xì)胞長(zhǎng)至80%匯合后,PBS沖洗3遍,分別加入含 0、1、3、5、100 mL/L FBS 的dMEM培養(yǎng)基,分別于培養(yǎng) 12、24、48、72、96 h 時(shí)每孔依次加入10 μL CCK-8 溶液,37 ℃孵育 2 h,酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀測(cè)定(波長(zhǎng)490 nm)每孔的吸光度值。每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取均值。
1.2.4 流式細(xì)胞儀測(cè)定細(xì)胞周期
取第3~5代HDPCs以7.0×104/孔密度接種于6孔板上,每孔培養(yǎng)液2 mL,復(fù)孔4個(gè),隔天換液。待細(xì)胞匯合至80%后,PBS洗3遍,加入含0、5、100 mL/L FBS的DMEM培養(yǎng)基。分別培養(yǎng)0、24、48、72 h后同時(shí)將饑餓48 h后的細(xì)胞去原培養(yǎng)液,換含100 mL/L FBS的DMEM培養(yǎng)液再正常培養(yǎng)24 h。然后將各組細(xì)胞用PBS沖洗2遍,離心(4 ℃、1 000 r/min,5 min),加入 500 μL PBS 將細(xì)胞重懸,注入預(yù)冷的700 mL/L的乙醇2 mL 4℃過(guò)夜固定,上機(jī)前再次離心(800 r/min,6 min),棄乙醇固定液,冷 PBS洗,5%PI染液0.5 mL,4 ℃孵育30 min上機(jī)檢測(cè)。每個(gè)實(shí)驗(yàn)重復(fù)3次,取均值。
用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,多組數(shù)據(jù)間的比較采用方差分析,兩兩比較用LSD檢驗(yàn),兩組數(shù)據(jù)間的比較采用兩獨(dú)立樣本t檢驗(yàn)。檢驗(yàn)水準(zhǔn) α=0.05。
培養(yǎng)第5天時(shí)可在倒置顯微鏡下觀察到細(xì)胞從組織塊中游走,呈放射性生長(zhǎng),1周后形成生長(zhǎng)暈。成纖維樣細(xì)胞形態(tài)為主,呈星形或長(zhǎng)梭形,胞漿豐富,細(xì)胞核橢圓居中,核仁清晰可見(jiàn)。14d時(shí)相鄰組織塊的細(xì)胞生長(zhǎng)出現(xiàn)匯合,傳代后的牙髓細(xì)胞經(jīng)過(guò)連續(xù)培養(yǎng)呈復(fù)層生長(zhǎng)特性。流式細(xì)胞分析結(jié)果顯示CD105、CD29呈(+)表達(dá),表達(dá)率分別為97.67%、98.33%;CD34、CD33、CD45 呈(- )表達(dá),表達(dá)率分別為 0.13%、0.31%、0.33%。證明所培養(yǎng)的細(xì)胞為間葉組織來(lái)源。
由圖1可見(jiàn),鏡下觀察血清饑餓法對(duì)細(xì)胞周期同步化處理初期(24、48 h)并未對(duì)細(xì)胞的形態(tài)產(chǎn)生明顯影響,但隨處理時(shí)間的延長(zhǎng)(72 h),逐漸出現(xiàn)細(xì)胞生長(zhǎng)抑制,形態(tài)發(fā)生改變,大部分細(xì)胞變圓,極性消失,細(xì)胞間出現(xiàn)碎片增多,細(xì)胞凋亡以及失去貼壁,脫落壞死的情況。其中血清饑餓兩濃度組在各時(shí)間觀察點(diǎn)并未見(jiàn)明顯差異,但與正常培養(yǎng)組(100 mL/L FBS)相比有顯著差異性。
圖1 不同濃度FBS處理HDPCs不同時(shí)間的形態(tài)學(xué)圖譜(×100)
由圖2可見(jiàn),應(yīng)用CCK-8檢測(cè)梯度血清饑餓和正常培養(yǎng)對(duì)HDPCs生長(zhǎng)情況的影響,以O(shè)D值為縱坐標(biāo),饑餓時(shí)間為橫坐標(biāo)繪制生長(zhǎng)曲線。結(jié)果顯示,在培養(yǎng)至12 h時(shí),各組細(xì)胞均有少量增殖,且無(wú)血清組和梯度饑餓組先緩慢增加,并較正常培養(yǎng)組稍高。隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng)至24 h時(shí),無(wú)血清組和梯度饑餓組OD值開(kāi)始平穩(wěn)下降,組間差異不明顯(P>0.05),但較正常培養(yǎng)組相比,有顯著性差異(P<0.05)。
如圖3和表1所示,血清饑餓組的G0/G1期HDPCs均高于正常培養(yǎng)組。與正常培養(yǎng)組相比5 mL/L FBS饑餓24 h后,大多數(shù)的HDPCs的細(xì)胞周期停止于G0/G1期,S期和G2/M期比例下降(P<0.05)。處理48 h時(shí)G0/G1的比例為85.95%,與正常培養(yǎng)組具有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(P<0.05)。隨處理時(shí)間延長(zhǎng),G0/G1的比例下降,饑餓48 h后再恢復(fù)FBS正常培養(yǎng)的細(xì)胞G0/G1的比例與正常培養(yǎng)組相比無(wú)顯著性差異(P>0.05)。
圖2 不同濃度FBS處理HDPCs不同時(shí)間的細(xì)胞活力分析
圖3 48 h時(shí)各個(gè)濃度的血清對(duì)細(xì)胞周期影響的流式分析
表1 HDPCs血清饑餓不同時(shí)間的細(xì)胞周期分析表(n=3,±s)
表1 HDPCs血清饑餓不同時(shí)間的細(xì)胞周期分析表(n=3,±s)
*與正常培養(yǎng)組相比P<0.05
細(xì)胞周期 正常培養(yǎng) 5 mL/L FBS饑餓處理(h)24 hg0/G1 71.06 ±1.2 77.1 ±0.9* 85.95 ±1.4* 81.6 ±2.1*24 48 72 恢復(fù)FBS培養(yǎng)2.63 ±1.1 79.85 ±0.8 S 13.76 ±0.6 4.5 ±0.4* 3.39 ±0.5* 6.5 ±1.5 7.51 ±0.4g2/M 15.18 ±0.7 18.3 ±0.8 10.67 ±0.9 11.8 ±1.3 1
細(xì)胞的分裂周期分為G1期、S期、G2期和M期,在分裂的最末時(shí)相時(shí)細(xì)胞將選擇進(jìn)入G0期或者新的細(xì)胞周期。正常情況下,大多數(shù)的HDPCs處于分裂的G0期,在受到損傷刺激時(shí)才進(jìn)入新的細(xì)胞周期。本研究采用血清饑餓法建立了HDPCs同步化于G0/G1期的方法,在短期內(nèi)獲得大量可用于后續(xù)實(shí)驗(yàn)的G0/G1期細(xì)胞,并將G0/G1期細(xì)胞和凋亡細(xì)胞的比例控制在可接受的范圍內(nèi)。一般來(lái)講,血清饑餓法所采用的胎牛血清濃度一般為0~5 mL/L。在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,我們通過(guò)形態(tài)觀察和CCK-8法篩選出5 mL/L FBS饑餓處理的細(xì)胞在形態(tài)學(xué)和細(xì)胞增殖活力比較中與對(duì)照組最為相近。其中在CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞的生長(zhǎng)曲線時(shí)發(fā)現(xiàn)在饑餓誘導(dǎo)的初期(12 h),梯度饑餓組的OD值較對(duì)照組稍高,我們猜測(cè)其原因可能為細(xì)胞對(duì)外界刺激的預(yù)適應(yīng)反應(yīng),為一種代償性反應(yīng)表現(xiàn)。而對(duì)各實(shí)驗(yàn)組的HDPCs進(jìn)行流式細(xì)胞周期分析后發(fā)現(xiàn)饑餓處理48 h后的同步化效果最佳,G0/G1期的同步化達(dá)到85.95%,較對(duì)照組71.06%相比有明顯提高。而且在恢復(fù)正常培養(yǎng)24 h后G0/G1期比率與對(duì)照組相比無(wú)明顯差異。
當(dāng)血清濃度較低時(shí),細(xì)胞生長(zhǎng)因缺乏足夠的血清生長(zhǎng)因子而處于饑餓狀態(tài),抑制了細(xì)胞周期蛋白依賴激酶CDK2、CDK4的表達(dá),大量原處于S和G2/M期的細(xì)胞分別進(jìn)入靜止?fàn)顟B(tài),細(xì)胞周期停滯于G0/G1期[3-5]。對(duì)于大多數(shù)的細(xì)胞而言,血清饑餓的時(shí)間一般在兩個(gè)細(xì)胞倍增時(shí)間之內(nèi),太短太長(zhǎng)都不能達(dá)到理想的同步化效果。在本實(shí)驗(yàn)中,5 mL/L FBS饑餓處理48 h和72 h后的細(xì)胞同步率較處理48 h低,其中處理72 h組的壞死和凋亡細(xì)胞的比例也較48 h高。由此證明進(jìn)一步延長(zhǎng)饑餓時(shí)間不僅不能有效的增高細(xì)胞的同步率,細(xì)胞還會(huì)因?yàn)槿狈I(yíng)養(yǎng)而受到損傷,核內(nèi)DNA碎片增多[6],引起細(xì)胞的凋亡[7],對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果產(chǎn)生負(fù)面影響。所以在血清饑餓時(shí)必需考慮的因素有細(xì)胞的特性,血清的濃度以及同步化的時(shí)間。此外有文獻(xiàn)證明細(xì)胞的傳代次數(shù),細(xì)胞的生長(zhǎng)狀態(tài)以及融合率都會(huì)對(duì)細(xì)胞周期的分布產(chǎn)生影響[8]。
目前用于細(xì)胞周期同步化的方法有很多種,如溫度休克、血清饑餓、照射、胰酶消化、藥物抑制、機(jī)械振動(dòng)收集分裂細(xì)胞[9-11]等等。最常用的是匯合培養(yǎng),藥物阻滯和血清饑餓法[12],而對(duì)損傷或正常的牙髓組織進(jìn)行藥物誘導(dǎo)篩選實(shí)驗(yàn)時(shí)最好采用血清饑餓法,以防止藥物之間的干擾對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果產(chǎn)生影響。
綜上所述,血清饑餓法能有效的對(duì)人牙髓細(xì)胞進(jìn)行周期同步化,本實(shí)驗(yàn)所選用的5種不同濃度的胎牛血清培養(yǎng)基在細(xì)胞周期同步化能力方面有一定的差異,其中以5 mL/L FBS培養(yǎng)48 h為最佳,可以較好的使大多數(shù)的HDPCs進(jìn)行細(xì)胞周期同步化,并控制實(shí)驗(yàn)過(guò)程中壞死、凋亡細(xì)胞對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的影響,為將來(lái)進(jìn)一步進(jìn)行體外研究外源性刺激對(duì)牙髓組織的影響及其作用機(jī)制提供更多的實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
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Effects of serum starvation on cell cycle synchronization in humandental pulp cells
LIU Fei,WU Bu-ling,GAO Jie,HUANG Xin,MAdan-dan,CHEN Ting
(Department of Stomatology,Nanfang Hospital,Southern Medical University,Guangzhou 510515,China)
AIM:To examine the effects of serum starvation on cell cycle synchronization of humandental pulp cells(HDPCs)by treating HDPCs withdifferent starvation methods and starvation times.METHODS:HDPCs were treated with serumdirect starvation andgradient starvation.The morphological changes of HDPCs were observed by an inverted microscope.CCK-8 assay was used to investigate the effects of serum starvation on cell proliferation,and cell cycledistribution of HDPCs wasdetected by flow cytometry(FCM).RESULTS:HDPCgrowth was significantly inhibited by serum starvation.Treatment of HDPCs with serumdirect starvation orgradient starvation resulted in a significant increase of cells arrested atg0/G1 stage in comparision with the controlgroup(P <0.05),but there was no significantdifference between the serumdirect starvation andgradient starvationgroups.HDPCs cultured indMEM containing 5 mL/L fetal bovine serum(FBS)for 48h showed the most satisfactory result,with 85.95%of HDPCs atg0/G1 phase.CONCLUSION:Serum starvation can efficiently arrest HDPCs atg0/G1 stage,and the optimum result can be achieved with 0.5%FBS serum and a culture period of 48h.
serum starvation;HDPCs;synchronization of the cell cycle;G0/G1 stage
R780.2
A
1005-2593(2011)02-0067-05
2010-11-23
教育部博士點(diǎn)新教師基金項(xiàng)目(20094433120004)廣東省科技計(jì)劃項(xiàng)目(2008B011300018-8)
劉斐(1986~),女,漢族,湖南岳陽(yáng)人。碩士生(導(dǎo)師:吳補(bǔ)領(lǐng))
吳補(bǔ)領(lǐng),E -mail:bulingwu@yahoo.com.cn